stringtranslate.com

Desplazamiento del marco ribosómico

El desplazamiento del marco ribosómico , también conocido como desplazamiento del marco traduccional o recodificación traduccional , es un fenómeno biológico que ocurre durante la traducción y que da como resultado la producción de múltiples proteínas únicas a partir de un único ARNm . [1] El proceso puede programarse mediante la secuencia de nucleótidos del ARNm y, a veces, se ve afectado por la estructura secundaria tridimensional del ARNm . [2] Se ha descrito principalmente en virus (especialmente retrovirus ), retrotransposones y elementos de inserción bacterianos , y también en algunos genes celulares. [3]

También se ha descubierto que las moléculas pequeñas, las proteínas y los ácidos nucleicos estimulan los niveles de cambio de marco de lectura. En diciembre de 2023, se informó que los ARNm transcritos in vitro (IVT) en respuesta a la vacuna anti-COVID-19 BNT162b2 (Pfizer–BioNTech) causaron un cambio de marco de lectura ribosomal. [ 4]

Descripción general del proceso

Las proteínas se traducen mediante la lectura de trinucleótidos en la cadena de ARNm, también conocidos como codones , de un extremo del ARNm al otro (del extremo 5' al 3' ) comenzando con el aminoácido metionina como codón de inicio (iniciación) AUG. Cada codón se traduce en un solo aminoácido . El código en sí se considera degenerado , lo que significa que un aminoácido particular puede especificarse por más de un codón. Sin embargo, un cambio de cualquier número de nucleótidos que no sea divisible por 3 en el marco de lectura hará que los codones posteriores se lean de manera diferente. [5] Esto cambia efectivamente el marco de lectura ribosómico .

Ejemplo de oración

En este ejemplo, la siguiente oración de tres letras tiene sentido cuando se lee desde el principio:

|Inicio| EL GATO Y EL HOMBRE SON GORDOS...|Inicio|123 123 123 123 123 123 123 ...

Sin embargo, si el marco de lectura se desplaza una letra entre la T y la H de la primera palabra (efectivamente, un desplazamiento de marco de +1 al considerar que la posición 0 es la posición inicial de T ),

T |Inicio|HEC ATA NDT HEM ANA REF AT...-|Inicio|123 123 123 123 123 123 12...

Entonces la frase se lee diferente y no tiene sentido.

Ejemplo de ADN

En este ejemplo, la siguiente secuencia es una región del genoma mitocondrial humano con los dos genes superpuestos MT-ATP8 y MT-ATP6 . Cuando se leen desde el principio, estos codones tienen sentido para un ribosoma y se pueden traducir en aminoácidos (AA) según el código mitocondrial de vertebrados :

|Inicio| A AC GAA AAT CTG TTC GCT TCA ...|Inicio|123 123 123 123 123 123 123 ...| AA | NENLFAS ...

Sin embargo, cambiemos el marco de lectura comenzando un nucleótido más abajo (efectivamente, un "desplazamiento de marco de +1" al considerar que la posición 0 es la posición inicial de A ):

A |Inicio|ACG AAA ATC TGT TCG CTT CA...-|Inicio|123 123 123 123 123 123 12... | AA | TKICSL ...

Debido a este cambio de marco de lectura +1, la secuencia de ADN se lee de forma diferente. Por lo tanto, el marco de lectura de codones diferente produce aminoácidos diferentes.

Efecto

En el caso de un ribosoma traductor, un cambio de marco de lectura puede dar como resultado una mutación sin sentido , un codón de terminación prematuro después del cambio de marco de lectura o la creación de una proteína completamente nueva después del cambio de marco de lectura. En el caso en que un cambio de marco de lectura dé como resultado una mutación sin sentido, la vía de desintegración del ARNm mediada por mutaciones sin sentido (NMD) puede destruir la transcripción del ARNm, por lo que el cambio de marco de lectura serviría como un método para regular el nivel de expresión del gen asociado. [6]

Si se produce una proteína nueva o fuera del objetivo, puede desencadenar otras consecuencias desconocidas. [4]

Función en virus y eucariotas

En los virus, este fenómeno puede programarse para que se produzca en sitios específicos y permite que el virus codifique varios tipos de proteínas a partir del mismo ARNm. Entre los ejemplos más notables se incluyen el VIH-1 (virus de inmunodeficiencia humana), [7] el VRS ( virus del sarcoma de Rous ) [8] y el virus de la gripe [9] , que dependen del desplazamiento del marco de lectura para crear una proporción adecuada de proteínas de marco 0 (traducción normal) y de "marco trans" (codificadas por una secuencia desplazada del marco de lectura). Su uso en los virus es principalmente para compactar más información genética en una cantidad más corta de material genético.

En eucariotas parece desempeñar un papel en la regulación de los niveles de expresión genética al generar paradas prematuras y producir transcripciones no funcionales. [3] [10]

Tipos de cambio de fotogramas

El tipo más común de cambio de marco de lectura es el cambio de marco de lectura −1 o cambio de marco de lectura ribosómico programado −1 (−1 PRF) . Otros tipos de cambio de marco de lectura más raros incluyen el cambio de marco de lectura +1 y −2. [2] Se cree que el cambio de marco de lectura −1 y +1 están controlados por diferentes mecanismos, que se analizan a continuación. Ambos mecanismos son impulsados ​​cinéticamente .

Cambio de marco ribosómico programado -1

Deslizamiento en tándem de 2 ARNt en la secuencia deslizante del virus del sarcoma de Rous. Después del cambio de marco, los nuevos apareamientos de bases son correctos en el primer y segundo nucleótido, pero incorrectos en la posición de oscilación. Se indican los sitios E , P y A del ribosoma. La ubicación de la cadena polipeptídica en crecimiento no se indica en la imagen porque aún no hay consenso sobre si el deslizamiento −1 ocurre antes o después de que el polipéptido se transfiera del ARNt del sitio P al ARNt del sitio A (en este caso, del ARNt Asn al ARNt Leu). [8]

En el desplazamiento del marco de lectura -1, el ribosoma retrocede un nucleótido y continúa la traducción en el marco de lectura -1. Normalmente, hay tres elementos que componen una señal de desplazamiento del marco de lectura -1: una secuencia deslizante , una región espaciadora y una estructura secundaria de ARN. La secuencia deslizante se ajusta a un motivo X_XXY_YYH, donde XXX son tres nucleótidos idénticos cualesquiera (aunque se producen algunas excepciones), YYY normalmente representa UUU o AAA, y H es A, C o U. Debido a que la estructura de este motivo contiene 2 repeticiones adyacentes de 3 nucleótidos, se cree que el desplazamiento del marco de lectura -1 se describe mediante un modelo de deslizamiento en tándem, en el que el anticodón del ARNt del sitio P del ribosoma se vuelve a emparejar de XXY a XXX y el anticodón del sitio A se vuelve a emparejar de YYH a YYY simultáneamente. Estos nuevos emparejamientos son idénticos a los emparejamientos del marco de lectura 0, excepto en sus terceras posiciones. Esta diferencia no desfavorece significativamente la unión del anticodón porque el tercer nucleótido en un codón, conocido como la posición de oscilación , tiene una especificidad de unión al anticodón del ARNt más débil que el primer y segundo nucleótido. [2] [11] En este modelo, la estructura del motivo se explica por el hecho de que la primera y segunda posiciones de los anticodones deben poder emparejarse perfectamente en los marcos 0 y −1. Por lo tanto, los nucleótidos 2 y 1 deben ser idénticos, y los nucleótidos 3 y 2 también deben ser idénticos, lo que lleva a una secuencia requerida de 3 nucleótidos idénticos para cada ARNt que se desliza. [12]

+1 cambio de marco ribosómico

El cambio de marco de lectura +1 se produce cuando el ribosoma y el ARNt del sitio P hacen una pausa para esperar la llegada del ARNt arginina, un gen poco común. El codón del sitio A en el nuevo marco de lectura se empareja con el anticodón del ARNt glicina, que es más común, y la traducción continúa. [13]

La secuencia resbaladiza para una señal de cambio de marco +1 no tiene el mismo motivo, y en cambio parece funcionar pausando el ribosoma en una secuencia que codifica un aminoácido raro. [13] Los ribosomas no traducen proteínas a un ritmo constante, independientemente de la secuencia. Ciertos codones tardan más en traducirse, porque no hay cantidades iguales de ARNt de ese codón en particular en el citosol . [14] Debido a este retraso, existen en pequeñas secciones de codones secuencias que controlan la velocidad del cambio de marco ribosomal. Específicamente, el ribosoma debe hacer una pausa para esperar la llegada de un ARNt raro, y esto aumenta la favorabilidad cinética del ribosoma y su ARNt asociado deslizándose hacia el nuevo marco. [13] [15] En este modelo, el cambio en el marco de lectura es causado por un solo deslizamiento del ARNt en lugar de dos.

Mecanismos de control

El desplazamiento del marco de lectura de los ribosomas puede estar controlado por mecanismos que se encuentran en la secuencia del ARNm (acción en cis). Esto generalmente se refiere a una secuencia resbaladiza, una estructura secundaria del ARN o ambas. Una señal de desplazamiento del marco de lectura -1 consta de ambos elementos separados por una región espaciadora que normalmente tiene entre 5 y 9 nucleótidos de longitud. [2] El desplazamiento del marco de lectura también puede ser inducido por otras moléculas que interactúan con el ribosoma o el ARNm (acción en trans).

Elementos de señal de desplazamiento del marco

Esta es una representación gráfica de la señal de cambio de marco de lectura del VIH1. Un cambio de marco de lectura de -1 en la región de secuencia deslizante da como resultado la traducción de la proteína pol en lugar de la región codificante de la proteína gag , o marco de lectura abierto (ORF). Tanto la proteína gag como la pol son necesarias para la transcriptasa inversa, que es esencial para la replicación del VIH1. [7]

Secuencia resbaladiza

Las secuencias resbaladizas pueden hacer que el ribosoma lector se "deslice" y se salte una cantidad de nucleótidos (generalmente solo 1) y lea un marco completamente diferente a partir de entonces. En el cambio de marco ribosomal programado -1, la secuencia resbaladiza se ajusta a un motivo X_XXY_YYH, donde XXX son tres nucleótidos idénticos cualesquiera (aunque ocurren algunas excepciones), YYY generalmente representa UUU o AAA, y H es A, C o U. En el caso del cambio de marco +1, la secuencia resbaladiza contiene codones para los cuales el ARNt correspondiente es más raro, y el cambio de marco se ve favorecido porque el codón en el nuevo marco tiene un ARNt asociado más común. [13] Un ejemplo de una secuencia resbaladiza es el poliA en el ARNm, que se sabe que induce el deslizamiento del ribosoma incluso en ausencia de otros elementos. [16]

Estructura secundaria del ARN

El desplazamiento eficiente del marco de lectura de los ribosomas generalmente requiere la presencia de una estructura secundaria de ARN para mejorar los efectos de la secuencia deslizante. [12] Se cree que la estructura del ARN (que puede ser un bucle de tallo o un pseudonudo ) detiene al ribosoma en el sitio deslizante durante la traducción, lo que lo obliga a reubicarse y continuar la replicación desde la posición -1. Se cree que esto ocurre porque la estructura bloquea físicamente el movimiento del ribosoma al quedarse atascada en el túnel del ARNm del ribosoma. [2] Este modelo está respaldado por el hecho de que la fuerza del pseudonudo se ha correlacionado positivamente con el nivel de desplazamiento del marco de lectura del ARNm asociado. [3] [17]

A continuación se muestran ejemplos de estructuras secundarias predichas para elementos de cambio de marco que se ha demostrado que estimulan el cambio de marco en una variedad de organismos. La mayoría de las estructuras mostradas son bucles de tallo, con la excepción de la estructura de pseudonudo ALIL (bucle apical-bucle interno). En estas imágenes, los círculos más grandes e incompletos de ARNm representan regiones lineales. Las estructuras secundarias de "bucles de tallo", donde los "tallos" están formados por una región de apareamiento de bases de ARNm con otra región en la misma cadena, se muestran sobresaliendo del ADN lineal. La región lineal de la señal de cambio de marco ribosómico del VIH contiene una secuencia deslizante UUU UUU A altamente conservada; muchas de las otras estructuras predichas también contienen candidatos para secuencias deslizantes.

Las secuencias de ARNm en las imágenes se pueden leer de acuerdo con un conjunto de pautas. Si bien A, T, C y G representan un nucleótido particular en una posición, también hay letras que representan ambigüedad y que se utilizan cuando podría aparecer más de un tipo de nucleótido en esa posición. Las reglas de la Unión Internacional de Química Pura y Aplicada ( IUPAC ) son las siguientes: [18]

Estos símbolos también son válidos para el ARN, excepto que U (uracilo) reemplaza a T (timina). [18]

Elementos trans-actuantes

Se ha descubierto que las moléculas pequeñas, las proteínas y los ácidos nucleicos estimulan los niveles de cambio de marco. Por ejemplo, el mecanismo de un bucle de retroalimentación negativa en la vía de síntesis de poliaminas se basa en que los niveles de poliaminas estimulan un aumento de los cambios de marco +1, lo que da como resultado la producción de una enzima inhibidora . También se ha demostrado que ciertas proteínas que son necesarias para el reconocimiento de codones o que se unen directamente a la secuencia de ARNm modulan los niveles de cambio de marco. Las moléculas de microARN (miARN) pueden hibridarse con una estructura secundaria de ARN y afectar su resistencia. [6]

Véase también

Referencias

  1. ^ Atkins JF, Loughran G, Bhatt PR, Firth AE, Baranov PV (septiembre de 2016). "Desplazamiento del marco de lectura ribosomal y deslizamiento transcripcional: de la esteganografía y criptografía genéticas al uso adventicio". Nucleic Acids Research . 44 (15): 7007–7078. doi :10.1093/nar/gkw530. PMC  5009743 . PMID  27436286.
  2. ^ abcde Napthine S, Ling R, Finch LK, Jones JD, Bell S, Brierley I, Firth AE (junio de 2017). "El desplazamiento del marco de lectura ribosomal dirigido por proteínas regula temporalmente la expresión génica". Nature Communications . 8 : 15582. Bibcode :2017NatCo...815582N. doi :10.1038/ncomms15582. PMC 5472766 . PMID  28593994. 
  3. ^ abc Ketteler R (2012). "Sobre el cambio de marco de lectura ribosomal programado: los proteomas alternativos". Frontiers in Genetics . 3 : 242. doi : 10.3389/fgene.2012.00242 . PMC 3500957 . PMID  23181069. 
  4. ^ ab Mulroney, Thomas E.; Pöyry, Tuija; Yam-Puc, Juan Carlos; Óxido, María; Harvey, Robert F.; Kalmar, Lajos; Horner, Emily; Cabina, Lucy; Ferreira, Alejandro P.; Stoneley, Marcos; Sawarkar, Ritwick; Mentzer, Alexander J.; Lilley, Kathryn S.; Smales, C. Mark; von der Haar, Tobias (6 de diciembre de 2023). "La N1-metilpseudouridilación del ARNm provoca un cambio de marco ribosómico +1". Naturaleza . 625 (7993): 189–194. doi : 10.1038/s41586-023-06800-3 . ISSN  1476-4687. PMC 10764286 . PMID  38057663. 
  5. ^ Ivanov IP, Atkins JF (2007). "Desplazamiento del marco ribosómico en la decodificación de ARNm de antizimas de levaduras y protistos a humanos: cerca de 300 casos revelan una diversidad notable a pesar de la conservación subyacente". Nucleic Acids Research . 35 (6): 1842–1858. doi :10.1093/nar/gkm035. PMC 1874602 . PMID  17332016. 
  6. ^ ab Dever TE, Dinman JD, Green R (agosto de 2018). "Elongación de la traducción y recodificación en eucariotas". Cold Spring Harbor Perspectives in Biology . 10 (8): a032649. doi :10.1101/cshperspect.a032649. PMC 6071482 . PMID  29610120. 
  7. ^ ab Jacks T, Power MD, Masiarz FR, Luciw PA, Barr PJ, Varmus HE (enero de 1988). "Caracterización del cambio de marco ribosómico en la expresión de gag-pol del VIH-1". Nature . 331 (6153): 280–283. Bibcode :1988Natur.331..280J. doi :10.1038/331280a0. PMID  2447506. S2CID  4242582.
  8. ^ ab Jacks T, Madhani HD, Masiarz FR, Varmus HE (noviembre de 1988). "Señales para el cambio de marco de lectura ribosómico en la región gag-pol del virus del sarcoma de Rous". Cell . 55 (3): 447–458. doi :10.1016/0092-8674(88)90031-1. PMC 7133365 . PMID  2846182. 
  9. ^ Jagger BW, Wise HM, Kash JC, Walters KA, Wills NM, Xiao YL, Dunfee RL, Schwartzman LM, Ozinsky A, Bell GL, Dalton RM, Lo A, Efstathiou S, Atkins JF, Firth AE, Taubenberger JK, Digard P (julio de 2012). "Una región codificante de proteínas superpuesta en el segmento 3 del virus de la influenza A modula la respuesta del huésped". Science . 337 (6091): 199–204. Bibcode :2012Sci...337..199J. doi :10.1126/science.1222213. PMC 3552242 . PMID  22745253. 
  10. ^ Advani VM, Dinman JD (enero de 2016). "Reprogramación del código genético: el papel emergente del cambio de marco ribosómico en la regulación de la expresión génica celular". BioEssays . 38 (1): 21–26. doi :10.1002/bies.201500131. PMC 4749135 . PMID  26661048. 
  11. ^ Crick FH (agosto de 1966). "Emparejamiento codón-anticodón: la hipótesis del tambaleo". Journal of Molecular Biology . 19 (2): 548–555. doi :10.1016/S0022-2836(66)80022-0. PMID  5969078.
  12. ^ ab Brierley I (agosto de 1995). "ARN virales con cambio de marco ribosómico". The Journal of General Virology . 76 (Pt 8) (8): 1885–1892. doi : 10.1099/0022-1317-76-8-1885 . PMID  7636469.
  13. ^ abcd Harger JW, Meskauskas A, Dinman JD (septiembre de 2002). "Un "modelo integrado" de cambio de marco ribosómico programado". Tendencias en ciencias bioquímicas . 27 (9): 448–454. doi :10.1016/S0968-0004(02)02149-7. PMID  12217519.
  14. ^ Gurvich OL, Baranov PV, Gesteland RF, Atkins JF (junio de 2005). "Los niveles de expresión influyen en el cambio de marco ribosómico en los codones de arginina raros en tándem AGG_AGG y AGA_AGA en Escherichia coli". Revista de Bacteriología . 187 (12): 4023–4032. doi :10.1128/JB.187.12.4023-4032.2005. PMC 1151738 . PMID  15937165. 
  15. ^ Caliskan N, Katunin VI, Belardinelli R, Peske F, Rodnina MV (junio de 2014). "Desplazamiento programado del marco de lectura −1 mediante partición cinética durante la translocación impedida". Cell . 157 (7): 1619–1631. doi : 10.1016/j.cell.2014.04.041 . PMC 7112342 . PMID  24949973. 
  16. ^ Arthur L, Pavlovic-Djuranovic S, Smith-Koutmou K, Green R, Szczesny P, Djuranovic S (julio de 2015). "Control traduccional mediante secuencias ricas en A que codifican lisina". Science Advances . 1 (6): e1500154. Bibcode :2015SciA....1E0154A. doi :10.1126/sciadv.1500154. PMC 4552401 . PMID  26322332. 
  17. ^ Hansen TM, Reihani SN, Oddershede LB, Sørensen MA (abril de 2007). "Correlación entre la fuerza mecánica de los pseudonudos del ARN mensajero y el cambio de marco ribosómico". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 104 (14): 5830–5835. Bibcode :2007PNAS..104.5830H. doi : 10.1073/pnas.0608668104 . PMC 1838403 . PMID  17389398. 
  18. ^ abc Nomenclature Committee of the International Union of Biochemistry (NC-IUB) (1984). "Nomenclature for Incompletely Specified Bases in Nucleic Acid Sequences" (Nomenclatura para bases incompletamente especificadas en secuencias de ácidos nucleicos) . Consultado el 4 de febrero de 2008 .
  19. ^ Mazauric MH, Licznar P, Prère MF, Canal I, Fayet O (julio de 2008). "Pseudonudos de ARN de bucle interno-apical: un nuevo tipo de estimulador del desplazamiento del marco de lectura de la traducción en −1 en bacterias". The Journal of Biological Chemistry . 283 (29): 20421–20432. doi : 10.1074/jbc.M802829200 . PMID  18474594.
  20. ^ Ivanov IP, Anderson CB, Gesteland RF, Atkins JF (junio de 2004). "Identificación de un nuevo pseudonudo estimulador del cambio de marco de lectura del ARNm +1 de antizima en un subconjunto de diversos invertebrados y su aparente ausencia en especies intermedias". Journal of Molecular Biology . 339 (3): 495–504. doi :10.1016/j.jmb.2004.03.082. PMC 7125782 . PMID  15147837. 
  21. ^ Baranov PV, Henderson CM, Anderson CB, Gesteland RF, Atkins JF, Howard MT (febrero de 2005). "Desplazamiento del marco de lectura ribosomal programado en la decodificación del genoma del SARS-CoV". Virología . 332 (2): 498–510. doi : 10.1016/j.virol.2004.11.038 . PMC 7111862 . PMID  15680415. 
  22. ^ Larsen B, Gesteland RF, Atkins JF (agosto de 1997). "Sondeo estructural y análisis mutagénico del bucle de tallo necesario para el desplazamiento del marco de lectura ribosómico de Escherichia coli dnaX: eficiencia programada del 50%". Journal of Molecular Biology . 271 (1): 47–60. doi :10.1006/jmbi.1997.1162. PMC 7126992 . PMID  9300054. 

Enlaces externos