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Transformación de cloruro de calcio

La transformación de cloruro de calcio ( CaCl 2 ) es una técnica de laboratorio en biología de células procarióticas (bacterianas) . [1] La adición de cloruro de calcio a una suspensión celular promueve la unión del ADN plasmídico a los lipopolisacáridos (LPS). Los iones de calcio cargados positivamente atraen tanto la columna vertebral del ADN con carga negativa como los grupos cargados negativamente en el núcleo interno del LPS. El ADN plasmídico puede luego pasar a la célula mediante un choque térmico , donde las células enfriadas (+4 grados Celsius) se calientan a una temperatura más alta (+42 grados Celsius) durante un corto tiempo.

Historia de la transformación bacteriana.

Frederick Griffith publicó el primer informe sobre el potencial de transformación de las bacterias en 1928. [2] Griffith observó que los ratones no sucumbían al tipo "áspero" de neumococo ( Streptococcus pneumoniae ), conocido como no virulento, pero sí sucumbían al tipo "suave" cepa, que se conoce como virulenta. La virulencia de la cepa suave podría suprimirse mediante la eliminación del calor. Sin embargo, cuando la cepa rugosa no virulenta se combinó con la cepa suave muerta por calor, la cepa rugosa logró adquirir el fenotipo suave y así volverse virulenta. La investigación de Griffith indicó que el cambio fue provocado por una sustancia no viva y termoestable generada a partir de la cepa suave. Más tarde, Oswald Avery, Colin MacLeod y Maclyn McCarty identificaron esta sustancia transformacional como ADN en 1944. [3]

Principio de transformación del cloruro de calcio.

Dado que el ADN es una molécula muy hidrófila , a menudo no puede atravesar la membrana celular bacteriana. Por tanto, es necesario hacer que las bacterias sean competentes para poder internalizar el ADN . Esto se puede lograr suspendiendo bacterias en una solución con una alta concentración de calcio , lo que crea pequeños agujeros en las células de la bacteria [ cita requerida ] . La suspensión de calcio, junto con la incubación del ADN junto con células competentes en hielo, seguida de un breve choque térmico, provocará directamente que el ADN extracromosómico entre forzosamente en la célula. [4]

Según investigaciones anteriores, las moléculas del receptor de LPS en la superficie celular competente se unen a una molécula de ADN desnuda . [1] Esta unión se produce debido al hecho de que las moléculas de ADN cargadas negativamente y el LPS forman complejos de coordinación con los cationes divalentes. Debido a su tamaño, el ADN no puede atravesar por sí solo la membrana celular para llegar al citoplasma. La membrana celular de las células tratadas con CaCl 2 se despolariza severamente durante la etapa de choque térmico y, como resultado, la caída en el potencial de membrana reduce la naturaleza negativa del potencial interno de la célula, permitiendo que el ADN cargado negativamente fluya hacia el interior de la célula. . Posteriormente, mediante un posterior choque frío, el potencial de membrana puede volver a elevarse a su valor inicial. [4]

Células competentes

Las células competentes son células bacterianas con paredes celulares rediseñadas que facilitan el paso del ADN extraño. Sin tratamientos químicos o eléctricos particulares que las hagan capaces, la mayoría de los tipos de células no pueden absorber el ADN con éxito , por esa razón, el tratamiento con iones de calcio es el procedimiento típico para modificar las bacterias para que sean permeables al ADN. [5] En las bacterias, la competencia está estrechamente regulada y diferentes especies bacterianas tienen diferentes características relacionadas con la competencia. Aunque comparten algunas similitudes, las proteínas de competencia generadas por bacterias Gram positivas y Gram negativas son diferentes. [6]

Competencia Natural

La competencia natural se resume en tres métodos mediante los cuales las bacterias pueden adquirir ADN de su entorno: conjugación , transformación y transducción . [7] A medida que el ADN se inserta en la célula durante la transformación, las células receptoras deben encontrarse en cierta condición fisiológica conocida como estado competente para poder aceptar el ADN en transformación . [6] Una vez que el ADN ha entrado en el citoplasma de la célula, enzimas como la nucleasa pueden descomponerlo. En los casos en los que el ADN es extremadamente similar al material genético de la propia célula, las enzimas reparadoras del ADN lo recombinan con el cromosoma. [8]

Competencia artificial

Evidentemente, los genes de una célula no incluyen ninguna información sobre competencia artificial. Este tipo de competencia requiere un proceso de laboratorio que cree condiciones que no suelen existir en la naturaleza para que las células puedan volverse permeables al ADN . [9] Aunque la eficiencia de la transformación es a menudo pobre, este proceso es relativamente simple y rápido de aplicar en la ingeniería genética bacteriana. Mandel e Higa, [10] quienes crearon un procedimiento sencillo basado en remojar las células en CaCl 2 frío , proporcionaron la base para obtener células sintéticas competentes. La transformación química, como la transformación con cloruro de calcio y la electroporación , son los métodos más utilizados para transformar células bacterianas, como las células de E. coli , con ADN plasmídico . [5]

Método para la transformación del cloruro de calcio.

El tratamiento con cloruro de calcio se utiliza generalmente para la transformación de E. coli y otras bacterias. [11] Mejora la incorporación del ADN plasmídico por parte de la célula bacteriana, promoviendo la transformación genética . El ADN plasmídico puede unirse al LPS agregándolo a la solución celular junto con CaCl 2 . [12] Por lo tanto, cuando se aplica un choque térmico, la columna vertebral del ADN cargada negativamente y el LPS se combinan, permitiendo que el ADN plasmídico ingrese a la célula bacteriana. [13]

El proceso se resume en los siguientes pasos según el protocolo de The Under Graduate Journal of Experimental Microbiology and Immunology (UJEMI) :

  1. Preparar un cultivo bacteriano en caldo LB.
  2. Antes de iniciar el procedimiento principal, utilice el volumen requerido del cultivo previamente realizado para inocular el volumen requerido de caldo LB fresco.
  3. Pellet las células centrifugando a 4°C a 4000 rpm durante 10 minutos.
  4. Verter el sobrenadante y resuspender las células en 20 ml de CaCl 2 0,1 M helado , luego dejar inmediatamente en hielo durante 20 minutos.
  5. Centrifugue como en el paso 3, se obtendrá un sedimento más difundido como indicación de células competentes.
  6. Resuspender en CaCl 2 frío como en el paso 4.
  7. Vierta el sobrenadante y resuspenda las células en 5 ml de CaCl 2 0,1 M helado junto con glicerol al 15 % para combinar los sedimentos.
  8. Transfiera las suspensiones a tubos de vidrio delgados y estériles para lograr choques térmicos efectivos.
  9. Agregue la cantidad requerida de mg de ADN en los tubos de suspensión y déjelos inmediatamente en hielo.
  10. Coloque los tubos en un baño de agua a 42 °C durante 30 segundos y vuelva a colocarlos inmediatamente en hielo durante 2 minutos.
  11. Añadir 1 ml de medio LB o SOC
  12. Transfiera cada tubo a la cantidad requerida de caldo LB en ml en un matraz nuevo.
  13. Incubar en consecuencia agitando a 37 °C a 200 rpm durante 60 min; sin embargo, se recomienda dejarlo durante 90 minutos para permitir que las bacterias se recuperen.
  14. Coloque en placas diluciones 1:10 y 1:100 de los cultivos incubados en placas selectivas/de detección (por ejemplo, ampicilina y/o X-gal) en placas LB a las que se han añadido los antibióticos que se utilizarán para la selección.
  15. Incubar durante la noche a 37°C.
  16. Finalmente observar colonias aisladas en las placas.

Referencias

  1. ^ ab Dagert, M.; Ehrlich, S. (1979). "La incubación prolongada en cloruro de calcio mejora la competencia de las células de Escherichia coli". Gen.6 (1): 23–28. doi :10.1016/0378-1119(79)90082-9. PMID  383576.
  2. ^ Griffith, Fred (enero de 1928). "La importancia de los tipos neumocócicos". Revista de Higiene . 27 (2): 113-159. doi :10.1017/s0022172400031879. ISSN  0022-1724. PMC 2167760 . PMID  20474956. S2CID  44003929. 
  3. ^ Avery, Oswald T.; MacLeod, Colin M.; McCarty, Maclyn (mayo de 1995). "Estudios sobre la naturaleza química de la sustancia que induce la transformación de tipos neumocócicos". Medicina Molecular . 1 (4): 344–365. doi :10.1007/bf03401572. ISSN  1076-1551. PMC 2229990 . PMID  8521292. 
  4. ^ ab "Técnica de transformación de CaCl2". Centro de aprendizaje MyBioSource . Consultado el 4 de enero de 2023 .
  5. ^ ab Fregel, R.; Rodríguez, V.; Cabrera, VM (abril de 2008). "El microondas mejoró la transformación de Escherichia coli". Letras en Microbiología Aplicada . 46 (4): 498–499. doi :10.1111/j.1472-765X.2008.02333.x. ISSN  0266-8254. PMID  18284557. S2CID  14569911.
  6. ^ ab Seitz, Patricio; Blokesch, Melanie (2013). "Señales y vías reguladoras implicadas en la competencia natural y la transformación en bacterias Gram-negativas patógenas y ambientales". Reseñas de microbiología FEMS . 37 (3): 336–363. doi : 10.1111/j.1574-6976.2012.00353.x . PMID  22928673. S2CID  30861416.
  7. ^ Fischer, Wolfgang; Hofreuter, Dirk; Haas, Rainer (9 de abril de 2014), "Transformación, recombinación y reparación naturales", Helicobacter pylori , Washington, DC, EE. UU.: ASM Press, págs. 249–257, doi :10.1128/9781555818005.ch22, ISBN 9781683672388, recuperado el 4 de enero de 2023
  8. ^ "Ciencias biológicas. Quinta edición. Volumen 1: La célula, la genética y el desarrollo. Por Scott Freeman, Lizabeth Allison, Michael Black, Greg Podgorski, Kim Quillin, Jon Monroe y Emily Taylor. Boston (Massachusetts): Pearson. $ 85,20 (artículo) xxxi + 443 pág.; A:1–A:52; :1–I:42 (índice). ISBN 978-0-321-84180-3. La revisión trimestral de biología . 88 (4): 329. Diciembre de 2013. doi :10.1086/673770. ISSN  0033-5770.
  9. ^ Yoshida, Naoto; Sato, Misa (julio de 2009). "Absorción de plásmidos por bacterias: una comparación de métodos y eficiencias". Microbiología y Biotecnología Aplicadas . 83 (5): 791–798. doi :10.1007/s00253-009-2042-4. ISSN  0175-7598. PMID  19471921. S2CID  24211143.
  10. ^ Mandel, M.; Higa, A. (octubre de 1970). "Infección por ADN de bacteriófagos dependientes de calcio". Revista de biología molecular . 53 (1): 159-162. doi :10.1016/0022-2836(70)90051-3. ISSN  0022-2836. PMID  4922220.
  11. ^ Higuchi‐Takeuchi, Mieko; Morisaki, Kumiko; Numata, Keiji (enero de 2020). "Método para la fácil transformación de bacterias fotosintéticas de color púrpura marino utilizando células químicamente competentes". MicrobiologíaAbierto . 9 (1): e00953. doi :10.1002/mbo3.953. ISSN  2045-8827. PMC 6957439 . PMID  31638342. 
  12. ^ Hanahan, Douglas (junio de 1983). "Estudios sobre transformación de Escherichia coli con plásmidos". Revista de biología molecular . 166 (4): 557–580. doi :10.1016/s0022-2836(83)80284-8. ISSN  0022-2836. PMID  6345791.
  13. ^ Nakata, Yasuhiko; Tang, Xiaoren; Yokoyama, Kazunari K. (1996), "Preparación de células competentes para la transformación de plásmidos de alta eficiencia de Escherichia coli", Protocolos de biblioteca de ADNc , vol. 69, Nueva Jersey: Humana Press, págs. 129–138, doi :10.1385/0-89603-383-x:129, ISBN 0-89603-383-X, PMID  9116846 , consultado el 4 de enero de 2023

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