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Policromófilo

Polychromophilus es un género de parásitos eucariotas intracelulares obligados que infectan a murciélagos de todos los continentes excepto la Antártida. Se transmiten por moscas de murciélago, que actúan como insectos vectores y como sitio de esporogenia del parásito . Polychromophilus sigue un ciclo de vida haemospororidiano bastante típico , con gametocitos y gametos restringidos al torrente sanguíneo del huésped y merontos que infectan órganos, sobre todo los pulmones y el hígado. La especie tipo es Polychromophilus melanipherus y fue descrita por Dionisi en 1898.

Taxonomía

Polychromophilus fue descrito por primera vez por Dionisi en 1898, quien también diferenció entre las dos primeras especies, Polychromophilus murinus y Polychromophilus melanipherus . Ambas especies originales recibieron el nombre de sus hospedadores primarios: Vespertilio murinus y Miniopterus schreibersi respectivamente.

En 1906, Schingareff logró observar y describir merozoitos dentro de macrófagos de Myotis daubentoni y Miniopterus schreibersi y sospechó que las moscas nycteribidas actuaban como insectos vectores. Esto no se demostró hasta que Corradetti descubrió esporozoitos dentro de dichas moscas en 1936, y fue respaldado por investigaciones posteriores. [1]

El género se dividió en dos subgéneros: Polychromophilus y Bioccala, pero el subgénero Bioccala fue elevado a la categoría de género en 1984. [2]

Este género, junto con Haemoproteus y Hepatocystis, parece ser un clado hermano de Plasmodium . Parece haber evolucionado a partir del clado aviar/saurio de Plasmodium . [3]

Ciclo vital

Los esporozoitos de Polychromophilus permanecen dentro de las glándulas salivales de sus insectos vectores hasta que se alimentan de sangre. Los esporozoitos ingresan al torrente sanguíneo del huésped primario e infectan los eritrocitos , dentro de los cuales el parásito se desarrolla en gametocitos. Luego, los gametocitos proceden a reproducirse sexualmente a través de la gametogonía, que implica la exflagelación del parásito formando numerosos microgametos y macrogametos. [4]

Los microgametos y macrogametos permanecen en la sangre hasta que son absorbidos por un insecto vector durante otra ingestión de sangre. Luego, los gametos se fusionan en pares dentro del intestino del insecto y el macrogameto fertilizado se convierte en un oocineto . Este luego ingresa al cuerpo del insecto vector y se desarrolla en un ooquiste entre las células epiteliales y la membrana basal del intestino medio. [4] [5]

El ooquiste comienza entonces a dividirse en numerosos esporozoitos que permanecen dentro de la gruesa cápsula del ooquiste. Al madurar, el ooquiste estalla y libera los esporozoitos en el insecto vector, donde migran hacia la glándula salival listos para continuar su ciclo. La ruptura de los ooquistes deja grandes cuerpos residuales dentro del insecto vector, que no continúan el desarrollo de los esporozoitos. [4]

Aunque no se comprende tan bien, se ha observado que la merogonía del parásito se produce en una variedad de órganos y tipos de células del huésped primario, el murciélago. Se han descubierto cuerpos grandes en órganos como el bazo y los pulmones, mientras que se ha descubierto que los merontes pequeños se desarrollan dentro de las células de Kupffer del hígado. Los macrófagos suelen transportar los merontes por todo el cuerpo en la sangre. [4]

Huéspedes y hábitat

El género Polychromophilus infecta a una amplia variedad de murciélagos y está presente en todos los continentes habitados por sus hospedadores. La especie tipo, Polychromophilus melanipherus , se observó por primera vez en la Campaña romana dentro del hospedador tipo Miniopterus schreibersi . Desde entonces, se ha descubierto la presencia del parásito en numerosos lugares del mundo, incluidos Israel, Australia, el Congo, Etiopía, Brasil y América del Norte. [1]

Los insectos vectores de Polychromophilus son en su totalidad moscas murciélago de tres géneros diferentes: Basilia , Nycteribia y Penicillidia . No se conocen otros insectos que transmitan el parásito.

Registros de host

Descripción

Los esporozoitos tienen una forma alargada y recta o ligeramente curvada, y no son particularmente móviles. Cuando se preparan con una tinción de Giemsa , se hace visible su núcleo ovalado y ligeramente poco convencional. Su película consta de una membrana externa delgada separada de una membrana interna doble, debajo de la cual se encuentran 21 microtúbulos subpeliculares espaciados uniformemente alrededor de la periferia. Hay muchos micronemas presentes en la punta anterior del esporozoito, y una única mitocondria que contiene crestas tubulares se encuentra detrás del núcleo. [4]

Los gametocitos tienden a ocupar casi la totalidad de su eritrocito huésped y, por lo tanto, están cubiertos por una fina capa de eritrocito. Están contenidos dentro de una película trilaminar, que consiste en una membrana vacuolar parasitófora , el plasmalema del gametocito y una doble membrana interna. Múltiples orgánulos intracelulares son visibles dentro de los gametocitos, incluyendo mitocondrias con crestas tubulares, un aparato de Golgi, micronemas, lisosomas primarios y un centro organizador de microtúbulos que comprende dos centriolos . No hay citosomas visibles. Los microgametocitos se tiñen de rosa con Giemsa y contienen un gran núcleo difuso que carece de un nucléolo visible. Los macrogametocitos, por otro lado, se tiñen de azul violeta debido a un mayor número de ribosomas dentro del citoplasma y contienen un pequeño núcleo distintivo con un nucléolo claramente visible. [8] Se sabe que los gametocitos infectan doblemente al mismo eritrocito, una característica considerada característica de algunas especies. [4]

Los ooquistes están cubiertos por una cápsula amorfa que comprende una capa granular interna y una capa más clara externa. A menudo se observa que la cápsula forma invaginaciones en el citoplasma del ooquiste. El ooquiste generalmente contiene múltiples mitocondrias crestadas y los ooquistes maduros están repletos de esporozoitos. [4]

Referencias

  1. ^ ab Garnham, PCC (1973). "La zoogeografía de Polychromophilus y descripción de una nueva especie de Gregarine (Lankesteria galliardi)". Annales de Parasitologie Humaine et Comparée . 48 (2): 231–242. doi : 10.1051/parásito/1973482231 . ISSN  0003-4150. PMID  4206622.
  2. ^ Landau, yo; Baccam, D.; Ratanaworabhan, N.; Yenbutra, S.; Boulard, Y.; Chabaud, AG (1984). "Nouveaux haemoproteidae parásitos de quiroptères en Tailandia". Annales de Parasitologie Humaine et Comparée . 59 (5): 437–447. doi : 10.1051/parásito/1984595437 . Icono de acceso abierto
  3. ^ Witsenburg F, Salamin N, Christe P (2012). "Los cambios evolutivos de hospedador de Polychromophilus: una filogenia multigénica del género de la malaria en murciélagos sugiere una segunda invasión de mamíferos por un parásito hemosporidio". Malar. J. 11 : 53. doi : 10.1186/1475-2875-11-53 . PMC 3342143. PMID  22356874 . 
  4. ^ abcdefg Gardner, RA; Molyneux, DH (junio de 1988). "Polychromophilus murinus: un parásito de la malaria en murciélagos: historia de vida y estudios ultraestructurales". Parasitología . 96 (3): 591–605. doi :10.1017/s0031182000080215. ISSN  0031-1820. PMID  3136420.
  5. ^ Fayer, R. (1 de enero de 1986). "Guía ilustrada de los protozoos". Revista estadounidense de medicina tropical e higiene . 35 (1): 215–216. doi :10.4269/ajtmh.1986.35.215. ISSN  0002-9637.
  6. ^ ab Landau, I.; Colofonia, G.; Miltgen, F.; Hugot, J.-P.; Léger, N.; Beveridge, I.; Baccam, D. (1980). "Sobre el género Polychromophilus (Haemoproteidae, parásito de Microchiroptères)". Annales de Parasitologie Humaine et Comparée . 55 (1): 13–32. doi : 10.1051/parásito/1980551013 . Icono de acceso abierto
  7. ^ ab Megali A, Yannic G, Christe P (2011). "Enfermedad en la oscuridad: la caracterización molecular de Polychromophilus murinus en murciélagos de zonas templadas reveló una distribución mundial de esta enfermedad similar a la malaria". Mol. Ecol . 20 (5): 1039–48. doi :10.1111/j.1365-294X.2010.04905.x. PMID  21073585.
  8. ^ Garnham, PCC; Lainson, R.; Shaw, JJ (1971). "[SIN TÍTULO DISPONIBLE]". Memorias del Instituto Oswaldo Cruz . 69 (1): 119-125. doi : 10.1590/s0074-02761971000100009 . ISSN  0074-0276. PMID  4997955.

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