stringtranslate.com

Amplificación isotérmica mediada por bucle

Proceso de amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) [1]

La amplificación isotérmica mediada por bucle ( LAMP ) es una técnica de un solo tubo para la amplificación de ADN [2] con fines diagnósticos y una alternativa de bajo coste para detectar ciertas enfermedades. [3] LAMP es una técnica de amplificación isotérmica de ácidos nucleicos . A diferencia de la tecnología de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), en la que la reacción se lleva a cabo con una serie de pasos o ciclos de temperatura alterna, la amplificación isotérmica se lleva a cabo a una temperatura constante y no requiere un termociclador . LAMP fue inventada en 1998 por Eiken Chemical Company en Tokio. [1] La amplificación isotérmica mediada por bucle de transcripción inversa (RT-LAMP) combina LAMP con un paso de transcripción inversa para permitir la detección de ARN.

Amplificación

Cebadores de amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) [1]
Producto de amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) [1]

En LAMP, la secuencia diana se amplifica a una temperatura constante de 60–65 °C (140–149 °F) utilizando dos o tres conjuntos de cebadores y un fragmento de Klenow Bst similar a la polimerasa con alta actividad de desplazamiento de cadena además de una actividad de replicación. Normalmente, se utilizan 4 cebadores diferentes para amplificar 6 regiones distintas en el gen diana, lo que aumenta la especificidad. Un par adicional de "cebadores de bucle" puede acelerar aún más la reacción. [4] La cantidad de ADN producida en LAMP es considerablemente mayor que la amplificación basada en PCR . [1] El diseño de cebadores se puede realizar utilizando varios programas, como PrimerExplorer, MorphoCatcher, [5] y NEB LAMP Primer Design Tool. Para la detección de polimorfismos de nucleótidos conservadores y específicos de la especie, en la mayoría de las aplicaciones de diagnóstico una combinación de PrimerExplorer y MorphoCatcher es muy útil, porque permite la localización de nucleótidos específicos de la especie en los extremos 3' de los cebadores para mejorar la especificidad de las reacciones.

Esquema de un LAMP de biomarcadores de ácidos nucleicos a partir de muestras de aguas residuales sin tratar, para cuantificar rápidamente el ADN mitocondrial (ADNmt) específico de humanos. [6]

Detección

El producto de amplificación se puede detectar mediante fotometría , midiendo la turbidez causada por el precipitado de pirofosfato de magnesio en solución como subproducto de la amplificación. [7] Esto permite una fácil visualización a simple vista o mediante enfoques de detección fotométrica simples para volúmenes pequeños. La reacción se puede seguir en tiempo real ya sea midiendo la turbidez [8] o mediante fluorescencia utilizando colorantes intercalantes como SYTO 9. [9]

Los colorantes, como el verde SYBR , se pueden utilizar para crear un cambio de color visible que se puede ver a simple vista sin la necesidad de un equipo costoso, o para una respuesta que se puede medir con mayor precisión mediante instrumentación. Las moléculas de colorante se intercalan o marcan directamente el ADN y, a su vez, se pueden correlacionar con el número de copias presentes inicialmente. Por lo tanto, LAMP también puede ser cuantitativo. La detección en tubo de la amplificación de ADN LAMP es posible utilizando calceína cargada con manganeso que comienza a fluorescer tras la complejación del manganeso con pirofosfato durante la síntesis de ADN in vitro. [10] Otro método para la detección visual de los amplicones LAMP a simple vista se basó en su capacidad para hibridar con ADN monocatenario (ssDNA) unido a nanopartículas de oro (AuNP) complementarias y así evitar el cambio de color normal de rojo a azul púrpura que de otro modo ocurriría durante la agregación inducida por sal de las partículas de oro. Por lo tanto, un método LAMP combinado con detección de amplicones por AuNP puede tener ventajas sobre otros métodos en términos de tiempo de ensayo reducido, confirmación de amplicones por hibridación y uso de equipos más simples (es decir, no se necesita un termociclador, un equipo de electroforesis o un transiluminador UV). [11] [12]

Detecciones colorimétricas [13]

Los indicadores de colorante dependientes del pH, como el rojo fenol, inducen un cambio de color de rosa a amarillo cuando el valor de pH de la reacción disminuye tras la amplificación del ADN. [13] Debido a su pronunciado cambio de color, esta es la lectura más comúnmente utilizada para los ensayos RT-LAMP. [13] Sin embargo, la lectura dependiente del cambio de pH requiere una solución de reacción débilmente amortiguada, lo que plantea un gran desafío cuando se utilizan entradas de muestra crudas con pH variable. [13] Un segundo ensayo colorimétrico utiliza indicadores de iones metálicos como el azul de hidroxinaftol (HNB), que cambia de color de púrpura a azul tras una caída de iones Mg 2+ libres, que forman un precipitado de pirofosfato de Mg- tras la amplificación del ADN. [13]

Usos y beneficios

LAMP es una técnica de amplificación de ADN relativamente nueva, que debido a su simplicidad, robustez y bajo costo podría brindar importantes ventajas. LAMP tiene el potencial de ser utilizada como un ensayo de detección simple en el campo o en el punto de atención por parte de los médicos. [14] Debido a que LAMP es isotérmica, lo que erradica la necesidad de termocicladores costosos utilizados en PCR convencional, puede ser un método particularmente útil para el diagnóstico de enfermedades infecciosas en países de ingresos bajos y medios. [15] LAMP se está estudiando ampliamente para detectar enfermedades infecciosas como la filariasis, [16] el virus Zika, [17] la tuberculosis, [18] la malaria, [19] [20] [21] la enfermedad del sueño, [22] y el SARS-CoV-2 . [23] [24] En las regiones en desarrollo, aún debe validarse ampliamente para otros patógenos comunes. [14]

Se ha observado que la LAMP es menos sensible (más resistente) que la PCR a los inhibidores en muestras complejas como la sangre, probablemente debido al uso de una ADN polimerasa diferente (normalmente la ADN polimerasa Bst – Bacillus stearothermophilus – en lugar de la Taq polimerasa como en la PCR). Varios informes describen la detección exitosa de patógenos a partir de muestras mínimamente procesadas como sangre tratada térmicamente, [25] [26] o en presencia de matrices de muestras clínicas. [27] Esta característica de la LAMP puede ser útil en entornos de bajos recursos o de campo donde una extracción convencional de ADN o ARN antes de las pruebas de diagnóstico puede ser poco práctica.

El LAMP también se ha utilizado para ayudar a identificar fluidos corporales. Gracias a su simplicidad, los investigadores pueden analizar una o más muestras con poco tiempo de intervención, lo que ayuda a reducir el tiempo necesario para obtener los resultados. Los investigadores también han podido añadir factores para que la identificación sea aún más sencilla, como el tinte indicador de metal y el rojo fenol, para poder utilizar un teléfono inteligente y el ojo desnudo, respectivamente, para analizar los resultados. [28] [29] [30]

Limitaciones

La LAMP es menos versátil que la PCR, la técnica de amplificación de ácidos nucleicos más consolidada. La LAMP es útil principalmente como técnica de diagnóstico o detección, pero no es útil para la clonación o muchas otras aplicaciones de biología molecular que se pueden hacer con la PCR. Debido a que la LAMP utiliza 4 (o 6) cebadores que se dirigen a 6 (u 8) regiones dentro de un segmento bastante pequeño del genoma, y ​​debido a que el diseño de cebadores está sujeto a numerosas limitaciones, es difícil diseñar conjuntos de cebadores para LAMP "a ojo". Generalmente se utilizan paquetes de software gratuitos, de código abierto [31] o comerciales para ayudar con el diseño de cebadores para LAMP, aunque las limitaciones del diseño de cebadores significan que hay menos libertad para elegir el sitio de destino que con la PCR.

En una aplicación diagnóstica, esto debe equilibrarse con la necesidad de elegir un objetivo apropiado (por ejemplo, un sitio conservado en un genoma viral altamente variable, o un objetivo que sea específico para una cepa particular de patógeno). Es posible que se requieran múltiples secuencias degeneradas para cubrir las diferentes cepas variantes de la misma especie. Una consecuencia de tener un cóctel de iniciadores de este tipo puede ser una amplificación no específica en la amplificación tardía. [ cita requerida ]

Los métodos de multiplexación para LAMP están menos desarrollados que para PCR. El mayor número de cebadores por diana en LAMP aumenta la probabilidad de interacciones cebador-cebador para conjuntos de dianas multiplexadas. El producto de LAMP es una serie de concatémeros de la región diana, lo que da lugar a un patrón de "escalera" o banda característico en un gel, en lugar de una única banda como con PCR. Aunque esto no es un problema cuando se detectan dianas individuales con LAMP, las aplicaciones de PCR multiplex "tradicionales" (de punto final) en las que la identidad de una diana se confirma por el tamaño de una banda en un gel no son factibles con LAMP. La multiplexación en LAMP se ha logrado eligiendo una región diana con un sitio de restricción y digiriéndola antes de pasarla a un gel, de modo que cada producto dé lugar a un tamaño distinto de fragmento, [32] aunque este método añade complejidad al diseño y protocolo experimental.

El uso de una ADN polimerasa que desplaza cadenas en LAMP también excluye el uso de sondas de hidrólisis, por ejemplo, las sondas TaqMan , que dependen de la actividad exonucleasa 5'-3' de la Taq polimerasa. Se ha informado de un enfoque alternativo de multiplexación en tiempo real basado en extintores de fluorescencia. [33]

Se puede añadir el colorante verde SYBR para ver LAMP en tiempo real. Sin embargo, en la fase tardía de amplificación, la amplificación del dímero del cebador puede contribuir a una señal positiva falsa. El uso de pirofosfatasa inorgánica en una mezcla de reacción SYBR permite el uso del análisis de fusión para distinguir la amplificación correcta [34]

Aunque se han propuesto diferentes estrategias de mitigación para los resultados falsos positivos en ensayos basados ​​en este método, la amplificación no específica debido a varios factores, incluida la ausencia de mecanismos de regulación de la temperatura, es una de las principales limitaciones de la amplificación isotérmica mediada por bucle. [35] [36]

Por último, debido a que LAMP requiere temperaturas de incubación elevadas y mantenidas (60–65 °C), se requiere algún tipo de mecanismo de calentamiento, termostato y/o aislante (aunque no necesariamente un termociclador). Este requisito hace que LAMP sea menos adecuada para diagnósticos en el punto de atención en el campo, que idealmente funcionarían a temperatura ambiente. [ cita requerida ]

Investigación

La amplificación asistida por hibridación de ARNasa (RHAM) integra LAMP con la notificación fluorescente mediada por ARNasa HII . Este método emplea un conjunto de cebadores LAMP convencionales para amplificar exponencialmente la secuencia objetivo, seguido de la hibridación de una sonda fluorescente que contiene ribonucleótidos con el producto de amplificación. Luego, la ARNasa HII escinde la sonda, liberando una señal fluorescente que puede detectarse. [37] [38]

Referencias

  1. ^ abcde M. Soroka, B. Wasowicz, A. Rymaszewska: Amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP): ¿el hermano mejor de la PCR? En: Cells. Volumen 10, número 8, julio de 2021, pág. , doi :10.3390/cells10081931, PMID 34440699, PMC  8393631.
  2. ^ Patente estadounidense 6410278, Notomi T, Hase T, "Proceso para sintetizar ácido nucleico", publicada el 25 de junio de 2002, asignada a Eiken Kagaku Kabushiki Kaisha 
  3. ^ Notomi T, Okayama H, Masubuchi H, Yonekawa T, Watanabe K, Amino N, Hase T (2000). "Amplificación isotérmica del ADN mediada por bucle". Nucleic Acids Res . 28 (12): 63e–63. doi :10.1093/nar/28.12.e63. PMC 102748 . PMID  10871386. 
  4. ^ Nagamine K, Hase T, Notomi T (2002). "Reacción acelerada mediante amplificación isotérmica mediada por bucle utilizando cebadores de bucle". Mol. Cell. Probes . 16 (3): 223–9. doi :10.1006/mcpr.2002.0415. PMID  12144774.
  5. ^ Shirshikov, Fedor V.; Pekov, Yuri A.; Miroshnikov, Konstantin A. (26 de abril de 2019). "MorphoCatcher: una herramienta web basada en alineamiento múltiple para la selección de objetivos y el diseño de cebadores específicos de taxón en el método de amplificación isotérmica mediada por bucle". PeerJ . 7 : e6801. doi : 10.7717/peerj.6801 . ISSN  2167-8359. PMC 6487805 . PMID  31086739. 
  6. ^ Yang, Zhugen; Xu, Gaolian; Reboud, Julien; Kasprzyk-Hordern, Barbara; Cooper, Jonathan M. (19 de septiembre de 2017). "Monitoreo de biomarcadores genéticos de población para la epidemiología basada en aguas residuales". Química analítica . 89 (18): 9941–9945. doi : 10.1021/acs.analchem.7b02257 . PMID  28814081.
  7. ^ Mori Y, Nagamine K, Tomita N, Notomi T (2001). "Detección de la reacción de amplificación isotérmica mediada por bucle mediante turbidez derivada de la formación de pirofosfato de magnesio". Biochem. Biophys. Res. Commun . 289 (1): 150–4. doi :10.1006/bbrc.2001.5921. PMID  11708792.
  8. ^ Mori Y, Kitao M, Tomita N, Notomi T (2004). "Turbidimetría en tiempo real de la reacción LAMP para cuantificar el ADN molde". J. Biochem. Biophys. Methods . 59 (2): 145–57. doi :10.1016/j.jbbm.2003.12.005. PMID  15163526.
  9. ^ Njiru ZK, Mikosza AS, Armstrong T, Enyaru JC, Ndung'u JM, Thompson AR (2008). "Método de amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) para la detección rápida de Trypanosoma brucei rhodesiense". PLOS Negl Trop Dis . 2 (1): e147. doi : 10.1371/journal.pntd.0000147 . PMC 2238707 . PMID  18253475. 
  10. ^ Tomita N, Mori Y, Kanda H, Notomi T (2008). "Amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) de secuencias génicas y detección visual simple de productos". Nat Protoc . 3 (5): 877–82. doi :10.1038/nprot.2008.57. PMID  18451795. S2CID  19416838.
  11. ^ Arunrut, Narong; Jitrakorn, Sarocha; Saksmerprome, Vanvimon; Kiatpathomchai, Wansika (agosto de 2019). "Amplificación isotérmica mediada por doble bucle (D-LAMP) utilizando una sonda de nanopartículas de oro colorimétrica para la detección rápida del densovirus infeccioso Penaeus stylirostris (PstDNV) con resultados falsos positivos reducidos de elementos virales endógenos". Acuicultura . 510 : 131–137. Código Bibliográfico :2019Aquac.510..131A. doi :10.1016/j.aquaculture.2019.05.049. S2CID  229449403.
  12. ^ Arunrut, Narong; Tondee, Benyatip; Khumwan, Pakapreud; Kampeera, Jantana; Kiatpathomchai, Wansika (febrero de 2021). "Detección colorimétrica rápida y sensible del microsporidio Enterocytozoon hepatopenaei (EHP) basada en el gen de la proteína de la pared de la espora (SWP) utilizando amplificación isotérmica mediada por bucle combinada con nanopartículas de oro funcionalizadas con ADN como sondas". Acuicultura . 533 : 736206. Bibcode :2021Aquac.53336206A. doi :10.1016/j.aquaculture.2020.736206. S2CID  229449403.
  13. ^ abcde Kellner, Max J.; Ross, James J.; Schnabl, Jakob; Dekens, Marcus PS; Matl, Martin; et al. (2022). "Un ensayo de detección de SARS-CoV-2 rápido, altamente sensible y de acceso abierto para pruebas de laboratorio y en el hogar". Frontiers in Molecular Biosciences . 9 : 801309. doi : 10.3389/fmolb.2022.801309 . hdl : 10261/269628 . ISSN  2296-889X. PMC 9011764 . PMID  35433827.  Este artículo incorpora texto de esta fuente, que está disponible bajo la licencia CC BY 4.0.
  14. ^ ab Sen K, Ashbolt NJ (2011). Microbiología ambiental: tecnología actual y aplicación en el agua . Norfolk, Reino Unido: Caister Academic Press . ISBN 978-1-904455-70-7.[ página necesaria ]
  15. ^ Macarthur G (2009). Diagnóstico de salud global: investigación, desarrollo y regulación. Informe del taller de la Academia de Ciencias Médicas (PDF) . Academia de Ciencias Médicas (Gran Bretaña). ISBN 978-1-903401-20-0Archivado desde el original (PDF) el 16 de mayo de 2018. Consultado el 5 de mayo de 2014 .
  16. ^ Poole, Catherine B.; Li, Zhiru; Alhassan, Andy; Guelig, Dylan; Diesburg, Steven; Tanner, Nathan A.; Zhang, Yinhua; Evans, Thomas C.; LaBarre, Paul; Wanji, Samuel; Burton, Robert A. (2017). "Pruebas colorimétricas para el diagnóstico de la infección filarial y la vigilancia del vector utilizando la amplificación isotérmica mediada por bucle de ácido nucleico no instrumentada (NINA-LAMP)". PLOS ONE . ​​12 (2): e0169011. Bibcode :2017PLoSO..1269011P. doi : 10.1371/journal.pone.0169011 . ISSN  1932-6203. PMC 5310896 . PMID  28199317. 
  17. ^ Calvert, Amanda E.; Biggerstaff, Brad J.; Tanner, Nathan A.; Lauterbach, Molly; Lanciotti, Robert S. (2017). "Detección colorimétrica rápida del virus del Zika en muestras de suero y orina mediante amplificación isotérmica mediada por bucle de transcripción inversa (RT-LAMP)". PLOS ONE . ​​12 (9): e0185340. Bibcode :2017PLoSO..1285340C. doi : 10.1371/journal.pone.0185340 . ISSN  1932-6203. PMC 5612724 . PMID  28945787. 
  18. ^ Geojith G, Dhanasekaran S, Chandran SP, Kenneth J (2011). "Eficacia del ensayo de amplificación isotérmica mediada por asa (LAMP) para la identificación en laboratorio de aislamientos de Mycobacterium tuberculosis en un entorno de recursos limitados". J. Microbiol. Métodos . 84 (1): 71–3. doi :10.1016/j.mimet.2010.10.015. PMID  21047534.
  19. ^ Poon LL, Wong BW, Ma EH, Chan KH, Chow LM, Abeyewickreme W, Tangpukdee N, Yuen KY, Guan Y, Looareesuwan S, Peiris JS (2006). "Prueba molecular sensible y económica para la malaria por Plasmodium falciparum: detección de ADN de Plasmodium falciparum directamente de sangre tratada térmicamente mediante amplificación isotérmica mediada por asa". Clin. Chem . 52 (2): 303–6. doi : 10.1373/clinchem.2005.057901 . PMID  16339303.
  20. ^ Ponaka, Reddy V. et al. | ASTMH 2015 | Detección molecular de Plasmodium con amplificación isotérmica mediada por asa (LAMP) y comparación de sensibilidad con el ensayo PET-PCR | http://www.ilmar.org.il/diasorin/MBI_MalariaPoster2015-ASTMH_JT_rev3.pdf Archivado el 20 de noviembre de 2016 en Wayback Machine
  21. ^ Ponaka, Reddy V. et al. | AMP 2015 | http://www.ilmar.org.il/diasorin/MBI_AMP2015_MalariaPoster102715.pdf Archivado el 20 de noviembre de 2016 en Wayback Machine.
  22. ^ Njiru ZK, Mikosza AS, Matovu E, Enyaru JC, Ouma JO, Kibona SN, Thompson RC, Ndung'u JM (2008). "Tripanosomiasis africana: detección sensible y rápida del subgénero Trypanozoon mediante amplificación isotérmica mediada por bucle (LAMP) del ADN del parásito". Int. J. Parasitol . 38 (5): 589–99. doi :10.1016/j.ijpara.2007.09.006. PMC 7094514 . PMID  17991469. 
  23. ^ Walker, Peter (21 de mayo de 2020). "Se está probando una prueba de coronavirus en el Reino Unido con un tiempo de espera de 20 minutos". The Guardian .
  24. ^ Park, Gun-Soo; Ku, Keunbon; Baek, Seung-Hwa; Kim, Seong-Jun; Kim, Seung Il; Kim, Bum-Tae; Maeng, Jin-Soo (2020). "Desarrollo de ensayos de amplificación isotérmica mediada por bucle de transcripción inversa dirigidos al coronavirus 2 del síndrome respiratorio agudo severo (SARS-CoV-2)". The Journal of Molecular Diagnostics . 22 (6): 729–735. doi :10.1016/j.jmoldx.2020.03.006. PMC 7144851 . PMID  32276051. 
  25. ^ Curtis KA, Rudolph DL, Owen SM (2008). "Detección rápida del VIH-1 mediante transcripción inversa, amplificación isotérmica mediada por bucle (RT-LAMP)". J. Virol. Métodos . 151 (2): 264–70. doi :10.1016/j.jviromet.2008.04.011. PMID  18524393.
  26. ^ Sattabongkot J, Tsuboi T, Han ET, Bantuchai S, Buates S (2014). "Ensayo de amplificación isotérmica mediada por bucle para el diagnóstico rápido de infecciones de malaria en un área endémica en Tailandia". J. Clin. Microbiol . 52 (5): 1471–7. doi :10.1128/JCM.03313-13. PMC 3993686 . PMID  24574279. 
  27. ^ Francois P, Tangomo M, Hibbs J, Bonetti EJ, Boehme CC , Notomi T, Perkins MD, Schrenzel J (2011). "Robustez de una reacción de amplificación isotérmica mediada por bucle para aplicaciones diagnósticas". FEMS Immunol. Med. Microbiol . 62 (1): 41–8. doi : 10.1111/j.1574-695X.2011.00785.x . PMID  21276085.
  28. ^ Jackson, Kimberly R.; Layne, Tiffany; Dent, David A.; Tsuei, Anchi; Li, Jingyi; Haverstick, Doris M.; Landers, James P. (marzo de 2020). "Un nuevo método de amplificación isotérmica mediada por bucle para la identificación de cuatro fluidos corporales con detección de teléfonos inteligentes". Forensic Science International: Genetics . 45 : 102195. doi : 10.1016/j.fsigen.2019.102195 . ISSN  1872-4973. PMID  31835180. S2CID  209356926.
  29. ^ Layne, Tiffany; Jackson, Kimberly; Scott, Anchi; Tanner, Nathan A.; Piland, Annie; Haverstick, Doris M.; Landers, James P. (2021). "Optimización de la nueva amplificación isotérmica mediada por bucle con análisis de imágenes colorimétrico para la identificación forense de fluidos corporales". Revista de Ciencias Forenses . 66 (3): 1033–1041. doi :10.1111/1556-4029.14682. ISSN  1556-4029. PMID  33559876. S2CID  231869975.
  30. ^ Kitamura, Masashi; Kubo, Seiji; Tanaka, Jin; Adachi, Tatsushi (1 de julio de 2018). "Método de detección rápida de ADN masculino mediante el uso del ensayo de amplificación isotérmica mediada por bucle". Revista Internacional de Medicina Legal . 132 (4): 975–981. doi :10.1007/s00414-017-1661-z. ISSN  1437-1596. PMID  28803416. S2CID  4035223.
  31. ^ Torres C, Vitalis EA, Baker BR, Gardner SN, Torres MW, Dzenitis JM (2011). "LAVA: un enfoque de código abierto para diseñar firmas de ADN LAMP (amplificación isotérmica mediada por bucle)". BMC Bioinformatics . 12 : 240. doi : 10.1186/1471-2105-12-240 . PMC 3213686 . PMID  21679460. 
  32. ^ Iseki, Hiroshi; Alhassan, Andy; Ohta, Naomi; Thekisoe, Oriel MM; Yokoyama, Naoaki; Inoue, Noboru; Nambota, Andrew; Yasuda, Jun; Igarashi, Ikuo (diciembre de 2007). "Desarrollo de un método de amplificación isotérmica mediada por bucle multiplex (mLAMP) para la detección simultánea de parásitos bovinos Babesia". Journal of Microbiological Methods . 71 (3): 281–7. doi :10.1016/j.mimet.2007.09.019. PMID  18029039.
  33. ^ Tanner NA, Zhang Y, Evans TC (agosto de 2012). "Detección simultánea de múltiples objetivos en amplificación isotérmica mediada por bucle en tiempo real". BioTechniques . 53 (2): 81–9. doi : 10.2144/0000113902 . PMID  23030060.
  34. ^ Tone K, Fujisaki R, Yamazaki T, Makimura K (enero de 2017). "Mejora del análisis de la curva de fusión para la discriminación de productos de amplificación isotérmica mediada por bucle de cuatro mohos patógenos: uso de pirofosfatasa inorgánica y su efecto en la reducción de la varianza en los valores de temperatura de fusión". J Microbial Methods . 132 : 41–45. doi :10.1016/j.mimet.2016.10.020. PMID  27984058.
  35. ^ Habibzadeh, Parham; Mofatteh, Mohammad; Silawi, Mohammad; Faghihi, Mohammad Ali; Ghavami, Saeid (2021). "Ensayos de diagnóstico molecular para COVID-19: una descripción general". Revisiones críticas en ciencias de laboratorio clínico . 58 (6): 385–398. doi : 10.1080/10408363.2021.1884640 . PMC 7898297 . PMID  33595397. 
  36. ^ H Moehling, Taylor J; Choi, Gihoon; Dugan, Lawrence; Salit, Marc; Meagher, Robert (2021). "Diagnóstico LAMP en el punto de atención: tendencias emergentes y perspectivas para la comunidad de desarrolladores". Revisión experta de diagnóstico molecular . 21 (1): 43–61. doi : 10.1080/14737159.2021.1873769 . PMID  33474990.
  37. ^ Xiao Z, Liu X, Kang X, Feng Y, Zheng L, Chen C (diciembre de 2023). "Detección rápida y precisa del SARS-CoV-2 utilizando la tecnología RHAM". Scientific Reports . 13 (1): 22798. Bibcode :2023NatSR..1322798X. doi :10.1038/s41598-023-49733-7. PMC 10739982 . PMID  38129524. 
  38. ^ Charfi R, Guyonnet C, Untrau M, Giacometti G, Paper T, Poyart C, Plainvert C, Tazi A (abril de 2024). "Rendimiento de dos técnicas rápidas basadas en LAMP para la detección intraparto de la colonización vaginal por Streptococcus del grupo B". Anales de microbiología clínica y antimicrobianos . 23 (1): 37. doi : 10.1186/s12941-024-00695-2 . PMC: 11046945. PMID:  38664821 .