Enzima hidrolasa
La hidrolasa de sulfuro de carbonilo ( EC 3.13.1.7; abreviada como COSasa ) es una enzima que degrada el sulfuro de carbonilo (COS) a sulfuro de hidrógeno (H 2 S) y dióxido de carbono (CO 2 ). Aislada de la bacteria Thiobacillus thioparus , el potencial de la COSasa reduciría el alto efecto de calentamiento global del COS y cambiaría la química del ozono, porque el COS es la fuente de azufre en la troposfera. [1] [2] [3]
Etimología
Al ser una hidrolasa, que es una enzima que utiliza agua para romper enlaces químicos, el nombre sugiere que dentro del mecanismo hay moléculas de agua que están involucradas en diseminar moléculas dentro de la reacción. El propio nombre al descomponerse significa que es una enzima que descompone el sulfuro de carbonilo.
Historia
La COSasa se aisló, caracterizó y se determinó la estructura de la bacteria Thiobacillus thioparus . En la búsqueda de un método químico para descomponer la COS de manera más eficiente que los métodos biológicamente establecidos que emplean el entorno del suelo para las enzimas de degradación. Estas enzimas son la anhidrasa carbónica , la hidrolasa de disulfuro carbónico, la nitrogenasa , la monóxido de carbono y la RuBisCO . [4] [5] [6] [7] [8] [9] [10] [11] [12] Las enzimas enumeradas tienen un uso limitado debido a sus especificidades y entornos óptimos, por lo que se investiga el desarrollo químico de una enzima única para catalizar la degradación de COS. - Thiobacillus thioparus es una bacteria que se encuentra tanto en el suelo como en el agua dulce y es conocida por sus propiedades oxidantes de azufre. La cepa utilizada para crear la COSasa es THI11, que originalmente se aisló como un microorganismo degradador de tiocianato. [13] La enzima se encontró al someter el extracto de la cepa THI115 de T. thioparus a cromatografía en columna para purificarlo y a ICP-MS para deducir la estructura. [1]
Estructura
Utilizando electroforesis en gel de poliacrilamida-dodecil sulfato de sodio, se encontró una masa molecular de subunidad de 27 kDa. [1] Después de probar la expresión en E. coli, la masa molecular real de ~94 kDa se encontró mediante SEC-MALS . [1] La ICP-MS muestra que hay un ion de zinc por subunidad. [1] Secuencia de 35 aminoácidos encontrada en el N-terminal: MEKSNTDALLENNRLYAGGQATHRPGHPGMQPIQP. [1] Hay cinco hebras (β1−β5) que forman el núcleo de la lámina β y cuatro hélices α (α1, α2, α3 y α6) en su flanco, con dos hélices adicionales (α4 y α5) que sobresalen de su núcleo. Se organizan en pares de homodímeros para formar láminas β de diez hebras. [1] Entre dos subunidades de un homodímero se encuentra el sitio catalítico. Cys44, His97, Cys 100 y una molécula de agua se coordinan con un ion de zinc, con una molécula de tiocianato en el bolsillo del sitio catalítico. [1]
Función
La COSasa es responsable de la degradación de COS a H 2 S y CO 2 en el segundo paso de la asimilación de SCN . Hidroliza COS con cierta especificidad en un amplio rango de concentraciones tanto in vivo como in vitro . [1]
Mecanismo
La hidrolasa de tiocianato (SCNasa) presente en THI115 inicia la formación enzimática de tiocianato (SCN − ). La SCNasa hidroliza el SCN − a amoníaco y COS. El COS que resulta de la hidrólisis se metaboliza para formar sulfuro de hidrógeno (H 2 S) que se oxida a sulfato para producir energía. [14] [15] [16] [17] [18]
Los iones de hidróxido y zinc realizan un ataque nucleofílico sobre el carbono en la molécula de COS, lo que crea un intermediario con zinc unido al oxígeno del hidróxido y al azufre de la molécula de COS. Luego, el oxígeno se libera del zinc y forma CO2 . El agua del solvente interactúa con el ion azufre-zinc y regenera el sitio activo y libera H2S. [ 1 ]
Inhibidor de la hidrolasa de sulfuro de carbonilo
La COSasa es inhibida débilmente por SCN − . [1]
Referencias
- ^ abcdefghijk Ogawa T, Noguchi K, Saito M, Nagahata Y, Kato H, Ohtaki A, et al. (Marzo de 2013). "La carbonilsulfuro hidrolasa de la cepa THI115 de Thiobacillus thioparus es una de las enzimas de la familia de la β-anhidrasa carbónica". Revista de la Sociedad Química Estadounidense . 135 (10): 3818–25. doi :10.1021/ja307735e. PMID 23406161.
- ^ Chin M, Davis DD (1995). "Un reanálisis del sulfuro de carbonilo como fuente de aerosol de azufre estratosférico de fondo". Journal of Geophysical Research . 100 (D5): 8993. Bibcode :1995JGR...100.8993C. doi :10.1029/95JD00275.
- ^ Andreae MO (16 de mayo de 1997). "Aerosoles atmosféricos: fuentes biogeoquímicas y papel en la química atmosférica". Science . 276 (5315): 1052–1058. doi :10.1126/science.276.5315.1052.
- ^ Supuran CT (febrero de 2008). "Anhidrasas carbónicas: nuevas aplicaciones terapéuticas para inhibidores y activadores". Nature Reviews. Drug Discovery . 7 (2): 168–81. doi :10.1038/nrd2467. PMID 18167490. S2CID 3833178.
- ^ Seefeldt LC, Rasche ME, Ensign SA (abril de 1995). "Sulfuro de carbonilo y dióxido de carbono como nuevos sustratos, y disulfuro de carbono como un nuevo inhibidor de la nitrogenasa". Bioquímica . 34 (16): 5382–9. doi :10.1021/bi00016a009. PMID 7727396.
- ^ Protoschill-Krebs G, Wilhelm C, Kesselmeier J (septiembre de 1996). "Consumo de sulfuro de carbonilo (COS) por la anhidrasa carbónica (CA) de plantas superiores". Atmospheric Environment . 30 (18): 3151–3156. Bibcode :1996AtmEn..30.3151P. doi :10.1016/1352-2310(96)00026-X.
- ^ Miller AG, Espie GS, Canvin DT (julio de 1989). "Uso de oxisulfuro de carbono, un análogo estructural de CO(2), para estudiar el transporte activo de CO(2) en la cianobacteria Synechococcus UTEX 625". Fisiología vegetal . 90 (3): 1221–31. doi :10.1104/pp.90.3.1221. PMC 1061868 . PMID 16666875.
- ^ Lorimer GH, Pierce J (febrero de 1989). "Sulfuro de carbonilo: un sustrato alternativo pero no un activador de la ribulosa-1,5-bisfosfato carboxilasa". The Journal of Biological Chemistry . 264 (5): 2764–72. doi : 10.1016/S0021-9258(19)81679-4 . PMID 2492523.
- ^ Haritos VS, Dojchinov G (enero de 2005). "El metabolismo de la anhidrasa carbónica es un factor clave en la toxicidad del CO2 y el COS, pero no del CS2, hacia el escarabajo de la harina Tribolium castaneum [Coleoptera: Tenebrionidae]". Comparative Biochemistry and Physiology. Toxicology & Pharmacology . 140 (1): 139–47. doi :10.1016/j.cca.2005.01.012. PMID 15792633.
- ^ Ensign SA (abril de 1995). "Reactividad de la deshidrogenasa de monóxido de carbono de Rhodospirillum rubrum con dióxido de carbono, sulfuro de carbonilo y disulfuro de carbono". Bioquímica . 34 (16): 5372–8. doi :10.1021/bi00016a008. PMID 7727395.
- ^ Chengelis CP, Neal RA (octubre de 1979). "Metabolismo hepático del sulfuro de carbonilo". Biochemical and Biophysical Research Communications . 90 (3): 993–9. doi :10.1016/0006-291X(79)91925-9. PMID 116662.
- ^ Alterio V, Di Fiore A, D'Ambrosio K, Supuran CT, De Simone G (agosto de 2012). "Múltiples modos de unión de inhibidores de anhidrasas carbónicas: ¿cómo diseñar fármacos específicos dirigidos a 15 isoformas diferentes?". Chemical Reviews . 112 (8): 4421–68. doi :10.1021/cr200176r. hdl : 2158/776392 . PMID 22607219.
- ^ Katayama Y, Narahara Y, Inoue Y, Amano F, Kanagawa T, Kuraishi H (mayo de 1992). "Una hidrolasa de tiocianato de Thiobacillus thioparus. Una nueva enzima que cataliza la formación de sulfuro de carbonilo a partir de tiocianato". The Journal of Biological Chemistry . 267 (13): 9170–5. doi : 10.1016/S0021-9258(19)50404-5 . PMID 1577754.
- ^ Sauze J, Ogée J, Maron PA, Crouzet O, Nowak V, Wohl S, et al. (diciembre de 2017). "Intercambio de 18O y OCS". Soil Biology & Biochemistry . 115 : 371–382. doi :10.1016/j.soilbio.2017.09.009. PMC 5666291 . PMID 29200510.
- ^ Berben T, Balkema C, Sorokin DY, Muyzer G (26 de diciembre de 2017). "T usando transcriptómica". mSystems . 2 (6): mSystems.00102–17, e00102–17. doi :10.1128/mSystems.00102-17. PMC 5744179 . PMID 29285524.
- ^ Sun W, Kooijmans LM, Maseyk K, Chen H, Mammarella I, Vesala T, Levula J, Keskinen H, Seibt U (1 de febrero de 2018). "Flujos de sulfuro de carbonilo (COS), monóxido de carbono y dióxido de carbono en el suelo en un bosque boreal en el sur de Finlandia". Química atmosférica y física . 18 (2): 1363–1378. Código Bibliográfico :2018ACP....18.1363S. doi : 10.5194/acp-18-1363-2018 .
- ^ Sun W, Maseyk K, Lett C, Seibt U (4 de junio de 2018). "Control estomático de los flujos foliares de sulfuro de carbonilo y CO2 en un pantano de agua dulce de Typha". Biogeosciences . 15 (11): 3277–3291. Bibcode :2018BGeo...15.3277S. doi : 10.5194/bg-15-3277-2018 .
- ^ Zhao S, Yi H, Tang X, Kang D, Yu Q, Gao F, Wang J, Huang Y, Yang Z (1 de febrero de 2018). "Mecanismo de mejora de la actividad de los materiales derivados de hidrotalcita a base de Ni en la eliminación de sulfuro de carbonilo". Química y física de materiales . 205 : 35–43. doi :10.1016/j.matchemphys.2017.11.002.
Lectura adicional
- Brosens JJ, Salker MS, Teklenburg G, Nautiyal J, Salter S, Lucas ES, et al. (febrero de 2014). "Selección uterina de embriones humanos en la implantación". Scientific Reports . 4 : 3894. Bibcode :2014NatSR...4E3894B. doi :10.1038/srep03894. PMC 3915549 . PMID 24503642. Número de artículo 3894 . Consultado el 15 de marzo de 2019 . Artículo sobre el papel de la tripsina en la implantación de embriones humanos.
{{cite journal}}
: Mantenimiento de CS1: postscript ( enlace ) - Piazzetta P, Marino T, Russo N (junio de 2015). "El mecanismo de funcionamiento de la anhidrasa β-carbónica que degrada el sulfuro de carbonilo (COSasa): un estudio teórico". Química física Química Física . 17 (22): 14843–8. Bibcode :2015PCCP...1714843P. doi :10.1039/C4CP05975A. PMID 25980540.