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Casete sin G

El ensayo de transcripción de casete sin G es un método utilizado en biología molecular para determinar la fuerza del promotor in vitro . La técnica implica la cuantificación de un producto de ARNm con el uso de un plásmido. [1] El casete sin G es parte de un vector preconstruido, que generalmente contiene un sitio de clonación múltiple (MCS) aguas arriba del casete. Por esta razón, los promotores de interés se pueden insertar directamente en el MCS para medir en última instancia la precisión y la eficiencia de un promotor en el reclutamiento de la maquinaria de transcripción.

Se clona un promotor en el
plásmido casete sin G.

(a) Se somete a inserción de promotor un plásmido prefabricado con una hebra sentido sin G de 365 nt. (b) Se clona el promotor en el sitio de clonación múltiple (MCS) inmediatamente aguas arriba del sitio de inicio de la transcripción. Se utiliza una polimerasa para transcribir el casete sin G. Una vez que se ha transcrito el casete y se detecta el primer trifosfato de guanosina en la hebra sentido más allá del casete, se termina prematuramente la transcripción. Se libera un transcrito radiomarcado de 365 nt. Los transcritos producidos en un ensayo de casete sin G pueden someterse a electroforesis en gel para confirmar su longitud y a autorradiografía para determinar la fuerza relativa del promotor.

Método

El casete G-less es un gen reportero que codifica una transcripción que carece de nucleótidos de guanina en la cadena sentido del ADN (de ahí " G -less"). [2] Un plásmido que contiene un gen de este tipo se encuentra aguas abajo de un MCS. Después de que el promotor se inserta en el MCS, la transcripción procede con la adición de UTP, CTP y ATP radiomarcados (así como nucleótidos no radiomarcados/fríos) y continúa hasta que se alcanza el final del casete G-less y los residuos de guanina vuelven a ser evidentes en la cadena sentido del ADN. La ausencia de GTP in vitro da como resultado que la transcripción se termine prematuramente en el primer residuo de guanina en la cadena sentido después del casete. Se realiza una electroforesis en gel sobre los productos de transcripción y se cuantifica la cantidad de radiactividad mediante autorradiografía o fosfoimagen para determinar la fuerza del promotor de interés.

Solicitud

La técnica de casete sin G se utiliza para determinar la fuerza del promotor más allá de los niveles basales de transcripción (es decir, en presencia de activadores de transcripción o factores de transcripción [3] ). Por ejemplo, para medir los efectos de una modificación de la secuencia de consenso de la caja TATA en Saccharomyces cerevisiae en presencia de TFIID , se implementaron casetes sin G para medir la fuerza relativa de cada promotor. [4]

Ventajas

El ensayo G-less se puede realizar en un plásmido circular para medir los niveles de transcripción. Un plásmido circular proporciona una plantilla más eficiente en muchos sistemas en comparación con otros ensayos como la transcripción de runoff, en la que se requiere un extremo escindido. Este método genera transcripciones radiomarcadas de manera muy eficiente porque evita el proceso innecesario de realizar otras mediciones indirectas del producto de ARNm. El promotor se inserta en un plásmido circular que contiene el casete G-less, que generará una transcripción de una cierta longitud que omite la transcripción aleatoria y no específica en todo el plásmido. La mayoría de los sistemas crudos, como los extractos nucleares de HeLa, se utilizan porque contienen bajas cantidades de GTP contaminante que conducen a la transcripción de fondo y, ocasionalmente, pueden hacer que la transcripción aleatoria se lea a través del casete G-less. [5]

Referencias

  1. ^ Park, JH; Magan, N (12 de noviembre de 2014). "Análisis cuantitativo de PCR en tiempo real acoplado a transcriptasa inversa de la transcripción libre de células en el promotor p21 ensamblado con cromatina". PLOS ONE . ​​6 (8): e23617. doi : 10.1371/journal.pone.0023617 . PMC  3160311 . PMID  21886803.
  2. ^ Aria Baniahmad (2002). Receptores de hormonas tiroideas: métodos y protocolos. Springer Science & Business Media. pág. 211. ISBN 978-1-59259-174-9.
  3. ^ Kazerouninia, A; Ngo, B; Martinson, HG (12 de noviembre de 2014). "La degradación dependiente de la señal de poli(A) de transcripciones nacientes no procesadas acompaña a la pausa transcripcional dependiente de la señal de poli(A) in vitro". ARN . 16 (1): 197–210. doi :10.1261/rna.1622010. PMC 2802029 . PMID  19926725. 
  4. ^ Bjornsdottir, G; Myers, LC (12 de noviembre de 2014). "Los componentes mínimos del aparato de transcripción de la ARN polimerasa II determinan la caja TATA de consenso". Nucleic Acids Res . 36 (9): 2906–16. doi :10.1093/nar/gkn130. PMC 2396422 . PMID  18385157. 
  5. ^ Carey, MF; Peterson, CL; Smale, ST (12 de noviembre de 2014). "Transcripción in vitro con casete sin G utilizando extractos nucleares de células HeLa". Protocolos de Cold Spring Harbor . 2010 (3): pdb.prot5387. doi :10.1101/pdb.prot5387. PMID  20194456.