stringtranslate.com

Etiquetado isobárico

Un esquema de etiquetado isobárico: las proteínas se extraen de diferentes condiciones o tipos de células, se digieren en péptidos y se marcan con etiquetas de isótopos estables isobáricos. Estas etiquetas constan de regiones informadoras, de equilibrio y reactivas. Las regiones informadoras más claras se combinan con regiones de equilibrio más pesadas, de modo que toda la etiqueta unida al péptido agrega el mismo cambio de masa. Por lo tanto, después de mezclar, en MS 1 , los péptidos aparecen como un único precursor. Sin embargo, cuando se fragmentan durante MS 2 , además de los iones de fragmento normales, las regiones informadoras se disocian para producir señales iónicas que proporcionan información cuantitativa con respecto a la cantidad relativa del péptido en las muestras.

El etiquetado isobárico es una estrategia de espectrometría de masas utilizada en proteómica cuantitativa . Los péptidos o proteínas están marcados con grupos químicos que tienen (al menos nominalmente) una masa idéntica (isobárica), pero varían en términos de distribución de isótopos pesados ​​en su estructura. Estas etiquetas, comúnmente denominadas etiquetas de masa en tándem, están diseñadas para que la etiqueta de masa se escinda en una región enlazadora específica mediante CID de alta energía (HCD) durante la espectrometría de masas en tándem, lo que produce iones indicadores de diferentes masas. Las etiquetas isobáricas más comunes son las etiquetas reactivas con aminas. [1] Sin embargo, también se han descrito etiquetas que reaccionan con residuos de cisteína y grupos carbonilo. [2] Estos grupos reactivos con amina pasan por reacciones de N-hidroxisuccinimida (NHS) , que se basan en tres tipos de grupos funcionales. [2] Los métodos de etiquetado isobárico incluyen etiquetas de masa en tándem (TMT) , etiquetas isobáricas para cuantificación relativa y absoluta (iTRAQ) , etiquetas diferenciales de masa para cuantificación absoluta y relativa, y etiquetado con dimetilo. [1] Los métodos TMT e iTRAQ son los más comunes y desarrollados de estos métodos. [1] Las etiquetas de masa en tándem tienen una región informadora de masa, una región enlazadora escindible, una región de normalización de masa y un grupo reactivo de proteína y tienen la misma masa total. [3]

Flujo de trabajo

(Yates, 2014) describe un flujo de trabajo típico de proteómica ascendente . [2] Las muestras de proteínas se digieren enzimáticamente mediante una proteasa para producir péptidos. Cada muestra experimental digerida se deriva de una variante isotópica diferente de la etiqueta de un conjunto. Las muestras se mezclan en proporciones normalmente iguales y se analizan simultáneamente en una ejecución de MS. Dado que las etiquetas son isobáricas y tienen propiedades químicas idénticas, las variantes isotópicas de las etiquetas aparecen como un único pico compuesto al mismo valor m/z en una exploración MS1 ​​con tiempos de retención de cromatografía líquida (LC) idénticos. Durante el análisis de MS2 y tras la fragmentación, cada variante isotópica de la etiqueta produce iones de producto específicos de secuencia. Estos iones producto se utilizan para determinar la secuencia peptídica y las etiquetas informadoras cuyas abundancias reflejan la proporción relativa del péptido en las muestras que se combinaron. Se requiere el uso de MS/MS para detectar las etiquetas; por lo tanto, los péptidos no marcados no se cuantifican.

Flujo de trabajo proteómico de etiquetado isobárico con 4 reactivos únicos en un conjunto y 7 muestras biológicas diferentes combinadas en 2 grupos de etiquetado (plexos). Como el número de muestras es mayor que el número de reactivos, el etiquetado debe realizarse en dos lotes.

Ventajas

Explicado anteriormente por (Lee, Choe, Aggarwal, 2017). [4] Un beneficio clave del etiquetado isobárico sobre otras técnicas de cuantificación (por ejemplo, sin etiquetas) es la capacidad de multiplexación y, por tanto, el mayor potencial de rendimiento. La capacidad de combinar y analizar varias muestras simultáneamente en una ejecución de LC-MS elimina la necesidad de analizar múltiples conjuntos de datos y elimina la variación entre ejecuciones. La multiplexación reduce la variabilidad del procesamiento de muestras, mejora la especificidad al cuantificar los péptidos de cada condición simultáneamente y reduce el tiempo de respuesta para múltiples muestras. Sin multiplexación, se puede perder información de una ejecución a otra, lo que afecta la identificación y cuantificación, ya que los péptidos seleccionados para la fragmentación en una ejecución de LC-MS/MS pueden no estar presentes o en una cantidad adecuada en ejecuciones de muestras posteriores. Las etiquetas químicas isobáricas disponibles actualmente facilitan el análisis simultáneo de 2 a 11 muestras experimentales.

Aplicaciones

Kit ITRAQ 8plex

El etiquetado isobárico se ha utilizado con éxito para muchas aplicaciones biológicas, incluida la identificación y cuantificación de proteínas, el perfil de expresión de proteínas de estados normales frente a anormales, el análisis cuantitativo de proteínas para las que no hay anticuerpos disponibles y la identificación y cuantificación de proteínas modificadas postraduccionalmente. [4]

Disponibilidad

Hay dos tipos de etiquetas isobáricas disponibles comercialmente: etiquetas de masa en tándem (TMT) y etiquetas isobáricas para cuantificación relativa y absoluta (iTRAQ) . Los TMT reactivos con aminas están disponibles en juegos dúplex, 6-plex y 10-plex y ahora de 11-plex. [5] Los iTRAQ reactivos con aminas están disponibles en formas de 4 y 8 plex [6] .


Referencias

  1. ^ a b C Bantscheff, Marcus; Lemeer, Simone; Savitski, Mijaíl M.; Kuster, Bernhard (1 de septiembre de 2012). "Espectrometría de masas cuantitativa en proteómica: actualización de la revisión crítica desde 2007 hasta la actualidad". Química Analítica y Bioanalítica . 404 (4): 939–965. doi :10.1007/s00216-012-6203-4. ISSN  1618-2650. PMID  22772140. S2CID  21085313.
  2. ^ abc Yates, John (2014). "Cuantificación relativa basada en etiquetado isobárico en proteómica de escopeta". Revista de investigación del proteoma . 13 (12): 5293–5309. doi :10.1021/pr500880b. PMC 4261935 . PMID  25337643. 
  3. ^ Thompson, Andrés; Schäfer, Jürgen; Kuhn, Karsten; Kienle, Stefan; Schwarz, Josef; Schmidt, Gunter; Neumann, Thomas; Hamon, cristiano (2003). "Etiquetas de masa en tándem: una nueva estrategia de cuantificación para el análisis comparativo de mezclas de proteínas complejas mediante MS/MS". Química analítica . 75 (8): 1895-1904. doi :10.1021/ac0262560. ISSN  0003-2700. PMID  12713048. S2CID  30820837.
  4. ^ ab Lee, Kelvin H.; Choe, Leila H.; Aggarwal, Kunal (1 de junio de 2006). "Proteómica de escopeta utilizando las etiquetas isobáricas iTRAQ". Sesiones informativas en genómica funcional . 5 (2): 112-120. doi : 10.1093/bfgp/ell018 . ISSN  2041-2649. PMID  16772272.
  5. ^ Dayon L, Hainard A, Licker V, Turck N, Kuhn K, Hochstrasser DF, Burkhard PR, Sanchez JC (2008). "Cuantificación relativa de proteínas en el líquido cefalorraquídeo humano mediante MS/MS utilizando etiquetas isobáricas de 6 plex". Anal. química . 80 (8): 2921–31. doi :10.1021/ac702422x. PMID  18312001. S2CID  12362045.
  6. ^ Choe L, D'Ascenzo M, Relkin NR, Pappin D, Ross P, Williamson B, Guertin S, Pribil P, Lee KH (2007). "Cuantificación de 8 complejos de cambios en la expresión de proteínas del líquido cefalorraquídeo en sujetos sometidos a tratamiento con inmunoglobulinas intravenosas para la enfermedad de Alzheimer". Proteómica . 7 (20): 3651–60. doi :10.1002/pmic.200700316. PMC 3594777 . PMID  17880003.