stringtranslate.com

Yo-creo

I- Cre I es una endonucleasa homing cuyo gen fue descubierto por primera vez en el genoma del cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii , una especie de alga verde unicelular . [ 1 ] Recibe su nombre por los hechos de que: reside en un ntrón I ; fue aislado de C. reinhardtii ; fue el primer ( I ) gen de este tipo aislado de C. reinhardtii . Su gen reside en un intrón del grupo I en el gen del ARN ribosómico 23S del cloroplasto de C. reinhardtii , y I- Cre I solo se expresa cuando su ARNm se empalma a partir de la transcripción primaria del gen 23S. La enzima I- Cre I , que funciona como un homodímero , reconoce una secuencia de 22 nucleótidos de ADN dúplex y escinde un enlace fosfodiéster en cada hebra en posiciones específicas. I- Cre I es un miembro de la familia LAGLIDADG de endonucleasas homing, todas las cuales tienen un motivo de aminoácidos LAGLIDADG conservado que contribuye a sus dominios asociativos y sitios activos. Cuando el intrón que contiene I- Cre I encuentra un alelo 23S que carece del intrón, la enzima I- Cre I "se aloja" en el alelo "intrón-menos" de 23S y efectúa la inserción de su intrón progenitor en el alelo intrón-menos. Los intrones con este comportamiento se denominan intrones móviles. Debido a que I- Cre I permite su propia propagación sin conferir ningún beneficio a su anfitrión, es un ejemplo de ADN egoísta .

Descubrimiento

I- Cre I se observó por primera vez como una secuencia intermedia en el gen ARNr 23S del genoma del cloroplasto de C. reinhardtii . [1] El gen 23S es un gen de ARN , lo que significa que su transcripción no se traduce en proteína. Como ARN, forma parte de la subunidad grande del ribosoma . Se encontró un marco de lectura abierto que codifica una proteína de 163 aminoácidos en este intrón 23S, lo que sugiere que una proteína podría facilitar el comportamiento de retorno al hogar del intrón móvil. Además, la proteína predicha tenía un motivo LAGLIDADG, una secuencia de aminoácidos conservada que está presente en otras proteínas codificadas en intrones móviles del grupo I. Un estudio de 1991 estableció que el ORF codifica una endonucleasa de ADN, I- Cre I, que corta selectivamente un sitio correspondiente a donde el intrón se empalma fuera de la transcripción primaria 23S. [2] El estudio también mostró que el intrón era capaz de invadir alelos 23S que aún no lo tenían. [2]

Mecanismo de propagación

El I- Cre I ha evolucionado para cortar una secuencia de 22 nucleótidos de ADN que se encuentra en alelos del gen del ARN ribosómico 23S que carecen del intrón que contiene el I- Cre I. Cuando se corta un alelo "intrón-menos", se activan en la célula vías de reparación de roturas de doble cadena . La célula utiliza como plantilla para la reparación el alelo 23S que produjo la enzima responsable I- Cre I, replicando así el intrón que contiene el I- Cre I. [3] El alelo "intrón-más" resultante ya no contiene un sitio de alojamiento intacto para la enzima I- Cre I y, por lo tanto, no se corta. Dado que este intrón permite su propia replicación sin conferir ningún beneficio a su anfitrión, el I- Cre I es una forma de ADN egoísta .

Estudios estructurales y posibles aplicaciones

Estructura cristalina de rayos X del I- Cre I unido a su sitio de origen. [4]

Debido a que I- Cre I ha evolucionado para cortar una secuencia tan larga de ADN, a diferencia de las endonucleasas de restricción que típicamente cortan secuencias de cuatro o seis nucleótidos, es capaz de cortar un solo sitio dentro de un genoma muy grande . Se espera que una secuencia de cuatro o seis nucleótidos ocurra muchas, muchas veces en un genoma de millones o miles de millones de nucleótidos simplemente por casualidad, mientras que una secuencia de 22 nucleótidos podría ocurrir solo una vez (10 9 /4 6 frente a 10 9 /4 22 ). Esta especificidad de la escisión de I- Cre I hace que I- Cre I sea una herramienta prometedora para la orientación genética . Si una persona tuviera una enfermedad debido a un alelo defectuoso de algún gen , sería útil poder reemplazar ese alelo con uno funcional. Si uno pudiera hacer que I- Cre I cortara el ADN solo en el alelo defectuoso mientras que simultáneamente proporciona un alelo normal para que la célula lo use como plantilla de reparación, la propia maquinaria de recombinación homóloga del paciente podría insertar el alelo deseado en lugar del disfuncional. La especificidad de I- Cre I también permite la reducción de efectos nocivos debidos a roturas de doble cadena fuera del gen de interés.

Para utilizar I- CreI como herramienta de esta manera, es necesario hacer que reconozca y corte secuencias de ADN diferentes de su sitio de origen. En 1997 se creó un sistema genético de Escherichia coli para estudiar la relación entre la estructura de I- CreI y su especificidad del sitio de origen. [5] En 1997, se determinó la estructura de la proteína I-CreI, [6] y en 1998, se resolvió su estructura cristalina unida a su sitio de origen de ADN nativo, lo que ayudó en gran medida a la investigación para alterar el reconocimiento del sitio de origen de la proteína. [4] Desde entonces, se han creado formas mutantes de la proteína que exhiben una especificidad del sitio de origen alterada. [7] [8] [9] También se ha creado un sistema genético en Saccharomyces cerevisiae , que produce mutantes adicionales de I- CreI con especificidades del sitio de origen modificadas. [10] [11]

Ya se ha utilizado con éxito I- Cre I para inducir la recombinación homóloga en Drosophila melanogaster , un organismo modelo eucariota extremadamente popular . [12] Parece muy probable que los avances en las técnicas de biología molecular y la generación de una biblioteca de nuevas endonucleasas derivadas de I- Cre I eventualmente permitan la focalización de muchos genes de importancia etiológica.

Referencias

  1. ^ ab Rochaix, JD; Malnoe, P (1978). "Anatomía del ADN ribosómico del cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii ". Cell . 15 (2): 661–670. doi :10.1016/0092-8674(78)90034-x. PMID  719757. S2CID  31637691.
  2. ^ ab Dürrenberger F, Rochaix JD (noviembre de 1991). "Intrón ribosomal del cloroplasto de Chlamydomonas reinhardtii: autoempalme in vitro, actividad de endonucleasa de ADN y movilidad in vivo". The EMBO Journal . 10 (11): 3495–501. doi :10.1002/j.1460-2075.1991.tb04913.x. PMC 453078 . PMID  1915304. 
  3. ^ Dürrenberger F, Thompson AJ, Herrin DL, Rochaix JD (septiembre de 1996). "Recombinación inducida por rotura de doble cadena en cloroplastos de Chlamydomonas reinhardtii". Nucleic Acids Research . 24 (17): 3323–31. doi :10.1093/nar/24.17.3323. PMC 146090 . PMID  8811085. 
  4. ^ ab Jurica MS, Monnat RJ, Stoddard BL (octubre de 1998). "Reconocimiento y escisión del ADN por la endonucleasa I-CreI de localización LAGLIDADG". Molecular Cell . 2 (4): 469–76. doi : 10.1016/s1097-2765(00)80146-x . PMID  9809068.
  5. ^ Seligman, LM; Stephens, KM; Savage, JH; Monnat, RJ (1997). "Análisis genético del sistema de localización del intrón móvil I-CreI de Chlamydomonas reinhardtii en Escherichia coli". Genética . 147 (4): 1653–1664. doi :10.1093/genetics/147.4.1653. PMC 1208338 . PMID  9409828. 
  6. ^ Heath PJ, Stephens KM, Monnat RJ, Stoddard BL (junio de 1997). "La estructura de I-Crel, una endonucleasa homing codificada por intrones del grupo I". Nature Structural Biology . 4 (6): 468–76. doi :10.1038/nsb0697-468. PMID  9187655. S2CID  12261983.
  7. ^ Seligman LM, Chisholm KM, Chevalier BS, Chadsey MS, Edwards ST, Savage JH, Veillet AL (septiembre de 2002). "Mutaciones que alteran la especificidad de escisión de una endonucleasa homing". Nucleic Acids Research . 30 (17): 3870–9. doi :10.1093/nar/gkf495. PMC 137417 . PMID  12202772. 
  8. ^ Sussman D, Chadsey M, Fauce S, Engel A, Bruett A, Monnat R, Stoddard BL, Seligman LM (septiembre de 2004). "Aislamiento y caracterización de nuevas especificidades de endonucleasas homing en posiciones de sitios diana individuales". Journal of Molecular Biology . 342 (1): 31–41. doi :10.1016/j.jmb.2004.07.031. PMID  15313605.
  9. ^ Rosen LE, Morrison HA, Masri S, Brown MJ, Springstubb B, Sussman D, Stoddard BL, Seligman LM (2006). "Derivados de la endonucleasa I-CreI con nuevas especificidades de dianas de ADN". Nucleic Acids Research . 34 (17): 4791–800. doi :10.1093/nar/gkl645. PMC 1635285 . PMID  16971456. 
  10. ^ Arnould S, Chames P, Perez C, Lacroix E, Duclert A, Epinat JC, Stricher F, Petit AS, Patin A, Guillier S, Rolland S, Prieto J, Blanco FJ, Bravo J, Montoya G, Serrano L, Duchateau P, Pâques F (enero de 2006). "Ingeniería de un gran número de endonucleasas homing altamente específicas que inducen la recombinación en nuevos objetivos de ADN". Journal of Molecular Biology . 355 (3): 443–58. doi :10.1016/j.jmb.2005.10.065. PMID  16310802.
  11. ^ Smith J, Grizot S, Arnould S, Duclert A, Epinat JC, Chames P, Prieto J, Redondo P, Blanco FJ, Bravo J, Montoya G, Pâques F, Duchateau P (2006). "Un enfoque combinatorio para crear endonucleasas de localización artificial que escindan secuencias elegidas". Nucleic Acids Research . 34 (22): e149. doi :10.1093/nar/gkl720. PMC 1702487 . PMID  17130168. 
  12. ^ Maggert KA, Golic KG (noviembre de 2005). "Intercambios de cromosomas sexuales altamente eficientes producidos por la expresión de I-CreI en Drosophila". Genética . 171 (3): 1103–14. doi :10.1534/genetics.104.040071. PMC 1456814 . PMID  16020774.