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Cyathus olla

Cyathus olla también conocido como nido de pájaro de campo [1] es una especie de hongo saprobio del género Cyathus de la familia Nidulariaceae . Los cuerpos frutales se asemejan a pequeños nidos de pájaros llenos de "huevos" (estructuras que contienen esporas llamadas peridiolos). Al igual que otros hongos de nidos de pájaros, C. olla depende de la fuerza del agua que cae para desalojar los peridiolos de los cuerpos fructíferos y expulsar y dispersar sus esporas. El ciclo de vida de este hongo le permite reproducirse tanto sexualmente, con meiosis , como asexualmente vía esporas . C. olla es un hongo relativamente común, con distribución mundial. Es objeto de investigación agrícola para determinar su potencial como medio para acelerar la descomposición de los residuos de cultivos y reducir la población de patógenos vegetales. El epíteto específico se deriva de lapalabra latina olla , que significa "olla". [2]

Descripción

Basidios y esporas de C. olla . "1–3. Basidios maduros con dos, tres y cuatro esporas; 4. Basidio que colapsa con las esporas aún adheridas; 5. Esporas inmediatamente después de la separación de los basidios, que muestran un apículo visible; 6. Esporas más antiguas; el apículo casi ha desaparecido o casi desaparecido". [3]

Cyathus olla se parece a un nido de pájaro en miniatura que contiene huevos, de ahí el nombre común de hongo de nido de pájaro. El cuerpo fructífero, o peridio , tiene aproximadamente forma de embudo, mide entre 10 y 18 mm de alto y entre 8 y 12 mm de ancho. Es de color amarillo grisáceo o marrón grisáceo a leonado y está cubierto de pelos uniformes y de textura fina en la superficie exterior. La superficie interior es gris plateada y lisa, a menudo con débiles crestas transversales. [4] Cyathus olla tiene paredes gruesas y se ensancha hacia afuera en el borde; el borde suele tener un contorno ondulado. [5] Los 'huevos', o peridiolos, suelen tener de 8 a 10 en la copa, y son de color blanco o gris, con un diámetro de 2 a 4 mm, notablemente más grandes que otras especies de Cyathus . [4] Están cubiertos por una fina membrana llamada túnica . Los peridiolos suelen estar unidos al cuerpo fructífero mediante un funículo , una estructura de hifas que se diferencia en tres regiones: la pieza basal, que la une a la pared interna del peridio, la pieza intermedia y una vaina superior, llamada bolsa. , conectado a la superficie inferior del peridiolo. Dentro de la bolsa y la pieza intermedia hay un hilo enrollado de hifas entrelazadas llamado cordón funicular, unido en un extremo al peridiolo y en el otro extremo a una masa enredada de hifas llamada hapteron. C. olla tiene una bolsa ancha con una parte superior que no se distingue fácilmente de la inferior. [6] La especie no es comestible. [7]

Una forma diferente de esta especie, Cyathus olla forma anglicus , reportada originalmente en Inglaterra por el micólogo Curtis Gates Lloyd , [5] también se ha encontrado en Oregón y Colorado en los EE. UU., [8] Alberta, Canadá, [9] y en Argentina . [10] Esta forma es grande, con aberturas de copa de hasta 1,5 cm (0,6 pulgadas) de diámetro. Las esporas tienen unas dimensiones de 11,5 a 12,5 × 7,5 a 9 μm.

La especie relacionada Cyathus earlei Lloyd se parece mucho a C. olla , aunque el análisis de apareamiento ha demostrado que son especies distintas. [11]

Características microscópicas

Cyathus olla tiene esporas de forma ovada con dimensiones de 10 a 14 × 6 a 8  μm . [12] En 1927, George Willard Martin examinó las características microscópicas de varios miembros de la familia Nidulariaceae, incluido Cyathus olla . [3] Observó que en esta especie, los basidios (células portadoras de esporas) tienen forma de maza o cilíndricos y tienen tallos largos y, a veces, tienen una conexión de abrazadera en el extremo basal de la estructura. Los basidios suelen contener entre dos y cuatro esporas sésiles que están directamente adheridas al basidio, en lugar de a través de un esterigma . Un apículo temporal, que se revela sólo después de que se separa la espora, marca el punto de unión. Las esporas generalmente se separan de los basidios cuando estos últimos colapsan y gelatinizan; Esta descomposición basidial suele ocurrir simultáneamente con una gelatinización de las células que recubren la pared interior del peridiolo. [3] Después de separarse de los basidios, la pared exterior de las esporas puede espesarse, aunque generalmente no aumentan de tamaño.

Hábitat y distribución

C. olla creciendo sobre madera muerta

Al ser un hongo saprobio , Cyathus olla obtiene nutrientes de la descomposición de la materia orgánica muerta y, como tal, generalmente se encuentra creciendo sobre restos de madera; [4] los especímenes que se encuentran creciendo en el suelo generalmente están adheridos a trozos de madera o tallos presentes en el suelo. [13] Brodie señala que esta especie generalmente crece en lugares húmedos y sombreados, aunque su descubrimiento en las regiones áridas de Lima , Perú , sugiere que es tolerante a condiciones de baja humedad. [12] Es la especie más abundante de Cyathus que se encuentra en Europa y también es común en América del Norte. Su área de distribución se extiende al norte hasta Suecia y al sur de América del Sur; también se ha informado en Australia, Sudáfrica , Irán , [12] e India. [14]

Ciclo vital

El ciclo de vida de Cyathus olla , que contiene etapas tanto haploides como diploides , es típico de taxones de basidiomicetos que pueden reproducirse tanto de forma asexual (a través de esporas vegetativas ) como sexualmente (con meiosis ). Las basidiosporas producidas en los peridiolos contienen cada una un único núcleo haploide. Después de la dispersión, las esporas germinan y crecen hasta formar hifas homocarióticas , con un solo núcleo en cada compartimento. Cuando dos hifas homocarióticas de diferentes grupos de compatibilidad de apareamiento se fusionan entre sí, forman un micelio dicariótico en un proceso llamado plasmogamia . Después de un período de tiempo y en las condiciones ambientales apropiadas, se pueden formar cuerpos fructíferos a partir de los micelios dicarióticos. Estos cuerpos fructíferos producen peridiolos que contienen los basidios sobre los cuales se forman nuevas basidiosporas. Los basidios jóvenes contienen un par de núcleos haploides sexualmente compatibles que se fusionan y el núcleo de fusión diploide resultante sufre meiosis para producir basidiosporas haploides. [15] Se ha descubierto que la meiosis en C. olla es similar a la de organismos superiores. [dieciséis]

Dispersión de esporas

Una colección de cuerpos frutales.

Cuando una gota de lluvia golpea el interior del vaso con el ángulo y la velocidad adecuados, puede producir una fuerza considerable y puede crear un chapoteo que impulsa el agua hacia los lados del vaso (también conocido como vasos contra salpicaduras ), rompiendo el funículo y expulsando los peridiolos. Los peridiolos van seguidos de su cordón funicular y su hapterón basal. Cuando golpean el tallo o palo de una planta cercana, el hapterón se adhiere a él y el cordón funicular se enrolla alrededor del tallo o palo impulsado por la fuerza del peridiolo aún en movimiento (similar a una bola de tether ). El peridiolo, adherido a la planta, puede ser comido por mamíferos herbívoros, y el paso posterior a través de su tracto digestivo ablandará la cáscara dura lo suficiente como para facilitar la esporulación posterior. [17]

Los experimentos que investigan la dispersión de los peridiolos por salpicadura han mostrado una distancia horizontal máxima para la eyección del peridiolo de 82,5 centímetros (32,5 pulgadas), menor que la observada para otras especies de Cyathus . Esta distancia de eyección reducida puede deberse a factores tales como el mayor tamaño de los peridiolos, la construcción más suelta del funículo o el mayor ensanchamiento que se observa en el labio superior de la copa de salpicadura. [18]

Aplicaciones agrícolas

La pata negra es una enfermedad fúngica de la canola que provoca una importante pérdida de rendimiento en los cultivos afectados. Pasa el invierno sobre rastrojos infectados (residuos de cultivos) que quedan en los campos agrícolas y puede continuar produciendo esporas, infectando cultivos futuros, hasta que el rastrojo se entierra o se descompone por completo. [19] La observación de que C. olla crece y fructifica en el rastrojo de canola [20] [21] ha llevado a investigar el potencial de este hongo para degradar el rastrojo de canola y reducir la incidencia de enfermedades transmitidas por el rastrojo, como la pata negra y la mancha negra. [22] En un estudio sobre sus capacidades degradantes de lignina , se demostró que C. olla coloniza residuos de canola, trigo y cebada , pero parecía tener preferencia por las raíces leñosas de la canola en comparación con los residuos de cereales. [21]

Ver también

Referencias

  1. ^ "Nombres comunes estandarizados para especies silvestres en Canadá". Grupo de Trabajo sobre Estatuto General Nacional . 2020.
  2. ^ "olla - Definición". Diccionario en línea Merriam-Webster . Consultado el 6 de febrero de 2009 .
  3. ^ abc Martín GW (1927). "Basidia y esporas de las Nidulariaceae". Micología . 19 (5): 239–47. doi :10.2307/3753710. JSTOR  3753710.
  4. ^ abc Ellis JB, Ellis MB (1990). Hongos sin branquias (himenomicetos y gasteromicetos): un manual de identificación . Londres, Reino Unido: Chapman y Hall. pag. 225.ISBN 0-412-36970-2.
  5. ^ ab Lloyd CG (1906). "Las Nidulariáceas". Escritos Micológicos . 2 : 1–30.
  6. ^ Brodie, Los hongos del nido de pájaro , p. 86.
  7. ^ Phillips, Roger (2010). Hongos y otros hongos de América del Norte . Buffalo, Nueva York: Firefly Books. pag. 341.ISBN 978-1-55407-651-2.
  8. ^ Brodie HJ (1952). "Infertilidad entre dos formas distintas de Cyathus olla ". Micología . 44 (3): 413–23. doi :10.1080/00275514.1952.12024206. JSTOR  4547614.
  9. ^ Brodie HJ (1967). "Nuevo registro de un Cyathus grande del oeste de Canadá". Micología . 59 (3): 532–3. doi :10.2307/3756774. JSTOR  3756774.
  10. ^ Brodie, Los hongos del nido de pájaro , p. 156.
  11. ^ Brodie HJ (1962). "Cultura y taxonomía de Cyathus earlei ". Revista canadiense de botánica . 40 (11): 1483–5. doi :10.1139/b62-144.
  12. ^ abc Brodie, Los hongos del nido de pájaro , p. 155.
  13. ^ Brodie, Los hongos del nido de pájaro , p. 105.
  14. ^ Dorjey K, Kumar S, Sharma YP (2014). "Cyathus olla del frío desierto de Ladakh" (PDF) . Micosfera . 4 (2): 256–9. doi : 10.5943/mycosphere/4/2/8 .
  15. ^ Diácono J. (2005). Biología de los hongos . Cambridge, Massachusetts: Editores Blackwell. págs. 31-2. ISBN 1-4051-3066-0.
  16. ^ Lu B, Brodie HJ (1964). "Observaciones preliminares de meiosis en el hongo Cyathus ". Revista canadiense de botánica . 42 (3): 307–10. doi :10.1139/b64-026.
  17. ^ Brodie HJ (1989). Hongos: delicia de la curiosidad . Toronto, Canadá: Prensa de la Universidad de Toronto. pag. 55.ISBN 0-8020-6766-2.
  18. ^ Brodie, Los hongos del nido de pájaro , p. 95.
  19. ^ Harrison L, Evans I, Thomas P, Kharbanda P (junio de 1997). "Pata Negra de Canola". Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural de Alberta.
  20. ^ Baird RE, Summer DR, Mullinix BG, Dowler CC, Phatak SC, Johnson AW, Chalfant RB, Gay JD, Chandler LD, Baker SH (1993). "Aparición de hongos carnosos en campos agrícolas". Micopatología . 122 (1): 29–34. doi :10.1007/bf01103706. S2CID  36647822.
  21. ^ ab Tewari JP, Briggs KG (1995). "Infestación de campo de rastrojos de canola por un hongo de nido de pájaro". Revista Canadiense de Patología Vegetal . 17 : 291.
  22. ^ Blenis PV, Chow PS, Stringam GR (1998). "Evaluación del potencial de los hongos que pudren la madera para mejorar la descomposición de la paja de canola". Revista Canadiense de Patología Vegetal . 20 : 332.

Texto citado

Brodie HJ (1975). Los hongos del nido de pájaro . Toronto, Canadá: Prensa de la Universidad de Toronto. ISBN 0-8020-5307-6.

enlaces externos