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Vía de señalización nodal

La vía de señalización nodal es una vía de transducción de señales importante en la diferenciación regional y celular durante el desarrollo embrionario . [1]

La familia de proteínas Nodal , un subconjunto de la superfamilia del factor de crecimiento transformante beta (TGFβ) , es responsable de la inducción del endodermo meso , la formación de patrones del sistema nervioso y la determinación del eje dorso-ventral en embriones de vertebrados. La activación de la vía Nodal implica la unión nodal a los receptores de activina y similares a la activina, lo que conduce a la fosforilación de Smad2 . El complejo P-Smad2/ Smad4 se transloca al núcleo para interactuar con factores de transcripción como FoxH1 , p53 y Mixer ( regulador endodérmico similar a la mezcla de Xenopus ). Esto, a su vez, conducirá a la inducción de genes diana como NODAL, Lefty , el antagonista de nodal cerberus , y otros. [2]

La activación de la vía Nodal induce la transcripción de muchos genes diana, incluidos los propios, pero al mismo tiempo, los micro-ARN y otras proteínas interfieren con este ciclo de retroalimentación positiva de manera negativa en diferentes puntos de la vía. [2] [3] Este equilibrio de activación e inhibición de la señal es necesario para lograr la ubicación, concentración y duración precisas de los genes diana posteriores que tienen un papel importante en las primeras etapas del desarrollo. Este artículo resumirá el papel de algunos de los componentes que participan positiva y negativamente en la regulación de la vía de señalización. Aunque todos los componentes principales de la señalización Nodal se conservan evolutivamente en casi todos los vertebrados, la regulación de cada componente de la vía a veces varía según la especie.

Historia

El gen nodal fue descubierto originalmente por Conlon et al. mediante una mutación retroviral en ratones que condujo al aislamiento de un gen que interfería con la gastrulación normal del ratón y el desarrollo del embrión. [4] Un estudio posterior de este gen por Zhou et al. mostró que los genes nodales codifican un péptido de señalización secretado que era suficiente para inducir células del mesodermo en el embrión del ratón. Este fue un hallazgo importante ya que muchos otros factores habían sido implicados en la formación del mesodermo en Xenopus mientras que la dificultad de eliminación de estos factores debido a la letalidad embrionaria y la contribución materna de los genes había mantenido esquiva la capacidad de analizar los fenotipos knock out. [5] Estudios posteriores de la señalización nodal en otros vertebrados como Cyclops y Squint en el pez cebra demostraron que la señalización nodal es adecuada para inducir el mesodermo en todos los vertebrados. [2]

Componentes seleccionados de la vía

Descripción general de la vía de señalización de Nodal. Nodal y su represor Lefty se expresan en respuesta a la señalización de Nodal. Los niveles de expresión de la proteína se ven afectados debido a la actividad de la superfamilia miR-430. Una vez que la proteína se traduce, debe ser procesada en el espacio extracelular por las Convertasas (Furin y PACE4). El Nodal maduro se une a los receptores de activina I y II y al correceptor Cripto/Criptic y fosforila Smad2/3. Estos Smad forman un complejo con Smad4 y entran en el núcleo y con la ayuda de p53, Mixer o FoxH1 activan la transcripción de genes involucrados en la inducción del mesodermo y el endodermo. La ectodermina, PPM1A, XFDR y Tgf1 regulan negativamente la vía compitiendo con los componentes de Smad o factores de transcripción. La interacción de Nodal con BMPs (BMP3, BMP7), Lefty o con Cerberus en el exterior de las células afecta su capacidad para unirse a los receptores y reactivar la señal.

Zurdo

Las proteínas Lefty, miembros divergentes de la superfamilia de proteínas TGFβ , actúan como antagonistas extracelulares de la señalización de Nodal. Los estudios de expresión del homólogo de Lefty, antivin, en el pez cebra muestran que Lefty probablemente actúa como un inhibidor competitivo de la señalización de Nodal. [6] La sobreexpresión de Lefty conduce a un fenotipo similar a un knock out de Nodal mientras que la sobreexpresión del receptor de activina (proteína relacionada con Nodal) o incluso el dominio extracelular del receptor puede rescatar el fenotipo. Como la inducción de Lefty depende de la expresión de Nodal, lefty actúa como un inhibidor de retroalimentación clásico para la señalización de Nodal. Al igual que los nodales, todos los vertebrados tienen al menos un gen Lefty, mientras que muchos, como el pez cebra y el ratón, tienen dos genes Lefty únicos.

Proteínas DAN

Las proteínas DAN, como Cerberus y Coco en Xenopus y Cerberus-like en ratones, también actúan como antagonistas de la señalización nodal. A diferencia de las proteínas Lefty, las proteínas DAN se unen directamente a las proteínas nodal extracelulares y evitan la señalización. Además, no todas las proteínas DAN son específicas de la señalización nodal y también bloquearán las proteínas morfogenéticas óseas (BMP) y, en el caso de Cerberus y Coco, también la señalización de Wnt. [7] Esta actividad es importante en el desarrollo neuronal y la simetría izquierda-derecha, como se analizará más adelante.

BMP

Lefty y Cerberus no son los únicos que pueden interactuar en el espacio extracelular con Nodal, existe evidencia bioquímica de que BMP3 y BMP7 forman heterodímeros con Nodal, provocando una inhibición mutua de las vías involucradas. [8]

Convertasas: Furin y PACE4

El ARNm de Nodal produce una forma proteica inmadura de Nodal que es escindida por proteínas llamadas convertasas para generar un Nodal maduro. Las convertasas de proproteína similares a subtilisina (SPC) Furin (Spc1) y PACE4 (Spc4) reconocen una secuencia específica del precursor de la proteína Nodal y la escinden para formar el ligando Nodal maduro. [9] Por el contrario, la forma inmadura de Nodal todavía es capaz de activar la vía. [10] Durante el transporte de Nodal al espacio extracelular, el correceptor Nodal captura el precursor Nodal en balsas lipídicas y una vez en la superficie celular, Cripto interactúa con las convertasas y forma un complejo que facilita el procesamiento de Nodal. [11]

Proteínas EGF-CFC

Las proteínas EGF-CFC son factores extracelulares unidos a la membrana que sirven como cofactor esencial en la señalización nodal y en el desarrollo de vertebrados en su conjunto. Esta familia de cofactores incluye One-Eyed Pinhead (oep) en pez cebra, FRL1 en Xenopus y Cripto y Criptic en ratones y humanos. Los estudios genéticos de oep en pez cebra han demostrado que la inactivación de oep tanto materna como cigótica conduce a un fenotipo similar al de la inactivación de squint/Cyclops (Nodals). De manera similar, la sobreexpresión de Nodal (squint/Cyclops) o oep con la inactivación del otro no muestra diferencias fenotípicas. Esta evidencia, junto con los datos de que la sobreexpresión de oep no muestra fenotipo, corrobora el papel de EGF-CFC como cofactor esencial en la señalización nodal. [12]

Elegante2

En ratones, ranas y peces, Dapper2 es un regulador negativo de la formación del mesodermo que actúa a través de la regulación negativa de las vías de señalización Wnt y TGFβ/nodal. En el pez cebra, se sabe que nodal activa la expresión génica de dapper2 . [13] En la superficie celular, Dapper2 se une firmemente a la forma activa de los receptores de activina tipo 1 y se dirige al receptor para la degradación lisosomal. La sobreexpresión de Dapper2 imita la pérdida de función del correceptor nodal porque la señal nodal no se puede transducir y, por lo tanto, produce menos mesodermo. En el embrión de ratón, el ARNm de dpr2 se encuentra en todo el embrión 7,5 días después de la concepción (dpc), sin embargo, su ubicación cambia a los 8,5 dpc, donde se observa en los somitas prospectivos y a los 10 dpc, el tubo neural, la vesícula ótica y el intestino; Debido a que Dapper2 y Nodal se expresan en la misma región, esto sugiere que Dapper antagoniza las señales de inducción del mesodermo derivadas de Nodal. [14] De alguna manera, la reducción de los receptores de activina conduciría a la disminución de la actividad de diferentes vías de TGFb. [13]

Delicado

Las proteínas Smad son responsables de la transducción de señales nodales al núcleo. La unión de las proteínas Nodal a los receptores de activina o de serina/treonina quinasa similares a la activina da como resultado la fosforilación de Smad2 . Smad2 se asociará entonces con Smad4 y se translocará al núcleo estimulando así la transcripción de genes diana nodales. Se ha demostrado que otro Smad, Smad3 , puede ser fosforilado por receptores activados y también puede funcionar como un activador de genes nodales. Sin embargo, la inactivación de Smad2 en ratones conduce a la interrupción de la formación de la estría primitiva . Esto no es suficiente para inactivar todos los genes mesoendodérmicos, lo que demuestra que Smad3 tiene alguna función superpuesta con Smad2. Sin embargo, la expresión de estos genes es ubicua en embriones KO de Smad2, mientras que es limitada en el tipo salvaje. Los knockouts de Smad3 no tienen un fenotipo que muestre que la superposición de expresión con Smad2 es suficiente para el desarrollo normal. [15]

Moléculas que afectan la activación nodal a través de smad

La ectodermina regula negativamente la vía nodal inhibiendo la interacción de Smad4 con otros Smads dentro del núcleo vía la mono-ubiquitinación Smad4, esta modificación permite que sea transportado fuera del citoplasma donde puede ser desubiquitinado por la proteína FAM, permitiéndole formar complejos nuevamente con otros Smads. [16] [17] Otro regulador negativo de la vía que interviene con Smads es PPM1A, una fosfatasa que actúa con Phospho-Smad2/3 volviéndolo inactivo. [18] Posteriormente, Smad2/3 es transportado fuera del núcleo con la ayuda de RanBP2. [19]

Factores transcripcionales que controlan la señalización

Smad2/3/4 puede asociarse a diferentes factores de transcripción como p53, Mixer y FoxH1 y reconocer elementos cis-reguladores específicos para activar la expresión de genes diana de Nodal en un momento y lugar precisos y activar los genes necesarios para la inducción del mesodermo. Hay otros factores de transcripción que compiten por algunos de los componentes de la maquinaria transcripcional para la activación de genes diana de Nodal. Por ejemplo, Tgif1 y Tgif2 son correguladores negativos que compiten por la forma activa de Smad2, reduciendo la concentración relativa de Smad2 activo en el núcleo. En Xenopus , la pérdida de función de Tgf1 y Tgf2 provoca la regulación positiva de Xnr5 y Xnr6. [20] Otro ejemplo de represores transcripcionales en la rana es XFDL, que se une a p53 obstruyendo la interacción con el complejo Smad2/3/4. [21]

Los miRNA que controlan la señalización

En los vertebrados, la familia de microARN miR-430/427/302, conservada evolutivamente, se expresa en las primeras fases del desarrollo. Tiene un papel importante en el control de la especificación del mesodermo y el endodermo, y lo hace regulando los niveles de expresión proteica de algunos componentes de la señalización nodal. Esta familia está compuesta por el miR-430 de los teleósteos, el miR-427 de los anfibios y el miR-302 de los mamíferos. En el pez cebra, el miR-430 inhibe la traducción de Sqt, Lefty1 y Lefty2, en las ranas el miR-427 regula Xnr5, Xnr6b, LeftyA y LeftyB, sin embargo, en las células madre embrionarias humanas se ha demostrado que el miR-302 regula negativamente la expresión de Lefty1 y Lefty2 únicamente, pero no parece regular negativamente los niveles de expresión proteica nodal. [22]

Señalización nodal en el desarrollo

Inducción del mesoendodermo

Múltiples estudios han establecido que la señal nodal es necesaria para la inducción de la mayoría de los tipos de células mesodérmicas y endodérmicas y que los knockouts de Squint/Cyclops en el pez cebra no desarrollan notocorda, corazón, riñones o incluso sangre. [23] El origen y el patrón de expresión de las proteínas de señalización nodal difieren en diferentes especies. La señalización nodal de los mamíferos se inicia de forma ubicua en las células del epiblasto y se mantiene mediante la señalización autorreguladora de Wnt3 y está limitada por la inducción de antagonistas como Cerberus-like y lefty. [24] Los estudios en Xenopus han encontrado que la expresión de xnr (el nodal de Xenopus ) es inducida por VegT en el polo vegetal y los nodales se extienden a la blástula. [25] La expresión de Xnr se estabiliza por la presencia de β-catenina. Esta información plantea la pregunta de cómo la señalización nodal conduce a la inducción tanto del endodermo como del mesodermo. La respuesta viene en forma de un gradiente de proteína nodal. Las diferencias temporales y espaciales en la señalización nodal darán como resultado diferentes destinos celulares. Con la adición de antagonistas y una gama variable de diferentes nodales, se puede dibujar un mapa de destinos celulares que incluya tanto el mesodermo como el endodermo para el embrión. [2] Sin embargo, no está claro si la señalización nodal se suma o si las células responden a la amplitud de la señal. [26]

Patrones de izquierda a derecha

La anatomía humana es asimétrica, con el corazón ubicado en el lado izquierdo y el hígado en el derecho. La asimetría izquierda-derecha (biología) es una característica común a todos los vertebrados e incluso los órganos simétricos pareados, como los pulmones, muestran asimetrías en el número de lóbulos. La evidencia de que la señalización nodal es responsable de la especificación izquierda-derecha proviene del análisis genético de organismos deficientes en la especificación izquierda-derecha. Estos estudios genéticos llevaron a la identificación de mutaciones en componentes de la vía de señalización nodal, como ActRIIB, Criptic y FoxH1 en ratones. [27] Estos estudios encontraron que la simetría izquierda-derecha se crea como resultado de la expresión del antagonista nodal en el lado derecho del embrión, que se equilibra con la propia regulación positiva nodal en la otra mitad del embrión. El resultado es un gradiente nodal que es alto en el lado ventral del embrión y, a través de la acción antagonista, disminuye como un gradiente hacia la línea media. Los estudios sobre la vía de señalización nodal y sus objetivos posteriores, como PITX2, en otros animales han demostrado que también puede controlar los patrones asimétricos de izquierda a derecha en los linajes de ascidias , anfioxos , erizos de mar y moluscos . [28]

Patrones neuronales

Como la señalización nodal da lugar al ectodermo y al mesodermo , la formación del neuroectodermo requiere bloquear la señalización nodal, lo que se logra mediante la expresión del antagonista nodal, Cerberus. El papel de la señalización nodal resurge más tarde en el desarrollo cuando la señalización nodal es necesaria para especificar el patrón neuronal de las células ventrales. La pérdida de función de Cyclops o oep en el pez cebra da como resultado embriones ciclópeos caracterizados por una falta de placa del suelo medial y prosencéfalo ventral. [2] No todos los nodales dan lugar a la formación del mesoectodermo. Xenopus nodal related 3, (Xnr3), un miembro divergente de la superfamilia TGFβ, induce la expresión de la proteína, Xbra. El patrón de expresión de Xbra, en correlación con el patrón de expresión de otro neuroinductor, Xlim-1, da como resultado el patrón del organizador en Xenopus . Esta señalización en conjunción con otros nodos, noggin, chordin, folistatin y otros, da como resultado el patrón final del sistema nervioso central de los vertebrados. [29]

Referencias

  1. ^ Shen MM (marzo de 2007). "Señalización nodal: funciones y regulación del desarrollo". Desarrollo . 134 (6): 1023–34. doi :10.1242/dev.000166. PMID  17287255.
  2. ^ ABCDE Schier AF (2003). "Señalización nodal en el desarrollo de vertebrados". Año. Rev. Desarrollo celular. Biol . 19 : 589–621. doi : 10.1146/annurev.cellbio.19.041603.094522. PMID  14570583.
  3. ^ Schier AF (noviembre de 2009). "Morfógenos nodales". Cold Spring Harb Perspect Biol . 1 (5): a003459. doi :10.1101/cshperspect.a003459. PMC 2773646. PMID 20066122  . 
  4. ^ Conlon FL, Barth KS, Robertson EJ (abril de 1991). "Una nueva mutación letal embrionaria inducida retroviralmente en el ratón: evaluación del destino de desarrollo de células madre embrionarias homocigotas para la integración proviral 413.d". Desarrollo . 111 (4): 969–81. doi :10.1242/dev.111.4.969. PMID  1879365.
  5. ^ Zhou X, Sasaki H, Lowe L, Hogan BL, Kuehn MR (febrero de 1993). "Nodal es un nuevo gen similar a TGF-beta expresado en el nódulo del ratón durante la gastrulación". Nature . 361 (6412): 543–7. Bibcode :1993Natur.361..543Z. doi :10.1038/361543a0. PMID  8429908. S2CID  4318909.
  6. ^ Thisse C, Thisse B (enero de 1999). "Antivin, un miembro nuevo y divergente de la superfamilia TGFbeta, regula negativamente la inducción del mesodermo". Desarrollo . 126 (2): 229–40. doi :10.1242/dev.126.2.229. PMID  9847237.
  7. ^ Piccolo S, Agius E, Leyns L, Bhattacharyya S, Grunz H, Bouwmeester T, De Robertis EM (febrero de 1999). "El inductor principal Cerberus es un antagonista multifuncional de las señales Nodal, BMP y Wnt". Naturaleza . 397 (6721): 707–10. Código Bib :1999Natur.397..707P. doi :10.1038/17820. PMC 2323273 . PMID  10067895. 
  8. ^ Yeo C, Whitman M (mayo de 2001). "Señales nodales a Smads a través de mecanismos cripto-dependientes y cripto-independientes". Mol. Cell . 7 (5): 949–57. doi : 10.1016/S1097-2765(01)00249-0 . PMID  11389842.
  9. ^ Beck S, Le Good JA, Guzman M, Ben Haim N, Roy K, Beermann F, Constam DB (diciembre de 2002). "Las proteasas extraembrionarias regulan la señalización nodal durante la gastrulación". Nat. Cell Biol . 4 (12): 981–5. doi :10.1038/ncb890. PMID  12447384. S2CID  12078090.
  10. ^ Ben-Haim N, Lu C, Guzman-Ayala M, Pescatore L, Mesnard D, Bischofberger M, Naef F, Robertson EJ, Constam DB (septiembre de 2006). "El precursor nodal que actúa a través de los receptores de activina induce el mesodermo al mantener una fuente de sus convertasas y BMP4". Dev. Cell . 11 (3): 313–23. doi : 10.1016/j.devcel.2006.07.005 . PMID  16950123.
  11. ^ Blanchet MH, Le Good JA, Mesnard D, Oorschot V, Baflast S, Minchiotti G, Klumperman J, Constam DB (octubre de 2008). "Cripto recluta furina y PACE4 y controla el tráfico nodal durante la maduración proteolítica". EMBO J . 27 (19): 2580–91. doi :10.1038/emboj.2008.174. PMC 2567404 . PMID  18772886. 
  12. ^ Shen MM, Schier AF (julio de 2000). "La familia de genes EGF-CFC en el desarrollo de vertebrados". Trends Genet . 16 (7): 303–9. doi :10.1016/S0168-9525(00)02006-0. PMID  10858660.
  13. ^ ab Chen YG (enero de 2009). "Regulación endocítica de la señalización de TGF-beta". Cell Res . 19 (1): 58–70. doi : 10.1038/cr.2008.315 . PMID  19050695.
  14. ^ Su Y, Zhang L, Gao X, Meng F, Wen J, Zhou H, Meng A, Chen YG (marzo de 2007). "La actividad conservada evolutivamente de Dapper2 en la antagonización de la señalización de TGF-beta". FASEB J . 21 (3): 682–90. doi : 10.1096/fj.06-6246com . PMID  17197390. S2CID  86415243.
  15. ^ Whitman M (noviembre de 2001). "Señalización nodal en embriones vertebrados tempranos: temas y variaciones". Dev. Cell . 1 (5): 605–17. doi : 10.1016/S1534-5807(01)00076-4 . PMID  11709181.
  16. ^ Dupont S, Zacchigna L, Cordenonsi M, Soligo S, Adorno M, Rugge M, Piccolo S (abril de 2005). "Especificación de la capa germinal y control del crecimiento celular mediante Ectodermin, una ubiquitina ligasa Smad4". Celúla . 121 (1): 87–99. doi : 10.1016/j.cell.2005.01.033 . hdl : 11577/2439217 . PMID  15820681. S2CID  16628152.
  17. ^ Dupont S, Mamidi A, Cordenonsi M, Montagner M, Zacchigna L, Adorno M, Martello G, Stinchfield MJ, Soligo S, Morsut L, Inui M, Moro S, Modena N, Argenton F, Newfeld SJ, Piccolo S (enero 2009). "FAM/USP9x, una enzima desubiquitinante esencial para la señalización de TGFbeta, controla la monoubiquitinación de Smad4". Celúla . 136 (1): 123–35. doi : 10.1016/j.cell.2008.10.051 . PMID  19135894. S2CID  16458957.
  18. ^ Lin X, Duan X, Liang YY, Su Y, Wrighton KH, Long J, Hu M, Davis CM, Wang J, Brunicardi FC, Shi Y, Chen YG, Meng A, Feng XH (junio de 2006). "PPM1A funciona como una fosfatasa Smad para terminar la señalización de TGFbeta". Cell . 125 (5): 915–28. doi :10.1016/j.cell.2006.03.044. PMC 6309366 . PMID  16751101. (Este artículo actualmente tiene una expresión de preocupación , consulte doi : 10.1016/j.cell.2016.03.038, PMID  27058669, Retraction Watch . Si se trata de una cita intencional a un artículo de este tipo, reemplácelo con . ){{expression of concern|...}}{{expression of concern|...|intentional=yes}}
  19. ^ Dai F, Lin X, Chang C, Feng XH (marzo de 2009). "La exportación nuclear de Smad2 y Smad3 por RanBP3 facilita la terminación de la señalización de TGF-beta". Dev. Cell . 16 (3): 345–57. doi :10.1016/j.devcel.2009.01.022. PMC 2676691 . PMID  19289081. 
  20. ^ Powers SE, Taniguchi K, Yen W, Melhuish TA, Shen J, Walsh CA, Sutherland AE, Wotton D (enero de 2010). "Tgif1 y Tgif2 regulan la señalización nodal y son necesarios para la gastrulación". Desarrollo . 137 (2): 249–59. doi :10.1242/dev.040782. PMC 2799159 . PMID  20040491. 
  21. ^ Sasai N, Yakura R, Kamiya D, Nakazawa Y, Sasai Y (mayo de 2008). "El factor ectodérmico restringe la diferenciación del mesodermo al inhibir p53". Celúla . 133 (5): 878–90. doi : 10.1016/j.cell.2008.03.035 . PMID  18510931. S2CID  16711420.
  22. ^ Rosa A, Spagnoli FM, Brivanlou AH (abril de 2009). "La familia miR-430/427/302 controla la especificación del destino mesendodérmico a través de la selección de dianas específicas de la especie". Dev. Cell . 16 (4): 517–27. doi : 10.1016/j.devcel.2009.02.007 . PMID  19386261.
  23. ^ Gritsman K, Talbot WS, Schier AF (marzo de 2000). "Patrones de señalización nodal del organizador". Desarrollo . 127 (5): 921–32. doi :10.1242/dev.127.5.921. PMID  10662632.
  24. ^ Brennan J, Lu CC, Norris DP, Rodriguez TA, Beddington RS, Robertson EJ (junio de 2001). "La señalización nodal en el epiblasto modela el embrión temprano del ratón". Nature . 411 (6840): 965–9. Bibcode :2001Natur.411..965B. doi :10.1038/35082103. PMID  11418863. S2CID  4402639.
  25. ^ Kofron M, Demel T, Xanthos J, Lohr J, Sun B, Sive H, Osada S, Wright C, Wylie C, Heasman J (diciembre de 1999). "La inducción del mesodermo en Xenopus es un evento cigótico regulado por VegT materno a través de factores de crecimiento TGFbeta". Desarrollo . 126 (24): 5759–70. doi :10.1242/dev.126.24.5759. PMID  10572051.
  26. ^ Green J (diciembre de 2002). "Gradientes de morfógeno, información posicional y Xenopus: interacción entre teoría y experimentación". Dev. Dyn . 225 (4): 392–408. doi :10.1002/dvdy.10170. PMID  12454918. S2CID  6480950.
  27. ^ Burdine RD, Schier AF (abril de 2000). "Mecanismos conservados y divergentes en la formación del eje izquierda-derecha". Genes Dev . 14 (7): 763–76. doi : 10.1101/gad.14.7.763 . PMID  10766733. S2CID  34764551.
  28. ^ Namigai, E; Kenny NJ; Shimeld SM (2014). "De frente al árbol de la vida: la evolución de la asimetría izquierda-derecha en la Bilateria". Genesis . 52 (6): 458–470. doi : 10.1002/dvg.22748 . PMID  24510729. S2CID  24995729.
  29. ^ Taira M, Saint-Jeannet JP, Dawid IB (febrero de 1997). "El papel de los genes Xlim-1 y Xbra en la formación de patrones anteroposteriores del tejido neural por el organizador de la cabeza y el tronco". Proc. Natl. Sci. EE. UU . . 94 (3): 895–900. Bibcode :1997PNAS...94..895T. doi : 10.1073/pnas.94.3.895 . PMC 19610 . PMID  9023353. 

Lectura adicional