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Diafonía (biología)

La diafonía biológica se refiere a casos en los que uno o más componentes de una vía de transducción de señales afectan a otra. Esto se puede lograr de varias maneras, siendo la forma más común la diafonía entre proteínas de cascadas de señalización. En estas vías de transducción de señales, a menudo hay componentes compartidos que pueden interactuar con cualquiera de las vías. Se puede observar un caso más complejo de diafonía en la diafonía transmembrana entre la matriz extracelular (ECM) y el citoesqueleto .

Interacción entre vías de señalización

Un ejemplo de la interacción entre proteínas en una vía de señalización se puede ver en el papel del monofosfato de adenosina cíclico (AMPc) en la regulación de la proliferación celular al interactuar con la vía de la proteína quinasa activada por mitógeno (MAP). El AMPc es un compuesto sintetizado en las células por la adenilato ciclasa en respuesta a una variedad de señales extracelulares. [1] El AMPc actúa principalmente como un segundo mensajero intracelular cuyo principal receptor intracelular es la proteína quinasa dependiente de AMPc (PKA) que actúa a través de la fosforilación de proteínas objetivo. [2] La vía de transducción de señales comienza con interacciones ligando-receptor extracelularmente. Esta señal luego se transduce a través de la membrana, estimulando la adenilil ciclasa en la superficie de la membrana interna para catalizar la conversión de ATP a AMPc. [3] [4]

La ERK, una proteína que participa en la vía de señalización de MAPK, puede ser activada o inhibida por el AMPc. [5] El AMPc puede inhibir las ERK de diversas maneras, la mayoría de las cuales involucran a la proteína quinasa dependiente de AMPc (PKA) y la inhibición de las señales dependientes de Ras a Raf-1. [6] Sin embargo, el AMPc también puede estimular la proliferación celular al estimular las ERK. Esto ocurre a través de la inducción de genes específicos mediante la fosforilación del factor de transcripción CREB por PKA. [5] Aunque las ERK no parecen ser un requisito para esta fosforilación de CREB, la vía MAPK juega un papel en la diafonía nuevamente, ya que las ERK son necesarias para fosforilar proteínas corriente abajo de CREB. [5] Otros ejemplos conocidos del requisito de ERK para los efectos transcripcionales inducidos por AMPc incluyen la inducción del gen de prolactina en células pituitarias y del gen de beta-hidroxilato de dopamina en células feocromocitomales (PC12). [6] Existen diversos mecanismos por los cuales el AMPc puede influir en la señalización de ERK. La mayoría de los mecanismos que implican la inhibición de ERK por AMPc desacoplan a Raf-1 de la activación de Ras a través de la interacción directa de PKA con Raf-1 o indirectamente a través de la interacción de PKA con la GTPasa Rap1 [6] (ver figura 1). La PKA también puede regular negativamente a ERK mediante la activación de PTPasas. Los mecanismos para la activación de ERK por AMPc son aún más variados, generalmente incluyen Rap1 o Ras, e incluso AMPc directamente. [6]

Figura 1: un posible mecanismo de inhibición de la activación de ERK por parte de cAMP/PKA (vía MAPK). La activación de PKA por parte de cAMP activa Rap1 a través de Src. Rap1 luego fosforila Ras e inhibe la señalización a Raf-1.

Diafonía transmembrana

La diafonía puede observarse incluso a través de las membranas. Las interacciones de la membrana con la matriz extracelular (ECM) y con las células vecinas pueden desencadenar una variedad de respuestas dentro de la célula. Sin embargo, la topografía y las propiedades mecánicas de la ECM también juegan un papel importante en la potente y compleja diafonía con las células que crecen sobre o dentro de la matriz. [7] Por ejemplo, el ensamblaje del citoesqueleto mediado por integrinas e incluso la motilidad celular se ven afectados por el estado físico de la ECM. [7] La ​​unión de la integrina α5β1 a su ligando ( fibronectina ) activa la formación de adherencias fibrilares y filamentos de actina . [5] Sin embargo, si la ECM está inmovilizada, se inhibe la reorganización de la matriz de este tipo y la formación de adherencias fibrilares. [7] A su vez, se observa que la unión de la misma integrina (α5β1) a un ligando de fibronectina inmovilizado forma contactos focales altamente fosforilados/ adhesión focal (células involucradas en la adhesión a la matriz) dentro de la membrana y reduce las tasas de migración celular [7] En otro ejemplo de diafonía, este cambio en la composición de los contactos focales en el citoesqueleto puede ser inhibido por miembros de otra vía: inhibidores de las quinasas de la cadena ligera de miosina o quinasas Rho, H-7 o ML-7, que reducen la contractilidad celular y, en consecuencia, la motilidad. [7] (ver figura 2).

Figura 2: La matriz puede participar en otras vías de señalización dentro de la célula incluso a través de su estado físico. La inmovilización de la matriz inhibe la formación de adherencias fibrilares y la reorganización de la matriz. Asimismo, los participantes de otras vías de señalización dentro de la célula pueden afectar la estructura del citoesqueleto y, por lo tanto, la interacción de la célula con la matriz extracelular.

Interacción en la activación de los linfocitos

Un ejemplo más complejo y específico de interacción entre dos vías de señalización principales se puede observar en la interacción de las vías de señalización de AMPc y MAPK en la activación de los linfocitos . En este caso, los componentes de la vía de AMPc afectan directa e indirectamente a la vía de señalización de MAPK destinada a activar genes relacionados con la inmunidad y los linfocitos.

El AMPc recién formado se libera de la membrana y se difunde a través del espacio intracelular , donde sirve para activar la PKA. La subunidad catalítica de la PKA debe unirse a cuatro moléculas de AMPc para activarse, con lo que la activación consiste en la escisión entre las subunidades reguladora y catalítica. [4] Esta escisión, a su vez, activa la PKA al exponer los sitios catalíticos de las subunidades C, que luego pueden fosforilar una serie de proteínas en la célula. [4]

En los linfocitos, los niveles intracelulares de AMPc aumentan tras la estimulación del receptor de antígeno y aún más en respuesta a la prostaglandina E y otros agentes inmunosupresores . [8] En este caso, el AMPc sirve para inhibir a los agentes inmunitarios. La PKA tipo I se colocaliza con los receptores de antígeno de las células T y B [9] y causa inhibición de la activación de las células T y B. La PKA incluso se ha destacado como un inductor directo de genes que contribuyen a la inmunosupresión. [10]

Además, la vía del AMPc también interactúa con la vía de la MAPK de una manera más indirecta a través de su interacción con la PTPasa hematopoyética (HePTP). La HePTP se expresa en todos los leucocitos. Cuando se sobreexpresa en las células T, la HePTP reduce la activación transcripcional del promotor de la interleucina-2 inducida típicamente por el receptor de células T activado a través de una cascada de señalización de la MAPK. [11] La forma en que la HePTP inhibe eficazmente la señalización de la MAPK es interactuando con las quinasas MAP Erk1, Erk2 y p38 a través de una secuencia corta en el extremo N no catalítico de la HePTP denominada motivo de interacción de la quinasa (KIM)., [11] [12] La unión altamente específica de Erk y p38 a esta subunidad de la HePTP da como resultado una rápida inactivación de la cascada de señalización (ver figura 3).

Figura 3: Incluso sin activación por un ligando unido al receptor (R1), la vía MAPK muestra normalmente una actividad basal (en niveles bajos). Sin embargo, HePTP contrarresta esta actividad.

Sin embargo, dado que tanto HePTP como Erk son enzimas citosólicas , [13] es razonable concluir que existe un mecanismo para que cese la inhibición de Erk por HePTP a fin de permitir la translocación de Erk activada al núcleo . De hecho, como en muchos otros casos de interacción proteína-proteína, HePTP parece ser fosforilada por Erk y p38 en los sitios Thr45 y Ser72. [11] Sin embargo, es importante destacar que se ha encontrado un tercer sitio de fosforilación en el extremo N no catalítico (la región KIM) de HePTP, uno que es fosforilado a una estequiometría mucho más alta por la vía del AMPc, [1] en otro ejemplo de diafonía entre las vías del AMPc y MAPK.

La fosforilación de este tercer sitio por las PKA de la vía del AMPc inhibe la unión de las quinasas MAP a HePTP y, por lo tanto, aumenta la cascada de señalización MAPK/ERK. La vía MAPK, a través de Ras, Raf, Mek y Erk, muestra una baja actividad en presencia de HePTP no fosforilado (activo). Sin embargo, la activación de la vía del AMPc estimula la activación de la PKA, que a su vez fosforila a HePTP en Ser23. Esto evita que HePTP se una a Erk y libera la vía MAPK de la inhibición, lo que permite que continúe la señalización descendente (consulte la figura 4).

Figura 4: la activación de la vía del AMPc mediante la unión del ligando a su receptor apropiado (R2) conduce a la activación de la proteína quinasa dependiente del AMPc (PKA) por la adenilato ciclasa (AC). Esta PKA activada fosforila HePTP en Ser23, inhibiendo su capacidad de unirse a Erk y, posteriormente, inhibiendo la vía de MAPK.

Además, estudios que involucran células musculares lisas de la aurícula del corazón han demostrado que la PKA puede reducir la activación de las quinasas MAP en respuesta al factor de crecimiento derivado de plaquetas ( PDGF ) al fosforilar la quinasa c-Raf . [14] Por lo tanto, parece plausible que la PKA en la vía del AMPc podría incluso estar más involucrada en la regulación de la activación de los linfocitos no solo al inhibir la vía de la señal MAPK del receptor de antígeno en su etapa final, sino incluso más arriba.

Notas y referencias

  1. ^ ab Saxena, M. (1999), "Interacción entre la quinasa dependiente de AMPc y la quinasa MAP a través de una proteína tirosina fosfatasa", Nat. Cell Biol. , 1 (5): 305–311, doi :10.1038/13024, PMID  10559944, S2CID  40413956
  2. ^ Scott, JD (1991), "Proteínas quinasas dependientes de nucleótidos cíclicos", Pharmacol. Ther. , 50 (1): 123–145, doi :10.1016/0163-7258(91)90075-W, PMID  1653962
  3. ^ Krupinski J.; et al. (1989), "Secuencia de aminoácidos de la adenilil ciclasa: posible estructura similar a un canal o transportador", Science , 244 (4912): 1558–1564, Bibcode :1989Sci...244.1558K, doi :10.1126/science.2472670, PMID  2472670
  4. ^ abc Wine, Jeffrey. (1999–2008), "A través de la membrana; mensajeros intracelulares: AMPc y GMPc", Universidad de Stanford, PSYCH121.
  5. ^ abcd Katz; et al. (2000), "El estado físico de la matriz extracelular regula la estructura y la composición molecular de las adhesiones célula-matriz", Mol. Biol. Cell , 11 (3): 1047–1060, doi :10.1091/mbc.11.3.1047, PMC 14830 , PMID  10712519 
  6. ^ abcd Philip JS Stork y John M. Schmitt. (2002), "Interacción entre la señalización de AMPc y MAP quinasa en la regulación de la proliferación celular", Trends in Cell Biology , 12 (6): 258–266, doi :10.1016/S0962-8924(02)02294-8, PMID  12074885
  7. ^ abcde Geiger, B.; et al. (2001), "El estado físico de la matriz extracelular regula la estructura y la composición molecular de las adhesiones célula-matriz", Nature Reviews Molecular Cell Biology , 2 (11): 793–805, doi :10.1038/35099066, PMID  11715046, S2CID  31064504
  8. ^ Ledbetter; et al. (1986), "Unión de anticuerpos a las moléculas de superficie de las células T CD5 (Tp67) y Tp44: efectos sobre los nucleótidos cíclicos, el calcio libre citoplasmático y la supresión mediada por AMPc", Journal of Immunology , 137 (10): 3299–3305, PMID  3021852
  9. ^ Levy; et al. (1996), "Proteína quinasa dependiente de AMP cíclico (cAK) en células B humanas: co-localización de cAK tipo I (RIα2C2) con el receptor de antígeno durante la activación de células B inducida por anti-inmunoglobulina", Eur. J. Immunol. , 26 (6): 1290–1296, doi :10.1002/eji.1830260617, PMID  8647207, S2CID  84171254
  10. ^ Whisler y col. (1991), "Modulación de las respuestas proliferativas de las células B humanas por AMP cíclico: función de las proteínas quinasas dependientes de AMPc en la mejora de las respuestas de las células B a los forboldiésteres y la ionomicina", Cell. Immunol. , 142 (2): 398–415, doi :10.1016/0008-8749(92)90300-e, PMID  1320464
  11. ^ abc Saxena, M.; et al. (1999), "Inhibición de la señalización de células T por la tirosina fosfatasa hematopoyética dirigida a la quinasa MAP (HePTP)", J. Biol. Chem. , 274 (17): 11693–700, doi : 10.1074/jbc.274.17.11693 , PMID  10206983
  12. ^ Pulido, R. (1998), "Las fosfatasas de proteína tirosina PTP-SL y STEP regulan la activación de las quinasas reguladas por señales extracelulares ERK1 y ERK2 mediante asociación a través de un motivo de interacción de quinasa", EMBO J. , 17 (24): 7337–7350, doi :10.1093/emboj/17.24.7337, PMC 1171079 , PMID  9857190 
  13. ^ Cobb y col. (1994), "Regulación de la cascada de quinasas MAP", Cell. Mol. Biol. Res. , 40 (3): 253–256, PMID  7874203
  14. ^ Graves; et al. (1993), "La proteína quinasa A antagoniza la señalización inducida por el factor de crecimiento derivado de plaquetas mediante la proteína quinasa activada por mitógenos en células de músculo liso arterial humano", Proc. Natl. Acad. Sci. USA , 90 (21): 10300–10304, Bibcode :1993PNAS...9010300G, doi : 10.1073/pnas.90.21.10300 , PMC 47762 , PMID  7694289