La arquitectura de un contenedor para transporte de material seco comprende dos componentes principales: un recipiente interno y una cubierta protectora externa. El recipiente interno, diseñado para contener muestras biológicas, se coloca dentro de la fase de vapor del nitrógeno líquido. [1] Esta configuración garantiza que las muestras se mantengan a temperaturas inferiores a -150 °C durante períodos prolongados. [2] Una característica distintiva de los contenedores para transporte de material seco es su capacidad para evitar el contacto directo entre las muestras y el nitrógeno líquido, lo que reduce los riesgos de contaminación y garantiza condiciones criogénicas constantes durante el tránsito. [1]
Aplicaciones
Los contenedores secos sirven a varios sectores, tanto en el ámbito científico como en el médico . [1] [3] En el ámbito de la medicina reproductiva , estos contenedores facilitan el transporte de entidades biológicas delicadas, incluidos óvulos y embriones humanos . [2] Dentro del panorama de la investigación, se emplean para transportar materiales como espermatozoides o embriones preimplantacionales de cepas de ratones genéticamente modificados , salvaguardando la integridad y viabilidad de estos activos de investigación durante su viaje. [1] [4] [5] Además, los biobancos , que archivan diversos especímenes biológicos para su posterior exploración científica, utilizan contenedores secos para enviar y adquirir muestras de investigadores de todo el mundo. [3]
Alternativa para el transporte de muestras
Una alternativa común a los envíos secos es el uso de hielo seco . Este método reduce el peso y los costos del paquete ya que no hay necesidad de envío de devolución, a diferencia de los envíos secos. Sin embargo, a -80 °C, el hielo seco podría no proporcionar una temperatura lo suficientemente baja para todos los especímenes. Por ejemplo, mientras que los espermatozoides de ratón criopreservados pueden soportar esta temperatura durante períodos cortos sin perder su capacidad de fertilización , los embriones de ratón criopreservados requieren entornos más fríos, como los que están por debajo de los -150 °C en los envíos secos, para mantener su calidad. [6] [7] [8] Otro método es enviar muestras liofilizadas a temperatura ambiente, como se ve con los espermatozoides de ratón liofilizados. Esto puede ser más rentable, pero muchas muestras, cuando se liofilizan, experimentan una disminución notable en la calidad, lo que limita su aplicabilidad. [9]
^ abcde Harrison, Charlotte (2021). "Ratones en movimiento". Animal de laboratorio . 50 (9): 233–235. doi : 10.1038/s41684-021-00829-5 . ISSN 0093-7355. PMID 34373647. S2CID 236968000.
^ abc Chang, C.-C.; Bernal, DP; Wright, G.; Straub, RJ; Witt, MA; Nagy, ZP (2009-10-21). "Las altas tasas de supervivencia de los ovocitos humanos vitrificados se mantienen después de la exposición a condiciones de transporte en la fase de vapor de nitrógeno líquido en un transportador seco durante 60 horas". Fertilidad y esterilidad . 92 (3): S183. doi : 10.1016/j.fertnstert.2009.07.1379 .
^ ab Nouvel, Agathe; Laget, Jonás; Durantón, Flore; Leroy, Jérémy; Desmetz, Carolina; Servais, Marie-Dominique; de Préville, Nathalie; Galtier, Florencia; Noca, David; Builles, Nicolás; Rebuffat, Sandra; Lajoix, Anne-Dominique (25 de octubre de 2021). "Optimización de métodos de extracción de ARN a partir de muestras de tejido metabólico humano del biobanco COMET". Informes científicos . 11 (1): 20975. Código bibliográfico : 2021NatSR..1120975N. doi :10.1038/s41598-021-00355-x. ISSN 2045-2322. PMC 8545963 . PMID 34697345.
^ Ramin, Michael; Hamburguesa, Antje; Hörlein, Andreas; Kerkau, Dagmar; von Walcke-Wulffen, Vicente; Nicklas, Werner; Schenkel, Johannes (2014). "Estabilidad de muestras criopreservadas de ratones mutantes". Biopreservación y Biobancos . 12 (5): 343–350. doi :10.1089/bio.2014.0030. ISSN 1947-5535. PMID 25340944.
^ Takeo, Toru; Kaneko, Takehito; Haruguchi, Yukie; Fukumoto, Kiyoko; Machida, Hiromi; Koga, Mika; Nakagawa, Yoshiko; Takeshita, Yumi; Matsuguma, Toyokazu; Tsuchiyama, Shuuji; Shimizu, Norihiko; Hasegawa, Takanori; Vamos, Motohito; Miyachi, Hitoshi; Anzai, Masayuki (2009). "Nacimiento de ratones a partir de embriones de 2 células vitrificados / calentados transportados a temperatura fría". Criobiología . 58 (2): 196–202. doi :10.1016/j.cryobiol.2008.12.011. PMID 19168045.
^ Okamoto, Masanori; Nakagata, Naomi; Toyoda, Yutaka (2001). "Crioconservación y transporte de espermatozoides de ratón a -79 °C". Animales experimentales . 50 (1): 83–86. doi : 10.1538/expanim.50.83 . ISSN 1341-1357. PMID 11326428. S2CID 84997032.
^ Raspa, Marcello; Guan, Mo; Paoletti, Renata; Montoliu, Lluis; Ayadi, Abdel; Marschall, Susan; Fray, Martin; Scavizzi, Ferdinando (1 de julio de 2017). "El hielo seco es un sustrato confiable para la distribución de espermatozoides de ratón congelados: un estudio multicéntrico". Theriogenology . 96 : 49–57. doi :10.1016/j.theriogenology.2017.04.003. PMID 28532839.
^ Qiu, Juan; Matsukawa, Kazutsugu; Edashige, Keisuke (25 de septiembre de 2023). "Vitrificación de equilibrio de ovocitos utilizando bajas concentraciones de crioprotectores". Criobiología . 113 : 104586. doi :10.1016/j.cryobiol.2023.104586. PMID 37722470. S2CID 262027766.
^ Ito, Daiyu; Wakayama, Sayaka; Emura, Rina; Ooga, Masatoshi; Wakayama, Teruhiko (5 de agosto de 2021). "Envío por correo de espermatozoides liofilizados de ratón viables en postales". iCiencia . 24 (8): 102815. Código bibliográfico : 2021iSci...24j2815I. doi :10.1016/j.isci.2021.102815. PMC 8390851 . PMID 34471856.