stringtranslate.com

ATP sintasa

La ATP sintasa es una enzima que cataliza la formación de la molécula de almacenamiento de energía trifosfato de adenosina (ATP) utilizando difosfato de adenosina (ADP) y fosfato inorgánico (P i ). La ATP sintasa es una máquina molecular . La reacción general catalizada por la ATP sintasa es:

La ATP sintasa se encuentra a través de la membrana celular y forma una abertura que los protones pueden cruzar desde áreas de alta concentración a áreas de baja concentración, impartiendo energía para la síntesis de ATP. Este gradiente electroquímico es generado por la cadena de transporte de electrones y permite a las células almacenar energía en ATP para su uso posterior. En las células procariotas, la ATP sintasa se encuentra a través de la membrana plasmática , mientras que en las células eucariotas se encuentra a través de la membrana mitocondrial interna . Los organismos capaces de realizar la fotosíntesis también tienen ATP sintasa a través de la membrana tilacoide , que en las plantas se encuentra en el cloroplasto y en las cianobacterias se encuentra en el citoplasma .

Las ATP sintetasas eucariotas son F-ATPasas , que funcionan "en sentido inverso" a una ATPasa . Este artículo trata principalmente de este tipo. Una F-ATPasa consta de dos subunidades principales, F O y F 1 , que tienen un mecanismo motor rotatorio que permite la producción de ATP. [1] [2]

Nomenclatura

La fracción F 1 deriva su nombre del término "Fracción 1" y F O (escrito como una letra subíndice "o", no "cero") deriva su nombre de ser la fracción de unión para la oligomicina , un tipo de antibiótico de origen natural que es capaz de inhibir la unidad F O de la ATP sintasa. [3] [4] Estas regiones funcionales consisten en diferentes subunidades proteicas; consulte las tablas. Esta enzima se utiliza en la síntesis de ATP a través de la respiración aeróbica.

Estructura y función

Sintetasa de ATP mitocondrial bovina. Las regiones F O , F 1 , eje y estator están codificadas por colores magenta, verde, naranja y cian respectivamente, es decir, F O , F 1 , eje y estator . [5] [6]
Modelo simplificado de la F O F 1 -ATPasa, también conocida como ATP sintasa de E. coli . Las subunidades de la enzima están etiquetadas como corresponde.
Motor de rotación de la ATP sintasa.

Ubicada dentro de la membrana tilacoide y la membrana mitocondrial interna , la ATP sintasa consta de dos regiones F O y F 1 . F O causa la rotación de F 1 y está hecha de un anillo c y subunidades a, dos b, F6. F 1 está hecha de subunidades α, β, γ y δ. F 1 tiene una parte soluble en agua que puede hidrolizar ATP. F O por otro lado tiene regiones principalmente hidrofóbicas. F O F 1 crea una vía para el movimiento de protones a través de la membrana. [7]

F1región

La porción F 1 de la ATP sintasa es hidrófila y se encarga de hidrolizar el ATP. La unidad F 1 sobresale hacia el espacio de la matriz mitocondrial . Las subunidades α y β forman un hexámero con 6 sitios de unión. Tres de ellos son catalíticamente inactivos y se unen al ADP.

Otras tres subunidades catalizan la síntesis de ATP. Las otras subunidades F 1 γ, δ y ε son parte de un mecanismo motor rotacional (rotor/eje). La subunidad γ permite que β pase por cambios conformacionales (es decir, estados cerrado, semiabierto y abierto) que permiten que el ATP se una y se libere una vez sintetizado. La partícula F 1 es grande y se puede ver en el microscopio electrónico de transmisión mediante tinción negativa. [8] Estas son partículas de 9 nm de diámetro que salpican la membrana mitocondrial interna.

FOhregión

Subunidad F6 de F O de la región del tallo periférico de la ATP sintasa. [10]

F O es una proteína insoluble en agua con ocho subunidades y un anillo transmembrana. El anillo tiene una forma tetramérica con una proteína hélice-bucle-hélice que pasa por cambios conformacionales cuando se protona y desprotona, empujando a las subunidades vecinas a rotar, causando el giro de F O que luego también afecta la conformación de F 1 , lo que resulta en el cambio de estados de las subunidades alfa y beta. La región F O de la ATP sintasa es un poro de protones que está incrustado en la membrana mitocondrial. Consta de tres subunidades principales, a, b y c. Seis subunidades c forman el anillo rotor, y la subunidad b forma un tallo que se conecta a F 1 OSCP que evita que el hexámero αβ rote. La subunidad a conecta b al anillo c. [11] Los humanos tienen seis subunidades adicionales, d , e , f , g , F6 y 8 (o A6L). Esta parte de la enzima se encuentra en la membrana interna mitocondrial y acopla la translocación de protones a la rotación que provoca la síntesis de ATP en la región F 1 .

En los eucariotas, el F O mitocondrial forma dímeros que doblan la membrana. Estos dímeros se autoorganizan en largas filas al final de las crestas , posiblemente el primer paso de la formación de las crestas. [12] Se determinó un modelo atómico para la región dimérica del F O de la levadura mediante crio-EM a una resolución general de 3,6 Å. [13]

Modelo de encuadernación

Mecanismo de la ATP sintasa. Se muestra la combinación de ADP y Pi (rosa) para formar ATP (rojo), mientras que la subunidad γ (gamma) rotatoria en negro provoca un cambio conformacional .
Representación de la ATP sintasa que utiliza el gradiente de protones quimiosmótico para impulsar la síntesis de ATP a través de la fosforilación oxidativa .

Entre los años 1960 y 1970, Paul Boyer , profesor de la UCLA , desarrolló la teoría del mecanismo de cambio de enlace, o flip-flop, que postulaba que la síntesis de ATP depende de un cambio conformacional en la ATP sintasa generado por la rotación de la subunidad gamma. El grupo de investigación de John E. Walker , entonces en el Laboratorio de Biología Molecular del MRC en Cambridge , cristalizó el dominio catalítico F 1 de la ATP sintasa. La estructura, en ese momento la estructura proteica asimétrica más grande conocida, indicó que el modelo de catálisis rotatoria de Boyer era, en esencia, correcto. Por dilucidar esto, Boyer y Walker compartieron la mitad del Premio Nobel de Química de 1997 .

La estructura cristalina de la F 1 mostró subunidades alfa y beta alternas (3 de cada una), dispuestas como segmentos de una naranja alrededor de una subunidad gamma asimétrica rotatoria. Según el modelo actual de síntesis de ATP (conocido como el modelo catalítico alterno), el potencial transmembrana creado por los cationes de protones (H+) suministrados por la cadena de transporte de electrones, impulsa a los cationes de protones (H+) desde el espacio intermembrana a través de la membrana mediante la región F O de la ATP sintasa. Una porción del F O (el anillo de subunidades c ) gira a medida que los protones pasan a través de la membrana. El anillo c está firmemente unido al tallo central asimétrico (que consiste principalmente en la subunidad gamma), lo que hace que gire dentro de la alfa 3 beta 3 de F 1, lo que hace que los 3 sitios de unión de nucleótidos catalíticos pasen por una serie de cambios conformacionales que conducen a la síntesis de ATP. Las subunidades principales de F 1 no pueden rotar en simpatía con el rotor del tallo central debido a un tallo periférico que une la alfa 3 beta 3 a la porción no rotatoria de F O . La estructura de la ATP sintasa intacta se conoce actualmente a baja resolución a partir de estudios de criomicroscopía electrónica (crio-EM) del complejo. El modelo crio-EM de la ATP sintasa sugiere que el tallo periférico es una estructura flexible que envuelve el complejo a medida que une F 1 a F O . En las condiciones adecuadas, la reacción enzimática también se puede llevar a cabo a la inversa, con la hidrólisis de ATP impulsando el bombeo de protones a través de la membrana.

El mecanismo de cambio de unión implica el ciclo del sitio activo de una subunidad β entre tres estados. [14] En el estado "suelto", el ADP y el fosfato entran en el sitio activo; en el diagrama adyacente, esto se muestra en rosa. La enzima luego experimenta un cambio de forma y fuerza a estas moléculas a unirse, con el sitio activo en el estado "apretado" resultante (mostrado en rojo) uniendo la molécula de ATP recién producida con una afinidad muy alta . Finalmente, el sitio activo vuelve al estado abierto (naranja), liberando ATP y uniendo más ADP y fosfato, listo para el siguiente ciclo de producción de ATP. [15]

Papel fisiológico

Al igual que otras enzimas, la actividad de la F 1 F O ATP sintasa es reversible. Cantidades suficientemente grandes de ATP hacen que se cree un gradiente de protones transmembrana , que es utilizado por bacterias fermentadoras que no tienen una cadena de transporte de electrones, sino que hidrolizan el ATP para formar un gradiente de protones, que utilizan para impulsar los flagelos y el transporte de nutrientes hacia el interior de la célula.

En las bacterias que respiran en condiciones fisiológicas, la ATP sintasa, en general, funciona en la dirección opuesta, creando ATP mientras utiliza la fuerza motriz de protones creada por la cadena de transporte de electrones como fuente de energía. El proceso general de creación de energía de esta manera se denomina fosforilación oxidativa . El mismo proceso tiene lugar en las mitocondrias , donde la ATP sintasa se encuentra en la membrana mitocondrial interna y la parte F 1 se proyecta hacia la matriz mitocondrial . Al bombear cationes de protones hacia la matriz, la ATP sintasa convierte el ADP en ATP.

Evolución

Se cree que la evolución de la ATP sintasa ha sido modular, por lo que dos subunidades funcionalmente independientes se asociaron y adquirieron una nueva funcionalidad. [16] [17] Esta asociación parece haber ocurrido temprano en la historia evolutiva, porque esencialmente la misma estructura y actividad de las enzimas ATP sintasa están presentes en todos los reinos de la vida. [16] La F-ATP sintasa muestra una gran similitud funcional y mecanicista con la V-ATPasa . [18] Sin embargo, mientras que la F-ATP sintasa genera ATP utilizando un gradiente de protones, la V-ATPasa genera un gradiente de protones a expensas del ATP, generando valores de pH tan bajos como 1. [19]

La región F 1 también muestra una similitud significativa con las helicasas de ADN hexaméricas (especialmente el factor Rho ), y toda la región enzimática muestra cierta similitud con H+
-complejos motores flagelares o T3SS potenciados . [18] [20] [21] El hexámero α 3 β 3 de la región F 1 muestra una similitud estructural significativa con las helicasas de ADN hexaméricas; ambas forman un anillo con simetría rotacional triple con un poro central. Ambas tienen funciones que dependen de la rotación relativa de una macromolécula dentro del poro; las helicasas de ADN utilizan la forma helicoidal del ADN para impulsar su movimiento a lo largo de la molécula de ADN y para detectar el superenrollamiento, mientras que el hexámero α 3 β 3 utiliza los cambios conformacionales a través de la rotación de la subunidad γ para impulsar una reacción enzimática. [22]

La H+
El motor de la partícula F O muestra una gran similitud funcional con el H+
motores que impulsan los flagelos. [18] Ambos presentan un anillo de muchas proteínas alfa-helicoidales pequeñas que giran en relación con las proteínas estacionarias cercanas, utilizando un H+
gradiente de potencial como fuente de energía. Sin embargo, este vínculo es tenue, ya que la estructura general de los motores flagelares es mucho más compleja que la de la partícula F O y el anillo con aproximadamente 30 proteínas rotatorias es mucho más grande que las 10, 11 o 14 proteínas helicoidales del complejo F O. Sin embargo, datos estructurales más recientes muestran que el anillo y el tallo son estructuralmente similares a la partícula F 1. [21]

Cambios de conformación de la ATP sintasa durante la síntesis

La teoría de la evolución modular para el origen de la ATP sintasa sugiere que existen dos subunidades con función independiente, una helicasa de ADN con actividad ATPasa y una H+
motor, pudieron unirse, y la rotación del motor impulsó la actividad ATPasa de la helicasa en sentido inverso. [16] [22] Este complejo luego desarrolló una mayor eficiencia y finalmente se convirtió en las intrincadas sintasas de ATP actuales. Alternativamente, la helicasa de ADN/ H+
El complejo motor pudo haber tenido H+
Actividad de bombeo con la actividad ATPasa de la helicasa que impulsa la H+
motor en reversa. [16] Esto puede haber evolucionado para llevar a cabo la reacción inversa y actuar como una ATP sintasa. [17] [23] [24]

Inhibidores

Se han descubierto diversos inhibidores naturales y sintéticos de la ATP sintasa. [25] Estos se han utilizado para investigar la estructura y el mecanismo de la ATP sintasa. Algunos pueden tener uso terapéutico. Existen varias clases de inhibidores de la ATP sintasa, incluidos inhibidores de péptidos, fitoquímicos polifenólicos, policétidos, compuestos organoestánnicos, derivados poliénicos de α-pirona, inhibidores catiónicos, análogos de sustrato, modificadores de aminoácidos y otros productos químicos diversos. [25] Algunos de los inhibidores de la ATP sintasa más utilizados son la oligomicina y el DCCD .

En diferentes organismos

Bacteria

La ATP sintasa de E. coli es la forma más simple conocida de ATP sintasa, con 8 tipos de subunidades diferentes.[11]

Las F-ATPasas bacterianas pueden ocasionalmente operar a la inversa, convirtiéndolas en una ATPasa. [26] Algunas bacterias no tienen F-ATPasa, y utilizan una ATPasa de tipo A/V de forma bidireccional. [9]

Levadura

La ATP sintasa de levadura es una de las ATP sintasas eucariotas mejor estudiadas; se han identificado cinco subunidades F 1 , ocho subunidades F O y siete proteínas asociadas. [7] La ​​mayoría de estas proteínas tienen homólogos en otros eucariotas. [27] [28] [29] [30]

Planta

En las plantas, la ATP sintasa también está presente en los cloroplastos (CF 1 F O -ATP sintasa). La enzima está integrada en la membrana del tilacoide ; la parte CF 1 se adhiere al estroma , donde tienen lugar las reacciones oscuras de la fotosíntesis (también llamadas reacciones independientes de la luz o ciclo de Calvin ) y la síntesis de ATP. La estructura general y el mecanismo catalítico de la ATP sintasa del cloroplasto son casi los mismos que los de la enzima bacteriana. Sin embargo, en los cloroplastos, la fuerza motriz de protones no se genera por la cadena de transporte de electrones respiratorios sino por proteínas fotosintéticas primarias. La sintasa tiene un inserto de 40 aa en la subunidad gamma para inhibir la actividad derrochadora cuando está oscuro. [31]

Mamífero

La ATP sintasa aislada de las mitocondrias del corazón bovino ( Bos taurus ) es, en términos de bioquímica y estructura, la ATP sintasa mejor caracterizada. El corazón de vacuno se utiliza como fuente de la enzima debido a la alta concentración de mitocondrias en el músculo cardíaco. Sus genes tienen una homología cercana con las ATP sintasas humanas. [32] [33] [34]

Genes humanos que codifican componentes de las ATP sintasas:

Otros eucariotas

Los eucariotas que pertenecen a algunos linajes divergentes tienen organizaciones muy especiales de la ATP sintasa. Una ATP sintasa de euglenozoos forma un dímero con una cabeza F 1 en forma de bumerán como otras ATP sintasas mitocondriales, pero el subcomplejo F O tiene muchas subunidades únicas. Utiliza cardiolipina . El inhibidor IF 1 también se une de manera diferente, de una manera compartida con los tripanosomatida . [35]

Arqueas

Las arqueas no suelen tener una F-ATPasa, sino que sintetizan ATP utilizando la A-ATPasa/sintasa, una máquina rotatoria estructuralmente similar a la V-ATPasa pero que funciona principalmente como una ATP sintasa. [26] Al igual que la F-ATPasa bacteriana, se cree que también funciona como una ATPasa. [9]

LUCA y anteriores

El enlace genético y el orden genético de la F-ATPasa están ampliamente conservados en los linajes procariotas antiguos, lo que implica que este sistema ya existía en una fecha anterior al último ancestro común universal , el LUCA. [36]

Véase también

Referencias

  1. ^ Okuno D, Iino R, Noji H (junio de 2011). "Rotación y estructura de la sintetasa FoF1-ATP". Journal of Biochemistry . 149 (6): 655–664. doi : 10.1093/jb/mvr049 . PMID  21524994.
  2. ^ Junge W, Nelson N (junio de 2015). "ATP sintasa". Revisión anual de bioquímica . 84 : 631–657. doi : 10.1146/annurev-biochem-060614-034124 . PMID  25839341.
  3. ^ Kagawa Y, Racker E (mayo de 1966). "Resolución parcial de las enzimas que catalizan la fosforilación oxidativa. 8. Propiedades de un factor que confiere sensibilidad a la oligomicina en la adenosina trifosfatasa mitocondrial". The Journal of Biological Chemistry . 241 (10): 2461–2466. doi : 10.1016/S0021-9258(18)96640-8 . PMID  4223640.
  4. ^ Mccarty RE (noviembre de 1992). "LA PERSPECTIVA DE UN BIOQUÍMICO VEGETAL SOBRE LAS H+-ATPasas Y LAS ATP SINTASAS". The Journal of Experimental Biology . 172 (Pt 1): 431–441. doi :10.1242/jeb.172.1.431. PMID  9874753.
  5. ^ PDB : 5ARA ​; Zhou A, Rohou A, Schep DG, Bason JV, Montgomery MG, Walker JE, et al. (octubre de 2015). "Estructura y estados conformacionales de la ATP sintasa mitocondrial bovina mediante crio-EM". eLife . 4 : e10180. doi : 10.7554/eLife.10180 . PMC 4718723 . PMID  26439008. 
  6. ^ Goodsell D (diciembre de 2005). "ATP sintasa". Molécula del mes . doi :10.2210/rcsb_pdb/mom_2005_12.
  7. ^ ab Velours J, Paumard P, Soubannier V, Spannagel C, Vaillier J, Arselin G, Graves PV (mayo de 2000). "Organización de la ATP sintasa F(0) de la levadura: un estudio basado en mutantes de cisteína, modificación de tiol y reactivos de reticulación". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics . 1458 (2–3): 443–456. doi : 10.1016/S0005-2728(00)00093-1 . PMID  10838057.
  8. ^ Fernandez Moran H, Oda T, Blair PV, Green DE (julio de 1964). "Una unidad macromolecular repetitiva de la estructura y función mitocondriales. Estudios microscópicos electrónicos y bioquímicos correlacionados de mitocondrias aisladas y partículas submissionocondriales de músculo cardíaco de res". The Journal of Cell Biology . 22 (1): 63–100. doi :10.1083/jcb.22.1.63. PMC 2106494 . PMID  14195622. 
  9. ^ abc Stewart AG, Laming EM, Sobti M, Stock D (abril de 2014). "ATPases rotatorias: máquinas moleculares dinámicas". Current Opinion in Structural Biology . 25 : 40–48. doi : 10.1016/j.sbi.2013.11.013 . PMID  24878343.
  10. ^ PDB : 1VZS ​; Carbajo RJ, Silvester JA, Runswick MJ, Walker JE, Neuhaus D (septiembre de 2004). "Estructura de la solución de la subunidad F(6) de la región periférica del tallo de la ATP sintasa de mitocondrias de corazón bovino". Journal of Molecular Biology . 342 (2): 593–603. doi :10.1016/j.jmb.2004.07.013. PMID  15327958.
  11. ^ ab Ahmad Z, Okafor F, Laughlin TF (2011). "Papel de los residuos cargados en los sitios catalíticos de la ATP sintasa de Escherichia coli". Journal of Amino Acids . 2011 : 785741. doi : 10.4061/2011/785741 . PMC 3268026 . PMID  22312470. 
  12. ^ Blum TB, Hahn A, Meier T, Davies KM, Kühlbrandt W (marzo de 2019). "Los dímeros de la ATP sintasa mitocondrial inducen la curvatura de la membrana y se autoensamblan en filas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 116 (10): 4250–4255. Bibcode :2019PNAS..116.4250B. doi : 10.1073/pnas.1816556116 . PMC 6410833 . PMID  30760595. 
  13. ^ Guo H, Bueler SA, Rubinstein JL (noviembre de 2017). "Modelo atómico para la región FO dimérica de la ATP sintasa mitocondrial". Science . 358 (6365): 936–940. Bibcode :2017Sci...358..936G. doi :10.1126/science.aao4815. PMC 6402782 . PMID  29074581. 
  14. ^ Gresser MJ, Myers JA, Boyer PD (octubre de 1982). "Cooperatividad del sitio catalítico de la adenosina trifosfatasa F1 mitocondrial de corazón de res. Correlaciones de la velocidad inicial, el intermedio ligado y las mediciones de intercambio de oxígeno con un modelo de tres sitios alternados". The Journal of Biological Chemistry . 257 (20): 12030–12038. doi : 10.1016/S0021-9258(18)33672-X . PMID  6214554.
  15. ^ Nakamoto RK, Baylis Scanlon JA, Al-Shawi MK (agosto de 2008). "El mecanismo rotatorio de la ATP sintasa". Archivos de bioquímica y biofísica . 476 (1): 43–50. doi :10.1016/j.abb.2008.05.004. PMC 2581510. PMID  18515057 . 
  16. ^ abcd Doering C, Ermentrout B, Oster G (diciembre de 1995). "Motores rotatorios de ADN". Revista biofísica . 69 (6): 2256–2267. Código Bibliográfico :1995BpJ....69.2256D. doi :10.1016/S0006-3495(95)80096-2. PMC 1236464 . PMID  8599633. 
  17. ^ ab Crofts A. "Conferencia 10: ATP sintasa". Ciencias de la vida en la Universidad de Illinois en Urbana-Champaign .
  18. ^ abc "ATP sintasa". Base de datos InterPro .
  19. ^ Beyenbach KW, Wieczorek H (febrero de 2006). "La ATPasa H+ de tipo V: estructura molecular y función, funciones fisiológicas y regulación". The Journal of Experimental Biology . 209 (Pt 4): 577–589. doi : 10.1242/jeb.02014 . PMID  16449553.
  20. ^ Skordalakes E, Berger JM (julio de 2003). "Estructura del terminador de transcripción Rho: mecanismo de reconocimiento del ARNm y carga de la helicasa". Cell . 114 (1): 135–146. doi : 10.1016/S0092-8674(03)00512-9 . PMID  12859904. S2CID  5765103.
  21. ^ ab Imada K, Minamino T, Uchida Y, Kinoshita M, Namba K (marzo de 2016). "Información sobre la exportación de flagelos tipo III revelada por la compleja estructura de la ATPasa tipo III y su regulador". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 113 (13): 3633–3638. Bibcode :2016PNAS..113.3633I. doi : 10.1073/pnas.1524025113 . PMC 4822572 . PMID  26984495. 
  22. ^ ab Martinez LO, Jacquet S, Esteve JP, Rolland C, Cabezón E, Champagne E, et al. (enero de 2003). "La cadena beta ectópica de la ATP sintasa es un receptor de la apolipoproteína AI en la endocitosis hepática de HDL". Nature . 421 (6918): 75–79. Bibcode :2003Natur.421...75M. doi :10.1038/nature01250. PMID  12511957. S2CID  4333137.
  23. ^ Cross RL, Taiz L (enero de 1990). "Duplicación génica como medio para alterar las proporciones H+/ATP durante la evolución de las ATPasas y sintasas FOF1". FEBS Letters . 259 (2): 227–229. doi : 10.1016/0014-5793(90)80014-a . PMID  2136729. S2CID  32559858.
  24. ^ Cross RL, Müller V (octubre de 2004). "La evolución de las ATP sintasas y ATPasas de tipo A, F y V: reversiones en la función y cambios en la relación de acoplamiento H+/ATP". FEBS Letters . 576 (1–2): 1–4. doi : 10.1016/j.febslet.2004.08.065 . PMID  15473999. S2CID  25800744.
  25. ^ ab Hong S, Pedersen PL (diciembre de 2008). "ATP sintasa y las acciones de los inhibidores utilizados para estudiar sus funciones en la salud humana, la enfermedad y otras áreas científicas". Microbiology and Molecular Biology Reviews . 72 (4): 590–641, Tabla de contenidos. doi :10.1128/MMBR.00016-08. PMC 2593570 . PMID  19052322. 
  26. ^ ab Kühlbrandt W, Davies KM (enero de 2016). "ATPases rotatorias: una nueva versión de una máquina antigua". Tendencias en ciencias bioquímicas . 41 (1): 106–116. doi :10.1016/j.tibs.2015.10.006. PMID  26671611.
  27. ^ Devenish RJ, Prescott M, Roucou X, Nagley P (mayo de 2000). "Información sobre el ensamblaje y la función de la ATP sintasa a través de la manipulación genética molecular de las subunidades del complejo enzimático mitocondrial de la levadura". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics . 1458 (2–3): 428–442. doi : 10.1016/S0005-2728(00)00092-X . PMID  10838056.
  28. ^ Kabaleeswaran V, Puri N, Walker JE, Leslie AG, Mueller DM (noviembre de 2006). "Nuevas características del mecanismo catalítico rotatorio reveladas en la estructura de la ATPasa F1 de levadura". The EMBO Journal . 25 (22): 5433–5442. doi :10.1038/sj.emboj.7601410. PMC 1636620 . PMID  17082766. 
  29. ^ Stock D, Leslie AG, Walker JE (noviembre de 1999). "Arquitectura molecular del motor rotatorio en la ATP sintasa". Science . 286 (5445): 1700–1705. doi :10.1126/science.286.5445.1700. PMID  10576729.
  30. ^ Liu S, Charlesworth TJ, Bason JV, Montgomery MG, Harbour ME, Fearnley IM, Walker JE (mayo de 2015). "La purificación y caracterización de complejos de ATP sintasa de las mitocondrias de cuatro especies de hongos". The Biochemical Journal . 468 (1): 167–175. doi :10.1042/BJ20150197. PMC 4422255 . PMID  25759169. 
  31. ^ Hahn A, Vonck J, Mills DJ, Meier T, Kühlbrandt W (mayo de 2018). "Estructura, mecanismo y regulación de la ATP sintasa del cloroplasto". Science . 360 (6389): eaat4318. doi : 10.1126/science.aat4318 . PMC 7116070 . PMID  29748256. 
  32. ^ Abrahams JP, Leslie AG, Lutter R, Walker JE (agosto de 1994). "Estructura a una resolución de 2,8 A de la F1-ATPasa de mitocondrias de corazón bovino". Nature . 370 (6491): 621–628. Bibcode :1994Natur.370..621A. doi :10.1038/370621a0. PMID  8065448. S2CID  4275221.
  33. ^ Gibbons C, Montgomery MG, Leslie AG, Walker JE (noviembre de 2000). "La estructura del tallo central en la F(1)-ATPasa bovina a una resolución de 2,4 A". Nature Structural Biology . 7 (11): 1055–1061. doi :10.1038/80981. PMID  11062563. S2CID  23229994.
  34. ^ Menz RI, Walker JE, Leslie AG (agosto de 2001). "Estructura de la F(1)-ATPasa mitocondrial bovina con nucleótidos unidos a los tres sitios catalíticos: implicaciones para el mecanismo de catálisis rotatoria". Cell . 106 (3): 331–341. doi : 10.1016/s0092-8674(01)00452-4 . PMID  11509182. S2CID  1266814.
  35. ^ Mühleip A, McComas SE, Amunts A (noviembre de 2019). "Estructura de una ATP sintasa mitocondrial con cardiolipina nativa unida". eLife . 8 : e51179. doi : 10.7554/eLife.51179 . PMC 6930080 . PMID  31738165. 
    • “Diferente al resto”. eLife . 24 de diciembre de 2019.
  36. ^ Matzke NJ, Lin A, Stone M, Baker MA (julio de 2021). "Aparato exportador flagelar y sintetasa de ATP: homología evidenciada por la sintenia anterior al Último Ancestro Común Universal". BioEssays . 43 (7): e2100004. doi :10.1002/bies.202100004. hdl : 2292/55176 . PMID  33998015. S2CID  234747849.

Lectura adicional

Enlaces externos