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Prunasina

( R )-prunasina es un glucósido cianogénico relacionado con la amígdala . Químicamente, es el glucósido del ( R ) -mandelonitrilo .

sucesos naturales

La prunasina se encuentra en especies del género Prunus como Prunus japonica o P. maximowiczii y en almendras amargas . [1] También se encuentra en hojas y tallos de Olinia ventosa , O. radiata , O. emarginata y O. rochetiana [2] y en Acacia greggii . Es un precursor biosintético e intermediario en la biosíntesis de la amígdala , el compuesto químico responsable del sabor de la almendra amarga . [ cita necesaria ]

También se encuentra en el café de diente de león , un sustituto del café. [ cita necesaria ]

Sambunigrin

Sambunigrina, un diastereómero de prunasina derivado del ( S )-mandelonitrilo en lugar del isómero ( R ), se ha aislado de las hojas del saúco ( Sambucus nigra ). [3] Sambunigrina está presente en las hojas y tallos de saúco en una proporción de 1:3 de sambunigrina a prunasina, y de 2:5 en la semilla inmadura. [4] No se encuentra en la raíz. [4]

Biosíntesis

Descripción general

( R )-prunasina comienza con el aminoácido común fenilalanina , que en las plantas se produce a través de la vía Shikimato en el metabolismo primario . La vía está catalizada principalmente por dos enzimas del citocromo P450 (CYP) y una UDP-glucosiltransferasa (UGT). Después de que se forma ( R ) -prunasina, se convierte en amigdalina mediante una UDP-glucosiltransferasa adicional o se degrada en benzaldehído y cianuro de hidrógeno.

Los investigadores han demostrado que la acumulación (o falta de) de prunasina y amigdalina en la almendra es responsable de los genotipos dulces y amargos. [1] Debido a que la amígdala es responsable del sabor amargo de las almendras, los productores de almendras han seleccionado genotipos que minimizan la biosíntesis de la amigdalina. Las enzimas CYP responsables de la generación de prunasina se conservan en todas las especies de Prunus . [5] Existe una correlación entre la alta concentración de prunasina en las regiones vegetativas de la planta y el dulzor de la almendra, lo cual es relevante para la industria agrícola de la almendra . En las almendras, los genes biosintéticos de la amígdala se expresan en diferentes niveles en el tegumento (tejido madre o sección externa) y el cotiledón (núcleo o tejido padre), y varían significativamente durante la ontogenia de la almendra . [1] [6] [7] La ​​biosíntesis de prunasina ocurre en el tegumento y luego se transporta a otros tejidos para su conversión en amigdalina o su degradación. [ 15]

Biosíntesis de ( R ) -prunasina

Vía biosintética para la producción de (R)-prunasina en especies de Prunus (arriba) y Eucalyptus cladocalyx (abajo)

Biosíntesis de ( R ) -prunasina en Prunus dulcis

La L-fenilalanina es hidroxilada primero por CYP79D16, seguida de una descarboxilación y deshidratación, formando la E- oxima fenilacetaldoxima. [8] A continuación, CYP71AN24 cataliza la reordenación de la E- oxima a la Z- oxima seguida de una deshidratación y una hidroxilación para formar mandelonitrilo. [8] Finalmente, UGT85A19 o UGT94AF3 utilizan UDP-glucosa para glicosilar mandelonitrilo, formando ( R )-prunasina. [1]

Después de generar ( R ) -prunasina, el producto se glicosila aún más en amigdalina mediante la isoforma UGT94AF1 o UGT94AF2. [1] La expresión de UGTAF1/2 y prunasina hidrolasas da como resultado una concentración general baja de ( R )-prunasina en los tejidos de almendra. Es importante señalar que una alfaglucosidasa o prunasina hidrolasa puede convertir la ( R )-prunasina en mandelonitrilo, su precursor, que luego puede hidrolizarse espontánea o enzimáticamente a benzaldehído y cianuro de hidrógeno. [9]

Biosíntesis de ( R ) -prunasina en Eucalyptus cladocalyx

Se ha demostrado que la biosíntesis de ( R )-prunasina en E. cladocalyx , el árbol de la goma de azúcar , sintetiza ( R )-prunasina utilizando un intermedio adicional, fenilacetonitrilo , utilizando CYP706C55. [10] La vía procede de manera similar a la vía en las especies de Prunus , donde el CYP79A125 multifuncional cataliza la conversión de L-fenilalanina en fenilacetaldoxima. Luego, CYP706C55 cataliza la deshidratación de fenilacetaldoxima a fenilacetonitrilo. Luego, el fenilacetonitrilo es hidroxilado por CYP71B103 a mandelonitrilo . Después de generar mandelonitrilo, UGT85A59 transfiere glucosa para producir ( R )-prunasina. [10]

Interacciones de la vía metabólica

Como ( R ) -prunasina es un producto del metabolismo secundario, su generación y degradación afectan múltiples vías metabólicas al consumir L-fenilalanina o cantidades crecientes de benzaldehído y cianuro de hidrógeno tóxico a través de la degradación de la prunasina.

El perfil metabólico en almendras, yuca y sorgo identificó un posible mecanismo de reciclaje en el que la ( R )-prunasina y otros glucósidos de cianógeno pueden utilizarse para el almacenamiento y el reciclaje de nitrógeno sin generar HCN. [11] En 2017, los investigadores utilizaron el marcaje con isótopos estables para demostrar que la L-fenilalanina marcada con 13 C incorporada en ( R )-prunasina podría convertirse en benzaldehído y ácido salicílico utilizando mandelonitrilo como intermediario. [12]

Toxicidad

La toxicidad de la prunasina se basa en sus productos de degradación: ( R )-prunasina se hidroliza para formar benzaldehído y cianuro de hidrógeno , lo que provoca toxicidad. Por tanto, las plantas que contienen prunasina pueden ser tóxicas para los animales, especialmente los rumiantes . [13]

Para degradar la amigdalina a prunasina, la amigdalina beta-glucosidasa hidroliza el disacárido para producir ( R ) -prunasina y D -glucosa. Luego, la prunasina beta-glucosidasa utiliza ( R )-prunasina y agua para producir D - glucosa y mandelonitrilo . Después de generar la aglicona mandelonitrilo , una mandelonitrilo liasa puede degradar el compuesto en benzaldehído y cianuro de hidrógeno . [ cita necesaria ]

Referencias

  1. ^ abcdef Sánchez-Pérez, Raquel; Belmonte, Fara Sáez; Borch, Jonás; Dicenta, Federico; Møller, Birger Lindberg; Jørgensen, Kirsten (abril de 2012). "Prunasina Hidrolasas durante el desarrollo del fruto en almendras dulces y amargas". Fisiología de las plantas . 158 (4): 1916-1932. doi : 10.1104/pp.111.192021. ISSN  0032-0889. PMC  3320195 . PMID  22353576.
  2. ^ Nahrstedt, Adolf; Rockenbach, Jürgen (1993). "Aparición del glucósido cianogénico prunasina y el correspondiente II glucósido de amida del ácido mandélico en especies de Olinia (oliniaceae)". Fitoquímica . 34 (2): 433. Bibcode : 1993PChem..34..433N. doi :10.1016/0031-9422(93)80024-M.
  3. ^ Andrew Pengelly (2004), Los constituyentes de las plantas medicinales (2ª ed.), Allen & Unwin, págs. 44–45, ISBN 978-1-74114-052-1
  4. ^ ab Miller, Rebecca E.; Gleadow, Roslyn M.; Woodrow, Ian E. (2004). "Cianogénesis en Prunus turneriana tropical: caracterización, variación y respuesta a poca luz". Biología Funcional de las Plantas . 31 (5): 491–503. doi :10.1071/FP03218. ISSN  1445-4408. PMID  32688921.
  5. ^ ab Thodberg, Sara; Del Cueto, Jorge; Mazzeo, Rosa; Pavan, Stefano; Lotti, Concetta; Dicenta, Federico; Jakobsen Neilson, Elizabeth H.; Møller, Birger Lindberg; Sánchez-Pérez, Raquel (noviembre 2018). "La dilucidación de la vía de la amígdala revela la base metabólica de las almendras amargas y dulces (Prunus dulcis) 1 [ABIERTO]". Fisiología de las plantas . 178 (3): 1096-1111. doi : 10.1104/pp.18.00922. ISSN  0032-0889. PMC 6236625 . PMID  30297455. 
  6. ^ Sánchez-Pérez, Raquel; Jorgensen, Kirsten; Olsen, Carl Erik; Dicenta, Federico; Møller, Birger Lindberg (marzo de 2008). "Amargor en las Almendras". Fisiología de las plantas . 146 (3): 1040-1052. doi : 10.1104/pp.107.112979. ISSN  0032-0889. PMC 2259050 . PMID  18192442. 
  7. ^ Neilson, Elizabeth H.; Goodger, Jason QD; Motawia, Mohammed Saddik; Bjarnholt, Nanna; Frisch, Tina; Olsen, Carl Erik; Møller, Birger Lindberg; Woodrow, Ian E. (diciembre de 2011). "Diglucósidos cianogénicos derivados de fenilalanina de Eucalyptus camphora y su abundancia en relación con la ontogenia y el tipo de tejido". Fitoquímica . 72 (18): 2325–2334. Código Bib : 2011PChem..72.2325N. doi :10.1016/j.phytochem.2011.08.022. PMID  21945721.
  8. ^ ab Yamaguchi, Takuya; Yamamoto, Kazunori; Asano, Yasuhisa (septiembre de 2014). "Identificación y caracterización de CYP79D16 y CYP71AN24 que catalizan el primer y segundo paso en la biosíntesis de glucósidos cianogénicos derivados de l-fenilalanina en el albaricoque japonés, Prunus mume Sieb. et Zucc". Biología Molecular Vegetal . 86 (1–2): 215–223. doi :10.1007/s11103-014-0225-6. ISSN  0167-4412. PMID  25015725. S2CID  14884838.
  9. ^ Zhou, Jiming; Hartmann, Stefanie; Pastor, Brianne K.; Poulton, Jonathan E. (1 de julio de 2002). "Investigación de la microheterogeneidad y los residuos que confieren especificidad de aglicona de las hidrolasas de prunasina de cereza negra". Fisiología de las plantas . 129 (3): 1252-1264. doi : 10.1104/págs.010863. ISSN  0032-0889. PMC 166519 . PMID  12114579. 
  10. ^ ab Hansen, Cecilie Cetti; Sorensen, Mette; Veiga, Thiago AM; Zibrandtsen, Juliane FS; Heskes, Allison M.; Olsen, Carl Erik; Boughton, Berin A.; Møller, Birger Lindberg; Neilson, Elizabeth HJ (noviembre de 2018). "La biosíntesis de glucósidos cianogénicos reconfigurada en Eucalyptus cladocalyx implica un citocromo P450 CYP706C55". Fisiología de las plantas . 178 (3): 1081-1095. doi : 10.1104/pp.18.00998. ISSN  0032-0889. PMC 6236593 . PMID  30297456. 
  11. ^ Pičmanová, Martina; Neilson, Elizabeth H.; Motawia, Mohammed S.; Olsen, Carl Erik; Agerbirk, Niels; Gris, Christopher J.; Flitsch, Sabine; Meier, Sebastián; Silvestro, Daniele; Jorgensen, Kirsten; Sánchez-Pérez, Raquel (1 de agosto de 2015). "Una vía de reciclaje de glucósidos cianogénicos evidenciada por el perfil metabólico comparativo en tres especies de plantas cianogénicas". Revista Bioquímica . 469 (3): 375–389. doi :10.1042/BJ20150390. ISSN  0264-6021. PMID  26205491. S2CID  206152311.
  12. ^ Díaz-Vivancos, Pedro; Bernal-Vicente, Agustina; Cantabella, Daniel; Petri, César; Hernández, José Antonio (01-12-2017). "Los enfoques metabolómicos y bioquímicos vinculan la biosíntesis del ácido salicílico con la cianogénesis en plantas de melocotón". Fisiología Vegetal y Celular . 58 (12): 2057–2066. doi : 10.1093/pcp/pcx135 . hdl : 10317/7678 . ISSN  0032-0781. PMID  29036663.
  13. ^ Peter R. Cheeke (1989). Tóxicos de Origen Vegetal: Glucósidos . vol. 2. Prensa CRC. pag. 137.