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Microscopía SEEC

Imagen 3D Sarfus de un biochip de ADN .

La microscopía de contraste elipsométrico de superficie mejorada (SEEC) utiliza un microscopio óptico vertical o invertido en una configuración de polarización cruzada y placas de soporte específicas llamadas surfs sobre las que se deposita la muestra para su observación. [1] Se describe como una técnica de nanoscopia óptica .

El SEEC se basa en el control preciso de las propiedades de reflexión de la luz polarizada sobre una superficie, mejorando la sensibilidad axial de un microscopio óptico en dos órdenes de magnitud sin reducir su resolución lateral. [1] Las aplicaciones podrían incluir la visualización en tiempo real de películas tan delgadas como 0,3 micrómetros y nanoobjetos aislados en el aire y en el agua.

Principios

Observación con microscopio óptico estándar entre polarizadores cruzados de capas de Langmuir-Blodgett (espesor de bicapa: 5,4 nm) sobre oblea de silicio y sobre superficie.
Polarización de la luz después de la reflexión en una ola (0) y en una muestra a escala nanométrica en una ola (1).

Un estudio de 2006 sobre la coherencia de la luz polarizada condujo al desarrollo de nuevos soportes (las superficies) con propiedades de amplificación de contraste para la microscopía óptica estándar en modo de polarización cruzada. [2] Estos soportes, compuestos de capas ópticas sobre un sustrato opaco o transparente, no modifican la polarización de la luz después de la reflexión, incluso si la apertura numérica de la fuente incidente es significativa. Esta propiedad se modifica cuando una muestra está presente en una superficie; luego se detecta un componente de luz no nulo después de que se haya analizado, lo que hace que la muestra sea visible.

El rendimiento de estos soportes se evalúa midiendo el contraste (C) de la muestra definido como: C = (I 1 -I 0 )/(I 0 +I 1 ) donde I 0 e I 1 representan las intensidades reflejadas por la superficie desnuda y por la muestra analizada sobre la superficie, respectivamente. Para un espesor de película de un nanómetro, las superficies presentan un contraste 200 veces superior al de la oblea de silicio.

Este aumento de contraste permite la visualización con microscopio óptico estándar de películas con espesores de hasta 0,3 nanómetros, así como nanoobjetos (hasta un diámetro de 2 nanómetros) y esto, sin ningún tipo de etiquetado de la muestra (ni fluorescencia , ni un marcador radiactivo). Una ilustración del aumento de contraste se encuentra en la Figura para microscopía óptica entre polarizadores cruzados de una estructura Langmuir-Blodgett sobre una oblea de silicio y sobre una superficie.

Aplicaciones

Imágenes de nanoestructuras obtenidas por Sarfus: 1. Microestructuración de películas de copolímeros (73 nm), 2. Haces de nanotubos de carbono, 3. Vesículas lipídicas en soluciones acuosas, 4. Nanopatrón de puntos de oro (50 nm 3 ).

Ciencias de la vida

Películas delgadas y tratamiento de superficies

Nanomateriales

Aplicaciones comerciales

La estación de mapeo Sarfus de Nanolane se basa en microscopía de contraste elipsométrico de superficie mejorada. [10]

Referencias

  1. ^ ab Jones-Bey, Hassaun A. (1 de diciembre de 2006). "MICROSCOPÍA: La técnica de polarización diferencial permite obtener imágenes nanométricas tridimensionales precisas". Laser Focus World . Consultado el 5 de noviembre de 2024 .
  2. ^ Ausserré D; Valignat MP (2006). "Imágenes ópticas de campo amplio de nanoestructuras superficiales". Nano Letters . 6 (7): 1384–1388. Bibcode :2006NanoL...6.1384A. doi :10.1021/nl060353h. PMID  16834416.
  3. ^ Souplet V, Desmet R, Melnyk O (2007). "Obtención de imágenes de capas de proteínas con un microscopio óptico para la caracterización de microarreglos de péptidos". J. Pept. Sci . 13 (7): 451–457. doi :10.1002/psc.866. PMID  17559066. S2CID  26078821.
  4. ^ Carion O, Souplet V, Olivier C, Maillet C, Médard N, El-Mahdi O, Durand JO, Melnyk O (2007). "Micropatrones químicos de policarbonato para la inmovilización de péptidos específicos del sitio e interacciones biomoleculares". ChemBioChem . 8 (3): 315–322. doi :10.1002/cbic.200600504. PMID  17226879. S2CID  1770479.
  5. ^ Monot J, Petit M, Lane SM, Guisle I, Léger J, Tellier C, Talham DR, Bujoli B (2008). "Hacia microarreglos basados ​​en fosfonato de zirconio para sondear interacciones ADN-proteína: influencia crítica de la ubicación de los grupos de anclaje de la sonda". J. Am. Chem. Soc . 130 (19): 6243–6251. doi :10.1021/ja711427q. PMID  18407629.
  6. ^ Yunus S, de Crombrugghe de Looringhe C, Poleunis C, Delcorte A (2007). "Difusión de oligómeros de sellos de polidimetilsiloxano en la impresión por microcontacto: análisis de superficie y posible aplicación". Surf. Interf. Anal . 39 (12–13): 922–925. doi :10.1002/sia.2623. S2CID  93335242.
  7. ^ Burghardt S, Hirsch A, Médard N, Abou-Kachfhe R, Ausserré D, Valignat MP, Gallani JL (2005). "Preparación de pasos orgánicos altamente estables con una molécula basada en fulerenos". Langmuir . 21 (16): 7540–7544. doi :10.1021/la051297n. PMID  16042492.
  8. ^ Pauliac-Vaujour E, Stannard A, Martin CP, Blunt MO, Notingher I, Moriarty PJ, Vancea I, Thiele U (2008). "Inestabilidades de digitación en nanofluidos deshumectantes" (PDF) . Phys. Rev. Lett . 100 (17): 176102. Bibcode :2008PhRvL.100q6102P. doi :10.1103/PhysRevLett.100.176102. PMID  18518311. S2CID  8047821.
  9. ^ Valles C, Drummond C, Saadaoui H, Furtado CA, He M, Roubeau O, Ortolani L, Monthioux M, Penicaud A (2008). "Soluciones de láminas y cintas de grafeno cargadas negativamente". J. Am. Química. Soc . 130 (47): 15802–15804. doi :10.1021/ja808001a. PMID  18975900.
  10. ^ "Microscopía a nanoescala para mapeo de Sarfus". Photonics Spectra . 8 : 31–44. doi : 10.2147/NSA.S50042 . PMC 4599210 . PMID  26491270.