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Motilidad de los espermatozoides

Vídeo de espermatozoides humanos moviéndose bajo un microscopio

La motilidad de los espermatozoides describe la capacidad de los espermatozoides para moverse adecuadamente a través del tracto reproductivo femenino ( fertilización interna ) o a través del agua ( fertilización externa ) para llegar al óvulo . La motilidad del esperma también puede considerarse como la calidad , que es un factor para una concepción exitosa ; los espermatozoides que no "nadan" adecuadamente no llegarán al óvulo para fertilizarlo . La motilidad de los espermatozoides en los mamíferos también facilita el paso de los espermatozoides a través del cúmulo oóforo (una capa de células) y la zona pelúcida (una capa de matriz extracelular ), que rodean al ovocito de los mamíferos .

En el ratón de bosque Apodemus sylvaticus , los espermatozoides se agregan en "trenes" que son más capaces de fertilizar óvulos porque son más capaces de navegar en el ambiente viscoso del tracto reproductivo femenino. Los trenes se mueven con un movimiento sinusoidal.

La motilidad de los espermatozoides también se ve afectada por ciertos factores liberados por los óvulos. [1]

El movimiento de los espermatozoides se activa mediante cambios en la concentración de iones intracelulares. [2] Los cambios en la concentración de iones que provocan la motilidad son diferentes entre especies. En los invertebrados marinos y los erizos de mar , el aumento del pH a aproximadamente 7,2-7,6 activa la ATPasa , lo que conduce a una disminución del potasio intracelular y, por tanto, induce la hiperpolarización de la membrana . Como resultado, se activa el movimiento de los espermatozoides. [3] El cambio en el volumen celular que altera la concentración de iones intracelulares también puede contribuir a la activación de la motilidad de los espermatozoides. En algunos mamíferos , la motilidad de los espermatozoides se activa mediante el aumento del pH, el ion calcio y el AMPc , pero se suprime por un pH bajo en el epidídimo .

La cola del espermatozoide, el flagelo , confiere motilidad al espermatozoide y tiene tres componentes principales:

  1. un esqueleto central construido con 11 microtúbulos denominados colectivamente axonema y similar a la estructura equivalente que se encuentra en los cilios
  2. una delgada membrana celular que cubre el axonema
  3. mitocondrias dispuestas en espiral alrededor del axonema en la pieza media,

El movimiento de vaivén de la cola resulta de un movimiento de deslizamiento longitudinal rítmico entre los túbulos anterior y posterior que forman el axonema. La energía para este proceso la aporta el ATP producido por las mitocondrias. La velocidad de un espermatozoide en un medio líquido suele ser de 1 a 4 mm/min. Esto permite que los espermatozoides avancen hacia el óvulo para fertilizarlo.

El axonema está unido en su base a un centríolo conocido como centríolo distal y actúa como cuerpo basal . [4] En la mayoría de los animales, este centríolo distal actúa como un amortiguador impidiendo que los filamentos de los microtúbulos se muevan en la base del axonema. Por el contrario, en los mamíferos, el centríolo distal evolucionó una estructura atípica, conocida como centríolo distal atípico. [5] El centríolo atípico está formado por microtúbulos extendidos organizados en los lados izquierdo y derecho. Durante el movimiento de los espermatozoides, los dos lados se mueven entre sí, lo que ayuda a dar forma a la forma de onda de la cola del espermatozoide. [5]

En los mamíferos, los espermatozoides maduran funcionalmente mediante un proceso que se conoce como capacitación . Cuando los espermatozoides alcanzan el oviducto ístmico , se ha informado que su motilidad se reduce a medida que se adhieren al epitelio. Cerca del momento de la ovulación, se produce una hiperactivación. Durante este proceso, los flagelos se mueven con gran curvatura y longitud de onda larga. [6] La hiperactivación es iniciada por el calcio extracelular; sin embargo, se desconocen los factores que regulan el nivel de calcio. [7]

Sin intervención tecnológica, un espermatozoide inmóvil o anormalmente móvil no va a fertilizar. Por lo tanto, la fracción de una población de espermatozoides que es móvil se utiliza ampliamente como medida de la calidad del semen. La motilidad insuficiente de los espermatozoides es una causa común de subfertilidad o infertilidad . Hay varias medidas disponibles para mejorar la calidad del esperma.

movimiento del axonema

La motilidad de los espermatozoides depende de varias vías metabólicas y mecanismos reguladores.

El movimiento de curvatura axonemal se basa en el deslizamiento activo de los microtúbulos dobles axonemales mediante el motor molecular dineína, que se divide en un brazo externo y uno interno. El brazo exterior y el interior desempeñan funciones diferentes en la producción y regulación de la motilidad flagelar: el brazo exterior aumenta la frecuencia de los latidos, el brazo interior participa en la propulsión y propagación de la flexión flagelar. La flexión del flagelo se debe a ciclos posteriores de unión del brazo de dineína, generación de fuerza y ​​desprendimiento en la subunidad B. La unión del axonema es el resultado de la presencia de una resistencia al deslizamiento de los microtúbulos generada por la dineína.

Las dineínas en los dos lados del aparato del par central están reguladas de manera opuesta mediante un juego de activación/desactivación realizado por el aparato del par central de radios radiales, que regula la flexión flagelar. La motilidad de los espermatozoides está regulada por varias vías y las más importantes son la vía del calcio y la vía de la PKA. Estas vías implican iones, adenilil ciclasa, AMPc, canales de membrana y fosforilaciones.

El primer evento es la activación de un cotransportador Na + /HCO3 − (NBC) y la regulación de HCO3 /Cl por los transportadores SLC26, que provocan un aumento en los niveles de HCO3 .

El segundo evento es la activación de un intercambiador Na + /H + y del canal de protones Hv-1, que conduce a un aumento en los niveles de pH.

Este aumento de los niveles de HCO3 y pH provoca la activación del canal CatSper, un canal de calcio específico de la membrana del esperma. CatSperm también puede activarse mediante progesterona y albúmina. CatSper, una vez activado, abre y deja libre entrada de calcio al interior de la célula, con un aumento global de los niveles intracelulares de calcio.

Juntos, el aumento de HCO3 , pH y calcio conduce a la activación de una adenilil ciclasa soluble (SAC o SACY), que aumenta la producción de AMPc y provoca la activación de PKA, una proteína quinasa que fosforila varias tirosina quinasas y conduce a a una cascada de fosforilación que finaliza con la fosforilación de la dineína axonemal y el inicio del movimiento flagelar. [8]

Daño al ADN del esperma

El daño al ADN del esperma es común en hombres infértiles . [9] Aproximadamente el 31% de los hombres con defectos en la motilidad del esperma tienen altos niveles de fragmentación del ADN del esperma . [10]

Motilidad de los espermatozoides y edad

La motilidad de los espermatozoides aumenta desde la pubertad hasta mediados de los treinta. Las investigaciones muestran que a partir de los 36 años, la motilidad de los espermatozoides disminuye del 40% de los grados A y B al 31% a los 50 años. Los efectos del envejecimiento en la calidad del semen se resumen a continuación basándose en un estudio de 1219 sujetos: [11]

Clasificaciones de motilidad

  1. Movimiento recto,
  2. Movimiento en zig-zag,
  3. vibrante,
  4. No móvil

Referencias

  1. ^ Pluma, AT, Garbers, LD (2002). "Quimioatracción y activación de la motilidad de los espermatozoides". En Daniel M. Hardy (ed.). Fertilización . California: prensa académica. pag. 29.ISBN​ 978-0-12-311629-1.{{cite book}}: Mantenimiento CS1: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  2. ^ Jensen, Martin Blomberg (marzo de 2014). "Vitamina D y reproducción masculina". Reseñas de la naturaleza Endocrinología . 10 (3): 175–186. doi :10.1038/nrendo.2013.262. PMID  24419359. S2CID  32394600.
  3. ^ Darszón, Alberto; Labarca, Pedro; Nishigaki, Takuya; Espinosa, Felipe (1 de abril de 1999). "Canales iónicos en fisiología del esperma". Revisiones fisiológicas . 79 (2): 481–510. doi :10.1152/physrev.1999.79.2.481. PMID  10221988. S2CID  30768971.
  4. ^ Avidor-Reiss, Tomer; Carr, Alexa; Fishman, Emily Lillian (diciembre de 2020). "Los centríolos de espermatozoides". Endocrinología Molecular y Celular . 518 : 110987. doi : 10.1016/j.mce.2020.110987. PMC 7606549 . PMID  32810575. 
  5. ^ ab Fishman, Emily L.; Jo, Kyoung; Nguyen, Quynh PH; Kong, Dong; Royfman, Rachel; Cekic, Anthony R.; Khanal, Sushil; Miller, Ann L.; Sinceramente, Calvino; Schatten, Gerald; Loncarek, Jadranka; Menella, Vito; Avidor-Reiss, Tomer (diciembre de 2018). "Un nuevo centríolo de esperma atípico es funcional durante la fertilización humana". Comunicaciones de la naturaleza . 9 (1): 2210. Código Bib : 2018NatCo...9.2210F. doi :10.1038/s41467-018-04678-8. PMC 5992222 . PMID  29880810. 
  6. ^ Mortimer, D; Aitken, Rj; Mortimer, San; Pacey, AA (1995). "Informe del taller: CASA clínica - la búsqueda del consenso". Reproducción, Fertilidad y Desarrollo . 7 (4): 951–959. doi :10.1071/RD9950951. PMID  8711226.
  7. ^ Yanagimachi, R. (1994). "Fertilización de mamíferos". En Knobil, E.; Neill, JD (eds.). La fisiología de la reproducción . Nueva York: Raven Press. págs. 189–317.[ Falta el ISBN ]
  8. ^ Sol, Xiang-hong; Zhu, Ying-ying; Wang, Lin; Liu, Hong-ling; Ling, Yong; Li, Zong-li; Sun, Li-bo (diciembre de 2017). "El canal Catsper y su papel en la fertilidad masculina: una revisión sistemática". Biología Reproductiva y Endocrinología . 15 (1): 65. doi : 10.1186/s12958-017-0281-2 . PMC 5558725 . PMID  28810916. 
  9. ^ Simón, Lucas; Lutton, Débora; McManus, Joanne; Lewis, Sheena EM (febrero de 2011). "Daño en el ADN del esperma medido mediante el ensayo alcalino Comet como un predictor independiente de la infertilidad masculina y el éxito de la fertilización in vitro". Fertilidad y Esterilidad . 95 (2): 652–657. doi : 10.1016/j.fertnstert.2010.08.019 . PMID  20864101.
  10. ^ Belloc, Stephanie; Benjalifa, Moncef; Cohen-Bacrie, Martine; Dalleac, Alain; Chahine, Hikmat; Amar, Eduardo; Zini, Armand (mayo de 2014). "¿Qué anomalía aislada del esperma está más relacionada con el daño del ADN del esperma en los hombres que se presentan para una evaluación de infertilidad?". Revista de Reproducción Asistida y Genética . 31 (5): 527–532. doi :10.1007/s10815-014-0194-3. PMC 4016368 . PMID  24566945. 
  11. ^ Kumar, MD, Naina; Singh, MD, Amit K; Choudhari, MD, Ajay R (agosto de 2017). "Impacto de la edad en los parámetros del semen en parejas masculinas de parejas infértiles en un centro de atención terciaria rural del centro de la India: un estudio transversal". Revista Internacional de Biomedicina Reproductiva . 15 (8): 497–502.

enlaces externos