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latrotoxina

Una latrotoxina es una neurotoxina de alta masa molecular que se encuentra en el veneno de las arañas del género Latrodectus (arañas viudas), así como en al menos una especie de otro género de la misma familia, Steatoda nobilis . [1] Las latrotoxinas son los principales componentes activos del veneno y son responsables de los síntomas del latrodectismo .

Se han descrito las siguientes latrotoxinas: cinco toxinas insecticidas , denominadas α, β, γ, δ y ε-latroinsectotoxinas, una neurotoxina específica de vertebrados , la alfa-latrotoxina, y una toxina que afecta a los crustáceos , la α-latrocrustatoxina. [2]

α-latrotoxina

La latrotoxina mejor estudiada es la alfa-latrotoxina, que actúa presinápticamente para liberar neurotransmisores (incluida la acetilcolina ) de las neuronas sensoriales y motoras, así como sobre las células endocrinas (para liberar insulina , por ejemplo). [3] Es una proteína de ~130 kDa que existe principalmente en sus formas dimerizada o tetramerizada.

La α-latrotoxina ( α-LTX ) se puede encontrar de forma natural en las arañas viudas del género Latrodectus . La más conocida de esas arañas es la viuda negra, Latrodectus mactans . [4] El veneno de las arañas viudas ( Latrodectus ) contiene varias toxinas proteicas, llamadas latrotoxinas, que se dirigen selectivamente a vertebrados , insectos o crustáceos . Una de estas toxinas es la α-latrotoxina y se dirige selectivamente contra los vertebrados; es ineficaz en insectos y crustáceos. α-LTX tiene una alta afinidad por receptores específicos de células neuronales y endocrinas de vertebrados. [5]

Biosíntesis

A medida que se transcribe y traduce la secuencia de ADN de α-LTX, se forma una molécula precursora inactiva de α-LTX (156,9 kDa). Esta molécula precursora se somete a un procesamiento postraduccional donde se forma la eventual proteína α-LTX activa (131,5 kDa). [6]

El extremo N de la molécula precursora de α-LTX está precedido por secuencias hidrofílicas cortas que terminan con un grupo de aminoácidos básicos. Estos grupos son reconocidos por enzimas proteolíticas ( proteasas tipo furina ), que escinden y activan las moléculas precursoras de α-LTX mediante hidrólisis. El extremo C también es reconocido por estas proteasas tipo furina y también es escindido. [6]

Las moléculas precursoras de α-LTX son sintetizadas por ribosomas libres en el citosol y, por lo tanto, son citosólicas en las células epiteliales secretoras de las glándulas venenosas. [6] [7] Sin embargo, pueden asociarse con gránulos secretores aunque no se absorben en la luz de los gránulos. La molécula precursora citosólica de α-LTX se libera de la célula mediante secreción holocrina donde termina en la glándula venenosa de la araña. Esta glándula contiene varias proteasas implicadas en la escisión de la molécula precursora de α-LTX. [8]

La estructura terciaria de la proteína α-LTX se puede dividir en tres partes: el ala N-terminal (36 kDa), [7] el cuerpo (76 kDa), [7] y la cabeza C-terminal (18,5 kDa). [7] Debido a las repeticiones de anquirina C-terminal, que median las interacciones proteína-proteína, el monómero α-LTX forma un dímero con otro monómero α-LTX en condiciones normales. [8] La formación de tetrámeros activa la toxicidad. [7]

Toxicocinética

α-LTX afecta las terminaciones nerviosas motoras y las células endocrinas. No se asocian actividades enzimáticas importantes. [7] En cambio, la toxina puede formar poros en las membranas lipídicas e inducir el flujo de iones Ca 2+ . La aparición de los efectos por intoxicación puede ocurrir con un período de retraso de 1 a 10 minutos, incluso a niveles de concentración subnanomolar. En concentraciones nanomolares, se producen ráfagas de liberación de neurotransmisores. Después de las ráfagas, entran en vigor períodos prolongados de liberación en estado estacionario. [7] [9]

La neurotoxina induce inicialmente la estimulación de pequeños potenciales de acción de la placa terminal , mientras que más tarde la neurotransmisión se bloquea en la unión neuromuscular. Esto se debe al agotamiento del contenido de las vesículas sinápticas. [10]

Toxicodinámica

La α-LTX en su forma tetramérica interactúa con receptores ( neurexinas y latrofilinas ) en la membrana neuronal, lo que provoca la inserción de α-LTX en la membrana.

Una vez que el tetrámero se inserta en la membrana celular, pueden ocurrir dos mecanismos de acción. En primer lugar, la inserción puede provocar la formación de poros y posiblemente otros efectos y, en segundo lugar, el receptor puede activarse, lo que conduce a la señalización intracelular. [8] Las cuatro cabezas del tetrámero forman un cuenco que rodea el poro, que está restringido en un punto a 10 Å. [7] Las concentraciones milimolares de Ca 2+ y Mg 2+ catalizan fuertemente la formación de tetrámeros, lo que sugiere que el estado tetramétrico depende del catión divalente, mientras que el EDTA favorece la formación del dímero. Las investigaciones también muestran que concentraciones de La 3+ superiores a 100 μM también bloquean la tetramerización. [7] La ​​formación de poros puede ocurrir en membranas lipídicas puras, pero los receptores reconstituidos aumentan en gran medida la formación de poros. Las membranas biológicas bloquean la formación de poros cuando no hay receptores α-LTX presentes (neurexina, latrofilina, PTPσ). [7] También se sabe que los tres residuos de cisteína altamente conservados están involucrados con la unión del receptor α-LTX, porque los mutantes que contienen serina en lugar de residuos de cisteína no indujeron toxicidad. [7] El dominio N-terminal debe plegarse adecuadamente, en el que los enlaces disulfuro deben ser funcionales. La toxina α-LTX está unida a una pequeña proteína, LMWP o latrodectina. Se ha observado que la formación de poros en las bicapas lipídicas es imposible cuando no se dispone de latrodectina. La lactrodectina no tiene ningún efecto sobre la toxicidad de α-LTX. [7]

formación de poros

Los poros formados por α-LTX en la membrana son permeables al Ca 2+ y, por tanto, permiten la entrada de Ca 2+ en la célula. Este influjo hacia una célula excitable estimula la exocitosis directa y eficientemente. La entrada de cationes es proporcional a la cantidad de poros y, por tanto, a la cantidad de receptores implicados expresados ​​en la membrana celular. Además, el Ca 2+ facilita enormemente la formación de los tetrámeros y, por tanto, la formación de poros. El poro también es permeable a los neurotransmisores, lo que provoca una fuga masiva del conjunto de neurotransmisores en el citosol . [8]

Además del influjo de Ca 2+ , el canal no es muy selectivo, permitiendo que Na + , K + , Ba 2+ , Sr 2+ , Mg 2+ , Li + y Cs + también pasen por la membrana. El poro está abierto la mayor parte del tiempo, con una probabilidad de apertura de 0,8. La mayoría de los cationes trivalentes bloquean canales a 50-100 μM, como Yb 3+ , Gd 3+ , Y 3+ , La 3+ y Al 3+ . [7]

El poro no sólo es permeable a los cationes, sino también al agua. Esto provoca inflamación de las terminales nerviosas. Se producen más alteraciones del potencial de membrana debido a la permeabilidad de moléculas pequeñas, como los neurotransmisores y el ATP, para pasar a través del poro α-LTX.

Penetración de membrana

Aunque se ha demostrado de manera concluyente la formación de poros tetraméricos de α-latrotoxina [ cita necesaria ] , algunos autores aún cuestionan si este es el principal modo de acción de la α-latrotoxina y creen que la α-latrotoxina (tetrámera o no) puede penetrar a través de la membrana. de las células diana para interactuar directamente con la maquinaria de liberación de neurotransmisores intracelulares. [ cita necesaria ]

Receptores

Se sugiere el siguiente mecanismo para los efectos mediados por receptores. Se han descrito tres receptores para la α-latrotoxina:

La toxina estimula un receptor, probablemente latrofilina, que es un receptor acoplado a proteína G vinculado a Gαq/11. El efector posterior de Gαq/11 es la fosfolipasa C (PLC). Cuando se activa, la PLC aumenta la concentración citosólica de IP3, lo que a su vez induce la liberación de Ca 2+ de las reservas intracelulares. Este aumento del Ca 2+ citosólico puede aumentar la probabilidad de liberación y la tasa de exocitosis espontánea. [8] Latrofilina con α-LTX puede inducir la activación de la proteína quinasa C (PKC). PKC es responsable de la fosforilación de las proteínas SNARE. Así, la latrofilina con α-LTX induce el efecto de exocitosis de las vesículas de transporte. Hay que descubrir el mecanismo exacto. [11]

Señalización

Además de los efectos principales de la formación de poros de la α-latrotoxina, otros efectos de la α-latrotoxina están mediados por la interacción con la latrofilina y la señalización intracelular (ver transducción de señales ). [ cita necesaria ]

Relación estructura actividad (SAR)

El dímero α-LTX natural tiene que formar un tetrámero para ser tóxico. La tetramerización se produce sólo en presencia de cationes bivalentes (como Ca 2+ o Mg 2+ ) o moléculas anfipáticas. Los cuatro monómeros que forman este tetrámero están dispuestos simétricamente alrededor de un eje central, asemejándose a una hélice de cuatro palas con un diámetro de 250 Å y un espesor de 100 Å. Los dominios de la cabeza forman la masa central compacta reunida y rodeada por los dominios del cuerpo. Las alas están perpendiculares al eje del tetrámero. Debido a esta forma, el tetrámero contiene un canal en forma de pera en la masa central. En el extremo inferior, el diámetro de este canal es de 25 Å, luego se ensancha a 36 Å para restringirse a 10 Å en la parte superior. [7] [8]

La base del tetrámero (debajo de las alas) tiene 45 Å de profundidad y es hidrófoba, lo que media la inserción en la membrana celular. Además, la inserción del tetrámero sólo es posible en presencia de ciertos receptores (principalmente neurexina Iα y latrofilina y PTPσ en menor medida) en la membrana. Neurexin Iα sólo media la inserción en presencia de Ca 2+ , mientras que latrofilina y PTPσ pueden mediar la inserción sin presencia de Ca 2+ . [8] Entonces, debido al canal y la inserción en la membrana celular, la proteína hace que la célula sea más permeable a las sustancias que pueden pasar a través del canal. Estas sustancias son cationes mono y bivalentes, neurotransmisores, colorantes fluorescentes y ATP. [8]

Toxicidad

La dosis letal media (LD50) de α-LTX en ratones es de 20 a 40 μg/kg de peso corporal. [8]

La LD50 del veneno de Latrodectus en mg/kg para varias especies: rana = 145, mirlo = 5,9, canario = 4,7, cucaracha = 2,7, polluelo = 2,1, ratón = 0,9, mosca doméstica = 0,6, paloma = 0,4, cobaya = 0,1 . [12]

Contribución científica

αLTX ha ayudado a confirmar la hipótesis del transporte vesicular de liberación de transmisores, establecer el requisito de Ca 2+ para la exocitosis vesicular y caracterizar sitios de liberación de transmisores individuales en el sistema nervioso central. Ayudó a identificar dos familias de importantes receptores de la superficie de las células neuronales. [8]

La forma mutante de αLTX, que se llama αLTXN4C y no forma poros, ha contribuido a la investigación. Ayudó a descifrar el mecanismo de transducción de señales intracelulares estimulado por αLTX. La toxina mutante también se puede utilizar para estudiar la naturaleza y las propiedades de las reservas intracelulares de Ca 2+ implicadas en la vía de transducción del receptor de toxina y su efecto sobre los potenciales postsinápticos evocados. La toxina mutante también puede ser un instrumento para dilucidar las funciones endógenas de αLTX. [8]

Otros componentes del veneno

La presa natural de las arañas viudas son los insectos y en su veneno se encuentran varias insectotoxinas. Las latroinsectotoxinas parecen tener estructuras similares. [13]

Las proteínas de alto peso molecular que se han aislado de la viuda negra mediterránea ( L. tredecimguttatus ) incluyen las neurotoxinas específicas de insectos α-latroinsectotoxina y δ-latroinsectotoxina, una neurotoxina que afecta a los crustáceos conocida como latrocrustatoxina, y pequeños péptidos que inhiben la angiotensina-1. -enzima convertidora . [2]

Además de las latrotoxinas de alto peso molecular descritas anteriormente, el veneno de Latrodectus también contiene proteínas de bajo peso molecular [14] cuya función aún no se ha explorado completamente, pero puede estar involucrada en facilitar la inserción de latrotoxinas en la membrana. [15]

Referencias

  1. ^ Dunbar, John P.; Fuerte, Antonio; Redureau, Damián; Sulpicio, Ronan; Dugón, Michel M.; Quinton, Loïc (junio de 2020). "El enfoque venenoso revela una alta proporción de toxinas similares a Lactrodectus en el veneno de la noble araña viuda falsa Steatoda nobilis". Toxinas . 12 (6): 402. doi : 10.3390/toxinas12060402 . PMC  7354476 . PMID  32570718.
  2. ^ ab Grishin EV (noviembre de 1998). "Toxinas de la araña viuda negra: el presente y el futuro". Toxico . 36 (11): 1693–701. doi :10.1016/S0041-0101(98)00162-7. PMID  9792186.
  3. ^ Südhof TC (2001). "alfa-latrotoxina y sus receptores: neurexinas y CIRL / latrofilinas". Año. Rev. Neurociencias . 24 : 933–62. doi :10.1146/annurev.neuro.24.1.933. PMID  11520923. S2CID  906456.
  4. ^ Südhof, TC (2001). "alfa-latrotoxina y sus receptores: neurexinas y CIRL / latrofilinas". Revista Anual de Neurociencia . 24 : 933–62. doi :10.1146/annurev.neuro.24.1.933. PMID  11520923. S2CID  906456.
  5. ^ Ushkaryov, YA; Volynski, KE; Ashton, AC (abril de 2004). "Las múltiples acciones de las toxinas de la araña viuda negra y su uso selectivo en estudios de neurosecreción". Toxico . 43 (5): 527–42. doi :10.1016/j.toxicon.2004.02.008. PMID  15066411.
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  7. ^ abcdefghijklmn Ushkaryov, YA; Rohou, A; Sugita, S (2008). Alfa-Latrotoxina y sus receptores . Manual de farmacología experimental. vol. 184, págs. 171-206. doi :10.1007/978-3-540-74805-2_7. ISBN 978-3-540-74804-5. PMC  2519134 . PMID  18064415.
  8. ^ abcdefghijk Ushkaryov, YA; Volynski, KE; Ashton, AC (abril de 2004). "Las múltiples acciones de las toxinas de la araña viuda negra y su uso selectivo en estudios de neurosecreción". Toxico . 43 (5): 527–42. doi :10.1016/j.toxicon.2004.02.008. PMID  15066411.
  9. ^ Henkel, AW; Sankaranarayanan, S (mayo de 1999). "Mecanismos de acción de la alfa-latrotoxina". Investigación de células y tejidos . 296 (2): 229–33. doi :10.1007/s004410051284. PMID  10382267. S2CID  9933831.
  10. ^ Peterson, ME (noviembre de 2006). "Envenenamiento por araña viuda negra". Técnicas Clínicas en la Práctica de Pequeños Animales . 21 (4): 187–90. doi :10.1053/j.ctsap.2006.10.003. PMID  17265903.
  11. ^ Hiramatsu, H; Tadokoro, S; Nakanishi, M; Hirashima, N (diciembre de 2010). "Exocitosis inducida por latrotoxina en mastocitos transfectados con latrofilina". Toxico . 56 (8): 1372–80. doi :10.1016/j.toxicon.2010.08.002. PMID  20708026.
  12. ^ Jelinek, GA (noviembre de 1997). "Envenenamiento por araña viuda (latrodectismo): un problema mundial". Medicina ambiental y silvestre . 8 (4): 226–31. doi : 10.1580/1080-6032(1997)008[0226:WSELAW]2.3.CO;2 . PMID  11990169.
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  14. ^ Gasparini S, Kiyatkin N, Drevet P y col. (Agosto de 1994). "La proteína de bajo peso molecular que copurifica con la alfa-latrotoxina está relacionada estructuralmente con las hormonas hiperglucémicas de los crustáceos". J. Biol. química . 269 ​​(31): 19803–9. doi : 10.1016/S0021-9258(17)32091-4 . PMID  8051061.
  15. ^ Graudins, Andis; Pequeño, Michelle J.; Pineda, Sandy S.; Hains, Peter G.; Rey, Glenn F.; Broady, Kevin W.; Nicholson, Graham M. (1 de enero de 2012). "Clonación y actividad de una nueva α-latrotoxina del veneno de araña de espalda roja". Farmacología Bioquímica . 83 (1): 170–183. doi :10.1016/j.bcp.2011.09.024. hdl : 10453/18571 . PMID  22001442.