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Colapso hidrofóbico

El colapso hidrofóbico es un proceso propuesto para la producción de la conformación tridimensional adoptada por polipéptidos y otras moléculas en disolventes polares. La teoría establece que el polipéptido naciente forma una estructura secundaria inicial ( hélices ɑ y cadenas β ) que crean regiones localizadas de residuos predominantemente hidrofóbicos . El polipéptido interactúa con el agua, ejerciendo así presiones termodinámicas sobre estas regiones que luego se agregan o "colapsan" en una conformación terciaria con un núcleo hidrófobo. Por cierto, los residuos polares interactúan favorablemente con el agua, por lo que la superficie del péptido orientada al disolvente suele estar compuesta de regiones predominantemente hidrófilas . [1]

Figura 7. Ilustración del colapso hidrofóbico durante el plegamiento de proteínas. En el pliegue compacto (a la derecha), los aminoácidos hidrofóbicos (que se muestran como esferas negras) están en general protegidos del disolvente.

El colapso hidrofóbico también puede reducir la afinidad de los fármacos conformacionalmente flexibles por sus dianas proteicas al reducir la contribución hidrofóbica neta a la unión por autoasociación de diferentes partes del fármaco mientras está en solución. Por el contrario, los andamios rígidos (también llamados estructuras privilegiadas) que resisten el colapso hidrofóbico pueden mejorar la afinidad de los fármacos. [2] [3] [4]

El colapso hidrofóbico parcial es un modelo aceptado experimentalmente para la cinética de plegamiento de muchas proteínas globulares, como la mioglobina , [5] alfa-lactoalbúmina , [6] barstar , [7] y la nucleasa estafilocócica . [8] Sin embargo, debido a que es difícil obtener evidencia experimental de eventos de plegamiento temprano, el colapso hidrofóbico a menudo se estudia in silico mediante dinámica molecular y simulaciones de Monte Carlo del proceso de plegamiento. [9] [10] Las proteínas globulares que se cree que se pliegan mediante colapso hidrofóbico son particularmente susceptibles de estudio computacional y experimental complementario utilizando análisis del valor phi . [11]

Importancia biológica

El plegamiento correcto de proteínas es fundamental para la funcionalidad adecuada dentro de los sistemas biológicos . El colapso hidrofóbico es uno de los principales eventos necesarios para alcanzar la conformación estable y funcional de una proteína . Las proteínas realizan funciones extremadamente específicas que dependen de su estructura. Las proteínas que no se pliegan correctamente no son funcionales y no aportan nada al sistema biológico.

La agregación hidrofóbica también puede ocurrir entre polipéptidos no relacionados. Si dos regiones localmente hidrófobas de dos estructuras no relacionadas se dejan cerca una de otra en una solución acuosa, se producirá agregación. En este caso, esto puede tener efectos drásticos en la salud del organismo . La formación de fibrillas de amiloide , agregados insolubles de proteína hidrófoba, puede provocar una gran variedad de enfermedades, entre ellas el Parkinson y el Alzheimer . [12]

La teoría del embudo de plegamiento del plegamiento de proteínas.

Energéticos

La fuerza impulsora detrás del plegamiento de proteínas no se comprende bien; el colapso hidrofóbico es una teoría , una de muchas, que se cree que influye en cómo un polipéptido naciente se plegará a su estado nativo. El colapso hidrofóbico se puede visualizar como parte del modelo de embudo plegable que lleva una proteína a su estado de energía cinéticamente más bajo accesible. En este modelo, no consideramos las interacciones de la cadena principal del péptido, ya que mantiene su estabilidad en ambientes polares y no polares siempre que haya suficientes enlaces de hidrógeno dentro de la cadena principal, por lo que solo consideraremos las contribuciones termodinámicas de las cadenas laterales. a la estabilidad de las proteínas. [13]

Cuando se colocan en un disolvente polar , las cadenas laterales polares pueden formar interacciones intermoleculares débiles con el disolvente, específicamente enlaces de hidrógeno. El disolvente es capaz de mantener enlaces de hidrógeno consigo mismo y con el polipéptido . Esto mantiene la estabilidad de la estructura dentro de segmentos localizados de la proteína. Sin embargo, las cadenas laterales no polares no pueden participar en interacciones de enlaces de hidrógeno. La incapacidad del disolvente para interactuar con estas cadenas laterales conduce a una disminución de la entropía del sistema. El disolvente puede interactuar consigo mismo, sin embargo, la porción de la molécula próxima a la cadena lateral no polar no puede formar interacciones significativas, por lo que los grados de libertad disociativos disponibles para la molécula disminuyen y la entropía disminuye. Al agregar las regiones hidrofóbicas, el solvente puede reducir el área de superficie expuesta a cadenas laterales no polares, reduciendo así áreas localizadas de entropía disminuida. Si bien la entropía del polipéptido ha disminuido a medida que entra en un estado más ordenado, la entropía general del sistema aumenta, lo que contribuye a la favorabilidad termodinámica de un polipéptido plegado. [14]

Como se puede observar en el diagrama del embudo de plegado , el polipéptido se encuentra en su estado energético más alto cuando se despliega en solución acuosa . A medida que forma intermediarios de plegamiento localizados, o glóbulos fundidos, la energía del sistema disminuye. El polipéptido continuará plegándose a estados de menor energía mientras estas conformaciones sean cinéticamente accesibles. En este caso, una conformación nativa no tiene que estar en el mínimo de energía más bajo del diagrama como se muestra, simplemente debe existir en su conformación natural y cinéticamente accesible en los sistemas biológicos. [13]

Vista de arriba hacia abajo de una hélice alfa que muestra la precedencia de residuos polares similares en la misma "cara" de la hélice que se extiende longitudinalmente.

Estructuras superficiales

Caricatura estilizada que muestra la polaridad general de cada lado de una hélice alfa anfipática. Un lado longitudinal es no polar e interactúa con el núcleo hidrófobo del péptido, mientras que el lado polar interactúa con el disolvente polar.

La formación de un núcleo hidrofóbico requiere que las estructuras superficiales de este agregado mantengan contacto tanto con el disolvente polar como con las estructuras internas. Para ello, estas estructuras superficiales suelen contener propiedades anfipáticas . Una hélice alfa expuesta en la superficie puede tener residuos no polares en una posición N+3, N+4, lo que permite que la hélice alfa exprese propiedades no polares en un lado cuando se divide longitudinalmente a lo largo del eje. Observe, en el diagrama, la presencia de aminoácidos no polares (oro) a lo largo de un lado de la hélice cuando se ve a través del eje longitudinal, así como aminoácidos cargados/polares a lo largo de la otra cara. Esto proporciona a esta estructura las propiedades anfipáticas longitudinales necesarias para la agregación hidrofóbica a lo largo del lado no polar. De manera similar, las cadenas beta también pueden adoptar esta propiedad con una simple alternancia de residuos polares y no polares. Cada cadena lateral N+1 ocupará espacio en el lado opuesto de la cadena beta. [15]

Referencias

  1. ^ Voet D, Voet JG, Pratt CW (1999). Fundamentos de Bioquímica: La vida a nivel molecular (4ª ed.). Nueva York: Wiley & Sons, Inc. pág. 163.ISBN​ 978-0470-54784-7.
  2. ^ Wiley RA, Rich DH (mayo de 1993). "Peptidomiméticos derivados de productos naturales". Reseñas de investigaciones medicinales . 13 (3): 327–84. doi :10.1002/med.2610130305. PMID  8483337. S2CID  32014299.
  3. ^ Rico D (1993). "Efecto del colapso hidrofóbico sobre las interacciones de inhibidores enzimáticos. Implicaciones para el diseño de peptidomiméticos". En Testa B, Kyburz E, Fuhrer W, Giger R (eds.). Perspectivas en Química Medicinal: XII Simposio Internacional de Química Medicinal . Weinheim: VCH. págs. 15-25. ISBN 978-3-527-28486-3.
  4. ^ Rich D, Estiarte M, Hart P (2003). "Aspectos estereoquímicos de la acción del fármaco I: restricción conformacional, impedimento estérico y colapso hidrofóbico". En Wermuth C (ed.). Práctica de la Química Medicinal (Segunda ed.). Prensa académica. págs. 373–386. doi :10.1016/B978-012744481-9/50027-1. ISBN 978-0-08-049777-8.
  5. ^ Gilmanshin R, Dyer RB, Callender RH (octubre de 1997). "Heterogeneidad estructural de las diversas formas de apomioglobina: implicaciones para el plegamiento de proteínas". Ciencia de las proteínas . 6 (10): 2134–42. doi :10.1002/pro.5560061008. PMC 2143565 . PMID  9336836. 
  6. ^ Arai M, Kuwajima K (1996). "Rápida formación de un glóbulo fundido intermedio en el replegamiento de alfa-lactoalbúmina". Plegado y Diseño . 1 (4): 275–87. doi : 10.1016/S1359-0278(96)00041-7 . PMID  9079390.
  7. ^ Agashe VR, Shastry MC, Udgaonkar JB (octubre de 1995). "Colapso hidrofóbico inicial en el plegamiento de barstar". Naturaleza . 377 (6551): 754–7. Código Bib :1995Natur.377..754A. doi :10.1038/377754a0. PMID  7477269. S2CID  4343528.
  8. ^ Vidugiris GJ, Markley JL, Royer CA (abril de 1995). "Evidencia de un estado de transición similar a un glóbulo fundido en el plegamiento de proteínas a partir de la determinación de los volúmenes de activación". Bioquímica . 34 (15): 4909–12. doi :10.1021/bi00015a001. PMID  7711012.
  9. ^ Marianayagam Nueva Jersey, Jackson SE (octubre de 2004). "La vía de plegamiento de la ubiquitina a partir de simulaciones de dinámica molecular de todos los átomos". Química Biofísica . 111 (2): 159–71. doi :10.1016/j.bpc.2004.05.009. PMID  15381313.
  10. ^ Brylinski M, Konieczny L, Roterman I (agosto de 2006). "Colapso hidrofóbico en el plegamiento de proteínas (in silico)". Biología y Química Computacional . 30 (4): 255–67. doi :10.1016/j.compbiolchem.2006.04.007. PMID  16798094.
  11. ^ Paci E, Friel CT, Lindorff-Larsen K, Radford SE, Karplus M, Vendruscolo M (febrero de 2004). "Comparación de los conjuntos de estados de transición para el plegamiento de Im7 e Im9 determinados mediante simulaciones de dinámica molecular de todos los átomos con restricciones de valor phi". Proteínas . 54 (3): 513–25. doi :10.1002/prot.10595. PMID  14747999. S2CID  490838.
  12. ^ Stefani M (diciembre de 2004). "Mal plegamiento y agregación de proteínas: nuevos ejemplos en medicina y biología del lado oscuro del mundo de las proteínas". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Base molecular de la enfermedad . 1739 (1): 5–25. doi : 10.1016/j.bbadis.2004.08.004 . PMID  15607113.
  13. ^ ab Govindarajan S, Goldstein RA (mayo de 1998). "Sobre la hipótesis termodinámica del plegamiento de proteínas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 95 (10): 5545–9. Código bibliográfico : 1998PNAS...95.5545G. doi : 10.1073/pnas.95.10.5545 . PMC 20414 . PMID  9576919. 
  14. ^ Tanford C (junio de 1978). "El efecto hidrofóbico y la organización de la materia viva". Ciencia . 200 (4345): 1012–8. Código Bib : 1978 Ciencia... 200.1012T. doi : 10.1126/ciencia.653353. JSTOR  1746161. PMID  653353.
  15. ^ Sharadadevi A, Sivakamasundari C, Nagaraj R (junio de 2005). "Alfa-hélices anfipáticas en proteínas: resultados del análisis de estructuras de proteínas". Proteínas . 59 (4): 791–801. doi :10.1002/prot.20459. PMID  15822124. S2CID  85174573.