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Vivero de plantas

Plantas en un vivero

Un vivero es un lugar donde las plantas se propagan y crecen hasta alcanzar el tamaño deseado. La mayoría de las plantas en cuestión se destinan a la jardinería, la silvicultura o la biología de la conservación , más que a la agricultura . Incluyen viveros minoristas , que venden al público en general; viveros mayoristas , que venden únicamente a empresas como otros viveros y jardineros comerciales ; y guarderías privadas, que abastecen las necesidades de instituciones o fincas privadas. Algunos también trabajarán en el fitomejoramiento .

Un " vivero " es una persona que posee o trabaja en un vivero. [1]

Algunos viveros se especializan en determinadas áreas, que pueden incluir: propagación y venta de plantas pequeñas o de raíz desnuda a otros viveros; cultivar materiales vegetales hasta un tamaño vendible o ventas al por menor. [2] Los viveros también pueden especializarse en un tipo de planta, por ejemplo, plantas que cubren el suelo , plantas de sombra o plantas de jardín de rocas . Algunos producen a granel, ya sean plántulas o árboles injertados, de variedades particulares para fines tales como árboles frutales para huertos o árboles maderables para silvicultura. Algunos productores producen existencias estacionalmente, listas en la primavera para exportar a regiones más frías donde la propagación no podría haberse iniciado tan temprano o a regiones donde las plagas estacionales impiden un crecimiento rentable a principios de la temporada.

Viveros

Hay varios tipos diferentes de viveros, agrupados en términos generales como viveros mayoristas o minoristas, con cierta superposición según la operación específica. Los viveros mayoristas producen plantas en grandes cantidades que se venden a viveros minoristas [3] enciclopedia [4]

Los viveros mayoristas pueden ser operaciones pequeñas que producen un tipo específico de planta utilizando una pequeña superficie de tierra, o operaciones muy grandes que cubren muchos acres. Propagan material vegetal o compran plantas de otros viveros, que pueden incluir esquejes con o sin raíces, o pequeñas plantas con raíces llamadas plugs, o plantas de raíz desnuda cultivadas en el campo, que se plantan y cultivan hasta alcanzar el tamaño deseado. Algunos viveros mayoristas producen plantas por contrato para otros que realizan un pedido de un número y tamaño de planta específicos, mientras que otros producen una amplia gama de plantas que se ofrecen a la venta a otros viveros y paisajistas y se venden por orden de llegada. Los viveros minoristas venden plantas listas para colocar en el paisaje o usar en hogares y negocios.

Métodos

Un pequeño vivero lleno de orquídeas en flor.
Un vivero de árboles que utiliza canalones para reducir los costos de cultivo

Los viveros de propagación producen nuevas plantas a partir de semillas, esquejes, cultivo de tejidos, injertos o divisiones. Luego, las plantas se cultivan hasta un tamaño vendible y se venden a otros viveros que pueden continuar cultivando las plantas en contenedores más grandes o cultivarlas en el campo hasta alcanzar el tamaño deseado. Los viveros de propagación también pueden vender material vegetal lo suficientemente grande como para venderlo al por menor y, por lo tanto, venderlo directamente a viveros minoristas o centros de jardinería (que rara vez propagan sus propias plantas). [5]

Los viveros pueden producir plantas para reforestación , zoológicos, parques y ciudades. Los viveros de árboles en Estados Unidos producen alrededor de 1.300 millones de plántulas por año para proyectos de reforestación. [6]

Los viveros cultivan plantas en campos abiertos, en contenedores, en túneles o en invernaderos. En campos abiertos, los viveros cultivan árboles decorativos, arbustos y plantas herbáceas perennes. En un vivero de contenedores se cultivan pequeños árboles, arbustos y plantas herbáceas, normalmente destinados a la venta en centros de jardinería. Tienen ventilación adecuada, luz solar, etc. Las plantas se pueden cultivar a partir de semillas, pero el método más común es plantar esquejes, que se pueden tomar de las puntas de los brotes o de las raíces.

Acondicionamiento

Con el objetivo de conseguir un material de plantación más capaz de resistir las tensiones después del trasplante, se han intentado o desarrollado y aplicado varios tratamientos de vivero al material de vivero. Buse y Day (1989), [7] por ejemplo, estudiaron el efecto del acondicionamiento de trasplantes de abeto blanco y abeto negro sobre su morfología, fisiología y rendimiento posterior después del trasplante. Los tratamientos aplicados fueron poda de raíces, arrancado y fertilización con potasio a 375 kg/ha. La poda y el arranque de raíces modificaron el material en el vivero al disminuir la altura, el diámetro del cuello de la raíz, la proporción brote:raíz y el tamaño de las yemas, pero no mejoraron la supervivencia ni el crecimiento después de la siembra. La fertilización redujo el crecimiento de las raíces en la picea negra, pero no en la picea blanca.

Endurecimiento, resistencia a las heladas

Las plántulas varían en su susceptibilidad a sufrir daños por heladas. Los daños pueden ser catastróficos si las plántulas "no endurecidas" se exponen a las heladas. La resistencia a las heladas puede definirse como la temperatura mínima a la que un cierto porcentaje de una población aleatoria de plántulas sobrevivirá o soportará un nivel determinado de daño (Siminovitch 1963, Timmis y Worrall 1975). [8] [9] El término LT 50 (temperatura letal para el 50% de una población) se utiliza comúnmente. La determinación de la resistencia a las heladas en Ontario se basa en la fuga de electrolitos desde las puntas terminales del vástago principal, de 2 cm a 3 cm de largo, en muestreos semanales (Colombo y Hickie 1987). [10] Las puntas se congelan y luego se descongelan y se sumergen en agua destilada, cuya conductividad eléctrica depende del grado en que las membranas celulares se han roto por la congelación y liberación del electrolito. Se ha utilizado un nivel de resistencia a las heladas de -15 °C para determinar la preparación del material en contenedores para ser trasladado fuera del invernadero, y -40 °C ha sido el nivel que determina la preparación para el almacenamiento congelado (Colombo 1997). [11]

En una técnica anterior, las plántulas en macetas se colocaban en un congelador y se enfriaban hasta cierto nivel durante un período específico; Unos pocos días después de la extracción, se evaluaron los daños en las plántulas utilizando varios criterios, incluido el olor, la apariencia visual general y el examen del tejido cambial (Ritchie 1982). [12]

El material para la siembra de otoño debe estar debidamente endurecido. Se considera que las plántulas de coníferas se han endurecido cuando se han formado las yemas terminales y los tejidos del tallo y la raíz han dejado de crecer. Otras características que en algunas especies indican latencia son el color y la rigidez de las agujas, pero no son evidentes en el abeto blanco.

Viveros de árboles forestales

Ya sea en el bosque o en el vivero, el crecimiento de las plántulas está fundamentalmente influenciado por la fertilidad del suelo , pero la fertilidad del suelo del vivero se puede mejorar fácilmente, mucho más que el suelo del bosque.

Regularmente se suministran nitrógeno , fósforo y potasio como fertilizantes, y ocasionalmente calcio y magnesio . Las aplicaciones de nitrógeno fertilizante no se acumulan en el suelo para desarrollar un depósito apreciable de nitrógeno disponible para futuros cultivos. [13] El fósforo y el potasio, sin embargo, se pueden acumular como depósito disponible durante períodos prolongados.

La fertilización permite que el crecimiento de las plántulas continúe durante más tiempo durante la temporada de crecimiento que las plantas no fertilizadas; El abeto blanco fertilizado alcanzó el doble de altura que el no fertilizado. [14] La alta fertilidad en el medio de enraizamiento favorece el crecimiento de los brotes sobre el crecimiento de las raíces y puede producir plántulas muy pesadas en la parte superior que no se adaptan a los rigores del sitio de trasplante. Los nutrientes en exceso pueden reducir el crecimiento [15] [16] o la absorción de otros nutrientes. [17] Además, un exceso de iones nutrientes puede prolongar o debilitar el crecimiento e interferir con el necesario desarrollo de la latencia y el endurecimiento de los tejidos a tiempo para resistir el clima invernal. [18]

Tipos, tamaños y lotes de existencias

El tamaño del material de vivero generalmente sigue la curva normal cuando se levanta para material de plantación. Los enanos en el extremo inferior de la escala generalmente se seleccionan hasta un límite arbitrario, pero, especialmente entre los ejemplares a raíz desnuda, el rango de tamaño suele ser considerable. Dobbs (1976) [19] y McMinn (1985a) [20] examinaron cómo el rendimiento de la picea blanca a raíz desnuda 2+0 se relacionaba con las diferencias en el tamaño inicial del material de plantación. El caldo se volvió a clasificar en fracciones grandes, medianas y pequeñas según el peso fresco. La fracción pequeña (20% del stock original) tenía apenas una cuarta parte de la masa de materia seca de la fracción grande en el momento del trasplante. Diez años más tarde, en el sitio escarificado por las cuchillas, las plántulas de la fracción grande tenían casi un 50% más de volumen de tallo que las plántulas de la fracción pequeña. Sin la preparación del sitio, las poblaciones grandes eran más del doble del tamaño de las pequeñas después de 10 años.

Vivero de plántulas de albaricoque

Se obtuvieron resultados similares con trasplantes reclasificados 2+1 muestreados para determinar la capacidad de crecimiento de las raíces. [21] [22] La población grande tenía un CGR más alto y una masa mayor que la fracción de población pequeña.

El valor del gran tamaño al momento de la siembra es especialmente evidente cuando las plantas exteriores enfrentan una fuerte competencia de otra vegetación, aunque una masa inicial alta no garantiza el éxito. Que el potencial de crecimiento del material de plantación depende de mucho más que el tamaño parece claro a partir del indiferente éxito del trasplante de pequeñas plántulas 2+0 para su uso como trasplantes 2+1 de "recuperación". [20] El tamaño de las plántulas y los trasplantes de abeto blanco a raíz desnuda también tuvo una influencia importante en el rendimiento en el campo.

Paterson y Hutchison (1989) examinaron el rendimiento en el campo entre varios tipos de cepas en plantaciones de Ontario: [23] los tipos de cepas de abeto blanco fueron 2+0, 1,5+0,5, 1,5+1,5 y 3+0. El material del vivero se cultivó en Midhurst Forest Tree Nursery y se manipuló cuidadosamente mediante el levantamiento en 3 fechas de levantamiento, el empaque y la plantación en caliente en una marga cultivada libre de malezas. Después de 7 años, la supervivencia general fue del 97%, sin diferencias significativas en la supervivencia entre los tipos de población. La cepa 1,5+1,5 con una altura media de 234 cm era significativamente más alta entre un 18% y un 25% que los otros tipos de cepas. La población 1,5+1,5 también tenía un dap significativamente mayor que los otros tipos de población, entre un 30 y un 43%. El mejor tipo de stock era 57 cm más alto y 1 cm mayor en dap que el más pobre. La fecha de levantamiento no tuvo ningún efecto significativo sobre el crecimiento o la supervivencia.

Los sitios de gran elevación en las montañas del sur de la Columbia Británica se caracterizan por una temporada de crecimiento corta, bajas temperaturas del aire y del suelo, inviernos severos y nieve profunda. Lajzerowicz et al. compararon la supervivencia y el crecimiento de la picea de Engelmann y del abeto subalpino plantados en tres ensayos silvícolas en dichos sitios en claros de varios tamaños. (2006). [24] La supervivencia después de 5 o 6 años disminuyó con brechas más pequeñas. La altura y el diámetro también disminuyeron al disminuir el tamaño del espacio; las alturas medias fueron de 50 cm a 78 cm después de 6 años, en línea con las expectativas de altura para la picea de Engelmann en un estudio de plantación a gran altura en el sureste de Columbia Británica. [25] En los claros más grandes (≥1,0 ha), el incremento de altura para el año 6 osciló entre 10 cm y 20 cm. Lajzerrowicz et al. Concluyó que es probable que las plantaciones de coníferas en talas rasas a gran altura en las montañas del sur de Columbia Británica tengan éxito, incluso cerca del límite forestal; y también es probable que tengan éxito los sistemas silvícolas de selección de grupos basados ​​en espacios de 0,1 ha o más. Los claros menores de 0,1 ha no proporcionan condiciones adecuadas para obtener una supervivencia adecuada o para el crecimiento de las coníferas trasplantadas.

Material de plantación

El material de plantación, "plántulas, trasplantes, esquejes y, ocasionalmente, plantas silvestres para su uso en la plantación exterior" [26] es material de vivero que se ha preparado para su plantación en exterior. La cantidad de semillas utilizadas en la producción de plántulas de abeto blanco y en la siembra directa varía según el método.

En el Taller IUFRO de 1979 sobre técnicas para evaluar la calidad del material de plantación en Nueva Zelanda se aceptó una definición práctica de calidad del material de plantación : "La calidad del material de plantación es el grado en que ese material logra los objetivos de manejo (hasta el final de la rotación). o logro de beneficios específicos buscados) a un costo mínimo. La calidad es idoneidad para el propósito." [27] Por lo tanto, una expresión clara de los objetivos es un requisito previo para cualquier determinación de la calidad del material de plantación. [28] No sólo es necesario determinar el desempeño, sino que también es necesario evaluarlo en función de los objetivos de gestión. [29] El material de plantación se produce para dar efecto a la política forestal de la organización.

Es necesario hacer una distinción entre "calidad del material de plantación" y "potencial de rendimiento del material de plantación" (PSPP). El rendimiento real de cualquier lote determinado de material de plantación trasplantado está determinado sólo en parte por el tipo y la condición, es decir, el PSPP intrínseco, del material de plantación.

Es imposible estimar a simple vista el PSPP de forma fiable porque la apariencia exterior, especialmente de las existencias retiradas del almacenamiento refrigerado, puede engañar incluso a los silvicultores experimentados, quienes se sentirían ofendidos si se cuestionara su capacidad para reconocer buenas existencias de plantación cuando las ven. Antes de que Wakeley (1954) [30] demostrara la importancia del estado fisiológico del material de plantación para determinar su capacidad de rendimiento después de la plantación, y en gran medida incluso después, la apariencia morfológica generalmente había servido como base para estimar la calidad del material de plantación. Sin embargo, poco a poco se fue comprendiendo que había más cosas involucradas. Tucker et al. (1968), [31] por ejemplo, después de evaluar los datos de supervivencia de 10 años de varias plantaciones experimentales de abeto blanco en Manitoba observaron que "Quizás el punto más importante revelado aquí es que ciertos lotes de trasplantes funcionaron mejor que otros", a pesar de que todos Los trasplantes fueron manipulados y plantados con cuidado. La intuitiva "las acciones que lucen bien deben ser buenas" es una máxima persuasiva, pero potencialmente peligrosa. El más grande de los maestros, Bitter Experience, ha demostrado con bastante frecuencia la falibilidad de tal evaluación, aunque el corolario "las acciones que parecen malas deben ser malas" probablemente esté bien fundamentada. Las cualidades fisiológicas del material de plantación están ocultas a la vista y deben revelarse mediante pruebas. El potencial de supervivencia y crecimiento de un lote de material de plantación puede estimarse a partir de diversas características, morfológicas y fisiológicas, del material de plantación o de una muestra del mismo.

No obstante, el tamaño, la forma y el aspecto general de una plántula pueden dar indicaciones útiles de PSPP. En situaciones de trasplante de bajo estrés, y con un ciclo de manipulación y levantamiento-plantación minimizado, un sistema basado en especificaciones para el material de vivero y estándares morfológicos mínimos para plántulas aceptables funciona tolerablemente bien. [32] En determinadas circunstancias, a menudo se obtienen beneficios del uso de grandes cantidades de material de plantación de grados morfológicos elevados. La longitud del brote principal, el diámetro del tallo, el volumen del sistema radicular, las proporciones brote:raíz y las proporciones altura:diámetro se han correlacionado con el rendimiento en condiciones específicas de sitio y plantación. [33] Sin embargo, el concepto de que cuanto más grande, mejor niega las complejidades subyacentes. Schmidt-Vogt (1980) [34] , por ejemplo, encontró que mientras que la mortalidad entre los plantones grandes es mayor que entre los pequeños en el año de la plantación, la mortalidad en las estaciones de crecimiento posteriores es mayor entre los plantones pequeños que entre los grandes. Gran parte de la literatura sobre el desempeño comparativo de las plántulas está empañada por la incertidumbre sobre si las poblaciones que se comparan comparten la misma condición fisiológica; las diferencias invalidan tales comparaciones. [35]

La altura y el diámetro del cuello de la raíz se aceptan generalmente como los criterios morfológicos más útiles [36] y, a menudo, son los únicos utilizados para especificar las normas. La cuantificación de la morfología del sistema radicular es difícil, pero se puede realizar, por ejemplo, utilizando el rizometro fotométrico para determinar el área de intercepción [37] o el volumen mediante métodos de desplazamiento o gravimétricos. [38]

El material de plantación siempre está sujeto a una variedad de condiciones que nunca son óptimas en su totalidad . El efecto de condiciones subóptimas es inducir estrés en las plantas. El director del vivero intenta, y normalmente es capaz, evitar tensiones mayores que moderadas, es decir, restringiendo las tensiones a niveles que puedan ser tolerados por las plantas sin incurrir en daños graves. Se ha generalizado la adopción de regímenes de vivero para dotar al material de plantación de características que confieren una mayor capacidad para resistir las tensiones de la plantación, mediante la gestión de los niveles de estrés en el vivero para "acondicionar" el material de plantación para aumentar la tolerancia a diversas tensiones ambientales posteriores a la plantación, se ha generalizado, en particular en el caso de los cultivos en contenedores. existencias.

Las poblaciones trasplantadas que no pueden tolerar las altas temperaturas que ocurren en la superficie del suelo no lograrán establecerse en muchos sitios forestales, incluso en el extremo norte. [39] Colombo et al. investigaron los factores que afectan la tolerancia al calor. (1995); [40] la producción y las funciones de las proteínas de choque térmico (HSP) son importantes a este respecto. Las HSP, presentes constitutivamente en el abeto negro y en muchas otras plantas superiores, quizás en la mayoría de ellas [40] [41] [42] [43], son importantes tanto para el funcionamiento normal de las células como en un mecanismo de respuesta al estrés después de la exposición a temperaturas altas y no letales. . Al menos en el abeto negro, existe una asociación entre las HSP y mayores niveles de tolerancia al calor. [44] [45] La investigación de la variabilidad diurna en la tolerancia al calor de raíces y brotes en plántulas de abeto negro de 14 a 16 semanas de edad encontró en los 4 ensayos que la tolerancia al calor de los brotes fue significativamente mayor en la tarde que en la mañana. [40] La tendencia en la tolerancia al calor de las raíces fue similar a la encontrada en los brotes; Los sistemas de raíces expuestos a 47 °C durante 15 minutos por la tarde promediaron 75 raíces nuevas después de un período de crecimiento de 2 semanas, mientras que solo se desarrollaron 28 raíces nuevas en sistemas de raíces expuestos de manera similar por la mañana. La HSP 73 se detectó en fracciones de proteínas nucleares, mitocondriales, microsomales y solubles de abeto negro, mientras que la HSP 72 se observó solo en la fracción de proteínas solubles. Las plántulas exhibieron síntesis constitutiva de HSP 73 a 26 °C en todas las fracciones, excepto en la membrana nuclear, por la mañana; Los niveles de HSP a 26 °C por la tarde fueron más altos que por la mañana en las facciones de proteínas mitocondriales y microsomales. El choque térmico afectó la abundancia de HSP dependiendo de la fracción proteica y la hora del día. Sin choque térmico, el HSP 73 unido a la membrana nuclear estuvo ausente en las plantas por la mañana y solo estuvo débilmente presente por la tarde, y el choque térmico aumentó la abundancia de membrana nuclear. El choque térmico también afectó la abundancia de HSP 73 en la tarde y provocó que apareciera HSP 73 en la mañana. En las fracciones de proteínas mitocondriales y microsomales, un choque de calor por la tarde redujo la HSP 73 , mientras que un choque de calor por la mañana aumentó la HSP 73 en la fracción mitocondrial pero la disminuyó en la fracción microsomal. El choque térmico aumentó los niveles solubles de HSP 72/73 tanto en la mañana como en la tarde. En todos los casos, la tolerancia al calor de los brotes y las raíces fue significativamente mayor en la tarde que en la mañana.

El material de plantación continúa respirando durante el almacenamiento incluso si está congelado. [46] La temperatura es el factor principal que controla la tasa y se debe tener cuidado para evitar el sobrecalentamiento. Navratil (1982) [46] encontró que los contenedores cerrados almacenados en frío tenían temperaturas internas promedio de 1,5 °C a 2,0 °C por encima de la temperatura nominal de almacenamiento. El agotamiento de las reservas se puede estimar a partir de la disminución del peso seco. El material de vivero de abeto blanco 3+0 almacenado en frío en el norte de Ontario había perdido entre el 9 % y el 16 % de su peso seco después de 40 días de almacenamiento. [46] Los carbohidratos también se pueden determinar directamente.

La propensión de un sistema radicular a desarrollar nuevas raíces o extender las existentes no se puede determinar a simple vista, sin embargo, es el factor que hace o deshace el resultado de una operación de trasplante. El desarrollo posterior a la plantación de las raíces o de los sistemas radiculares de las plantas de coníferas está determinado por muchos factores, algunos fisiológicos y otros ambientales. [47] Las tasas insatisfactorias de supervivencia post-siembra no relacionadas con la morfología del material de plantación llevaron a intentos de probar la condición fisiológica del material de plantación, particularmente para cuantificar la propensión a producir un nuevo crecimiento de raíces. Se puede suponer que el crecimiento de nuevas raíces es necesario para el establecimiento exitoso del stock después de la siembra, pero aunque la tesis de que el RGC está relacionado positivamente con el rendimiento en el campo parecería razonable, la evidencia que lo respalda ha sido escasa.

La condición fisiológica de las plántulas se refleja en cambios en la actividad de las raíces. Esto es útil para determinar si el material está listo para levantarlo y almacenarlo, y también para trasplantarlo después del almacenamiento. Navratil (1982) [46] informó una relación lineal prácticamente perfecta (R² = 0,99) en la frecuencia de 3+0 puntas de raíces blancas de abeto blanco de más de 10 mm con el tiempo en el otoño en Pine Ridge Forest Nursery, Alberta, disminuyendo durante un período de 3 semanas hasta cero el 13 de octubre de 1982. La investigación sobre regeneración de raíces con abeto blanco en Canadá (Hambly 1973, Day y MacGillivray 1975, Day y Breunig 1997) [48] [49] [50] siguió líneas similares a las de Stone. (1955) [51] trabajo pionero en California.

Simpson y Ritchie (1997) [52] debatieron la proposición de que el potencial de crecimiento de las raíces del material de plantación predice el rendimiento en el campo; su conclusión fue que el potencial de crecimiento de las raíces, como sustituto del vigor de las plántulas, puede predecir el rendimiento en el campo, pero sólo en situaciones en las que las condiciones del lugar lo permitan. La supervivencia después de la siembra es sólo en parte una función de la capacidad de un trasplante para iniciar raíces en condiciones de prueba; La capacidad de crecimiento de las raíces no es el único predictor del rendimiento de la plantación. [53]

Algunos problemas importantes impiden un mayor uso de RGC en el sector forestal, entre ellos: técnicas no estandarizadas; cuantificación no estandarizada; correlación incierta entre el RGC cuantificado y el desempeño de campo; variabilidad dentro de tipos dados, nominalmente idénticos, de material de plantación; y la irrelevancia de los valores de prueba de RGC determinados en una submuestra de una población parental que posteriormente, antes de ser plantada, sufre cualquier cambio fisiológico o físico sustancial. En su forma actual, las pruebas RGC son útiles desde el punto de vista silvícola principalmente como medio para detectar material de plantación que, aunque visualmente intacto, está moribundo. [54]

El contenido de humedad de las plántulas puede aumentar o disminuir durante el almacenamiento, dependiendo de varios factores, incluido especialmente el tipo de recipiente y el tipo y cantidad de material presente que retiene la humedad. Cuando las plántulas exceden los 20 bares PMS en almacenamiento, la supervivencia después del trasplante se vuelve problemática. El contenido de humedad relativa del material levantado durante condiciones secas se puede aumentar gradualmente cuando se almacena en condiciones apropiadas. La picea blanca (3+0) envasada en bolsas Kraft en el norte de Ontario aumentó el RMC entre un 20% y un 36% en 40 días. [46]

Se tomaron abetos blancos de raíz desnuda 1,5+1,5 del almacenamiento en frío y se plantaron a principios de mayo en un sitio de bosque boreal talado en el noreste de Ontario. [55] Se plantaron plantas similares en macetas y se mantuvieron en un invernadero. En árboles plantados, las conductancias estomáticas máximas (g) fueron inicialmente bajas (<0,01 cm/s) y los potenciales de presión base del xilema (PSIb) iniciales fueron -2,0 MPa. Durante la temporada de crecimiento, g aumentó a aproximadamente 0,20 cm/s y PSIb a -1,0 MPa. El potencial de presión mínima del xilema (PSIm) fue inicialmente de -2,5 MPa, aumentando a -2,0 MPa el día 40 y aproximadamente -1,6 MPa el día 110. Durante la primera mitad de la temporada de crecimiento, PSIm estuvo por debajo del punto de pérdida de turgencia. El potencial osmótico en el punto de pérdida de turgencia disminuyó después de la siembra a -2,3 MPa 28 días después. En el invernadero, los valores mínimos de PSIT fueron -2,5 MPa (en el primer día después de la plantación. El módulo de elasticidad volumétrico máximo fue mayor en el abeto blanco que en el pino jack tratado de manera similar y mostró mayores cambios estacionales. Contenido relativo de agua (RWC) en La pérdida de turgencia fue del 80-87%. La turgencia disponible (TA), definida como la integral de la turgencia en el rango de RWC entre PSIb y el potencial de presión del xilema en el punto de pérdida de turgencia) fue del 4,0% para la picea blanca al comienzo de la temporada en comparación. con un 7,9% para el pino jack, pero durante el resto de la temporada la TA para el pino jack fue sólo del 2%, frente al 3% de la del abeto blanco. La turgencia diurna (Td), la integral de la turgencia en el rango de RWC entre PSIb y PSIm, como porcentaje de TA, fue mayor en el abeto blanco plantado en el campo que en el pino jack hasta el final de la temporada.

Los estomas de la picea blanca y negra fueron más sensibles a las demandas de evaporación atmosférica y al estrés por humedad de las plantas durante la primera temporada de crecimiento después de su trasplante en 2 sitios boreales en el norte de Ontario que los estomas del pino jack , [56] se observaron diferencias fisiológicas que favorecieron el crecimiento y el establecimiento. más en pino que en abetos.

Con el abeto negro y el pino jack, pero no con el abeto blanco, los hallazgos de Grossnickle y Blake (1987) [57] merecen ser mencionados en relación con el debate sobre el uso de contenedores de raíz desnuda. Durante la primera temporada de crecimiento después de la plantación, las plántulas en contenedores de ambas especies tuvieron una mayor conductancia de las agujas que las plántulas a raíz desnuda en un rango de déficits de humedad absoluta. La conductancia de las agujas de las plántulas en contenedores de ambas especies se mantuvo alta durante los períodos de altos déficits de humedad absoluta y aumento del estrés hídrico de las plantas. Las plantas exteriores a raíz desnuda de ambas especies tuvieron una mayor resistencia temprana al flujo de agua a través del continuo suelo-planta-atmósfera (SPAC) que las plantas exteriores en contenedores. La resistencia al flujo de agua a través del SPAC disminuyó en las plantas a raíz desnuda de ambas especies a medida que avanzaba la temporada, y fue comparable a la de las plántulas en contenedores de 9 a 14 semanas después de la siembra. El abeto negro a raíz desnuda tuvo un mayor desarrollo de raíces nuevas que el stock en contenedores durante la temporada de crecimiento.

La mayor eficiencia del uso del agua en plántulas de abeto blanco de 3 años recién trasplantadas bajo niveles bajos de diferencia de humedad absoluta en plantas con estrés hídrico inmediatamente después de la siembra [58] ayuda a explicar la respuesta favorable comúnmente observada de las plantas jóvenes al efecto de enfermería de un dosel parcial. Los tratamientos silvícolas que promueven niveles más altos de humedad en el micrositio de plantación deberían mejorar la fotosíntesis de las plántulas de abeto blanco inmediatamente después de la plantación. [58]

Tipos de stock (nomenclatura de plántulas)

El material de plantación se cultiva bajo muchos regímenes de cultivo de vivero diversos, en instalaciones que van desde sofisticados invernaderos computarizados hasta recintos abiertos. Los tipos de existencias incluyen plántulas y trasplantes a raíz desnuda, y varios tipos de existencias en contenedores. Para simplificar, tanto las plantas cultivadas en contenedores como las de raíces desnudas generalmente se denominan plántulas, y los trasplantes son plantas de vivero que se han levantado y trasplantado a otro vivero, generalmente con un espaciamiento más amplio. El tamaño y el carácter fisiológico del stock varían con la duración del período de crecimiento y con las condiciones de crecimiento. Hasta que floreció la tecnología de cultivo de material de vivero en contenedores en la segunda mitad del siglo XX, la norma era clasificar el material de plantación a raíz desnuda por su edad en años.

Clasificación por edad

El número de años que un lote particular de material de plantación pasa en el semillero del vivero se indica con el primero de una serie de números. El segundo número indica los años transcurridos posteriormente en la línea de trasplante, y se muestra un cero si efectivamente no ha habido ningún trasplante. Un tercer número, si lo hubiera, indicaría los años transcurridos posteriormente después de un segundo levantamiento y trasplante. Los números a veces están separados por guiones, pero la separación por el signo más es más lógica, ya que la suma de los números individuales da la edad del material de plantación. Por lo tanto, 2+0 es un material de plantación de plántulas de 2 años que no ha sido trasplantado, y el material de abeto blanco 2+2+3 de Candy (1929) [ 59] había pasado 2 años en el semillero, 2 años en líneas de trasplante y otros 3 años en líneas de trasplante después de un segundo trasplante. Las variaciones han incluido combinaciones que se explican por sí mismas, como 1½+1½, etc.

La clase de material de plantación que se utilizará en un sitio particular generalmente se selecciona sobre la base del registro histórico de supervivencia, crecimiento y costo total de los árboles supervivientes. [60] En los estados de los lagos, Kittredge [61] concluyó que una buena variedad de abeto blanco 2+1 era el tamaño más pequeño con probabilidades de tener éxito y era mejor que una variedad más grande y cara cuando se juzgaba por el costo final de los árboles supervivientes.

Clasificación por código de descripción de plántula.

Debido a que la edad por sí sola es un descriptor inadecuado del material de plantación, se han desarrollado varios códigos para describir componentes de las características del material como altura, diámetro del tallo y relación brote:raíz. [62] Un código de descripción puede incluir una indicación de la temporada de siembra prevista.

Características fisiológicas

Ni la clasificación por edades ni el código de descripción de las plántulas indican la condición fisiológica del material de plantación, aunque la estricta adhesión a un régimen cultural determinado, junto con la observación del comportamiento durante varios años de plantación, puede producir material adecuado para funcionar "igualmente".

Clasificación por sistema de producción

El material vegetal de vivero se vende utilizando una variedad de sistemas. Los sistemas más comunes para plantas leñosas son raíz desnuda, contenedores, [63] y bolas y arpillera. [64] Existen manuales específicos para la producción de cultivos a raíz desnuda [65] y en contenedores [66] En América del Norte, la norma estadounidense para material de vivero (ANSI Z.60.1) [67] y la norma canadiense para material de vivero establecen especificaciones que determinar a qué categoría de tamaño pertenece un material vegetal de vivero. [63] Las categorías se relacionan con el tamaño de la planta, el calibre de la planta y la relación de altura, y el tamaño del cepellón. [63]

Si la planta se cultiva en una maceta de cualquier tamaño o material, se considera planta cultivada en contenedor. [63] los beneficios de utilizar el sistema de plantas cultivadas en contenedores incluyen la conveniencia de poder mantener y transportar las plantas (buscar cita). Sin embargo, las plantas cultivadas en contenedores desarrollarán una estructura de raíces deficiente cuando las raíces golpeen el costado del contenedor y comiencen a girar. Cuando las raíces rodean la maceta, la planta se considera unida a las raíces. [63] Las plantas cultivadas en contenedores pueden crecer hasta su tamaño en el campo y trasplantarse a un contenedor, o cultivarse en un contenedor hasta alcanzar un tamaño comercializable [68] si se cultivan en contenedores en lugar de en el campo, será importante aumentar continuamente el tamaño de las macetas para evitar la planta se une a las raíces. [63] Algunas formas de evitar que un cultivo quede atrapado en las raíces es mediante el uso de contenedores de poda con aire, que tienen espacios alrededor de la maceta que exponen el medio de cultivo y las raíces al aire. [69] El aire impedirá que la punta de la raíz crezca y dé vueltas en la maceta. [69] Los viveros también podarán mecánicamente las raíces con cuchillas lineales o en forma de "U" que están conectadas a tractores. [70] La producción en contenedores puede utilizarse para cualquier especie de planta. [63]

Si una planta de vivero se vende como "raíz desnuda", significa que se ha eliminado tierra de las raíces, el producto que se vende es solo la planta. [68] Las plantas vendidas a raíz desnuda se comercializan en invierno, [68] para venderlas a los clientes en primavera. Las plantas que se venden a raíz desnuda incluyen plantas perennes herbáceas y leñosas. [63] Las plantas de raíz desnuda se cultivan en el campo durante la temporada de crecimiento hasta que se convierten en un cultivo de raíz desnuda cosechable. [68] Durante la latencia, las plantas de raíces desnudas se desentierran, se agrupan, se almacenan en un almacén fresco con las raíces en un medio húmedo, se venden, [71] se trasplantan nuevamente al campo en primavera o se eliminan si no hay suficiente espacio en el campo. El problema de tener raíces unidas no existe para las plantas de raíces desnudas porque no hay un recipiente para que las raíces circulen alrededor, el material de vivero de raíces desnudas tiene el estándar de estar libre de deformidades de raíces y de plagas. [63]

Si una planta es bola y está arpillera, significa que el vivero excavó alrededor de la planta con su tierra mientras estaba en el campo y la envolvió en arpillera que atan con una cuerda. Los viveros también pueden usar cestas de alambre para sostener la pelota y árboles de arpillera si es necesario. [63] Los árboles de bola y arpillera pierden cerca del 90% de sus sistemas de raíces cuando se excavan. [72] El tamaño del cepellón de un árbol de bola y arpillera depende del calibre del árbol y de la especie del árbol. [63] Los cepellones deben tener la profundidad necesaria para mantener la mayor parte del sistema de raíces de la planta y también ser lo suficientemente profundos como para mantener el cepellón intacto mientras la planta se mueve o se planta.

Hay términos que se utilizan para identificar la etapa en la que se encuentran las plantas del vivero. Los liners son plantas jóvenes que tienen uno o dos años. Se pueden vender a raíz desnuda o en contenedores. [63] Un látigo es un árbol con sólo un tronco y pocas o ninguna rama. Los látigos se pueden cultivar a partir de esquejes de madera dura , plántulas o propagarse por gemación, que es un método de propagación por injerto en el que se injerta una sola yema de un cultivar deseado en una planta portainjerto. [63] En el caso de la brotación, el portainjerto será más antiguo que la copa. [63]

Ver también

Referencias

  1. ^ Diccionarios, Oxford (10 de mayo de 2012). Diccionario de inglés Oxford de bolsillo. OUP Oxford. ISBN 978-0-19-964094-2.
  2. ^ McDaniel, Gary L. (1982). Horticultura ornamental. Compañía editorial Reston. pag. 346.ISBN 978-0-8359-5348-1.
  3. ^ Kumar, Rohit (31 de enero de 2024). "Guardería". británica . Consultado el 31 de enero de 2024 .
  4. ^ Maiti, Ratikanta; Rodríguez, Humberto González; Thakur, Ashok Kumar; Sarkar, Narayan Chandra (14 de agosto de 2017). BOTÁNICA APLICADA. Prensa académica estadounidense. ISBN 978-1-63181-866-0.
  5. ^ Reid, Robert L. (22 de octubre de 2013). El manual de agricultura australiana. Elsevier. ISBN 978-1-4831-0034-0.
  6. ^ "El oleoducto de reforestación". Bosques americanos . Consultado el 16 de marzo de 2022 .
  7. ^ Autobús, LJ; Day, RJ 1989. Acondicionamiento de tres coníferas boreales mediante poda y desgarre de raíces. USDA, para. Serv., Planta Arbórea. Notas 40(2):33–39.
  8. ^ Siminovitch, D. 1963. Evidencia del aumento del ácido ribonucleico y la síntesis de proteínas en otoño del aumento del protoplasma durante el endurecimiento por heladas de las células de la corteza de langosta negra. Poder. J.Bot. 41:1301–1308.
  9. ^ Timmis, R.; Worrall, J. 1975. Control ambiental de la aclimatación al frío en abeto Douglas durante la germinación, el crecimiento activo y el descanso. Poder. J. Para. Res. 5:464–477.
  10. ^ Colombo, SJ; Hickie, DF 1987. Una prueba de un día para determinar la resistencia a las heladas utilizando la técnica de conductividad eléctrica. Ont. Mín. Nat. Recurso., Para. Res. Nota 45. 4 p.
  11. ^ Colombo, SJ 1997. El papel de las pruebas operativas de resistencia a las heladas en el desarrollo de regímenes de endurecimiento de existencias de contenedores en Ontario. Nuevo. Para. 13:449–467.
  12. ^ Ritchie, GA 1982. Reservas de carbohidratos y potencial de crecimiento de raíces en plántulas de abeto Douglas antes y después del almacenamiento en frío. Poder. J. Para. Res. 12:905–912.
  13. ^ Armson, KA; Carman, RD 1961. Manejo del suelo en viveros de árboles forestales. Ont. Dep. Tierras y bosques, Timber Branch, Ottawa ON. 74 p.
  14. ^ Armson, KA 1966. El crecimiento y la absorción de nutrientes por plántulas de abeto blanco fertilizadas y no fertilizadas. Para. Crón. 42(2):127–136.
  15. ^ Stiell, WM 1976. Abeto blanco: regeneración artificial en Canadá. Dep. Entorno., Can. Para. Serv., Ottawa ON, Inf. Representante FMR-X-85. 275 págs.
  16. ^ Duryea, ML; McClain, KM 1984. Alteración de la fisiología de las plántulas para mejorar el éxito de la reforestación. págs. 77-114 en ML Dryea y GN Brown (eds.). Fisiología de las plántulas y éxito de la reforestación. Martinus Nijhoff/Dr. W. Junk, La Haya.
  17. ^ Armson, KA; Sadreika, V. 1979. Manejo del suelo en viveros de árboles forestales y prácticas relacionadas – edición métrica. Ont. Mín. Nat. Recursos., Div. Para. Para. Administrar. Sucursal, Toronto ON. 179p.
  18. ^ van den Driessche, R. 1980. (EP 640.66), Crecimiento de plántulas de abeto Douglas y abeto blanco tratadas con fertilizantes de liberación lenta en el vivero. BC mín. Para., Victoria BC, Res. Nota 39. 2 p.
  19. ^ Dobbs, RC 1976. Efecto de la masa inicial de material de plantación de abeto blanco y pino torcido sobre el rendimiento del campo en el interior de la Columbia Británica. Poder. Dep. Entorno., Can. Para. Serv., Victoria BC, Inf. Representante BC-X-149. 14p.
  20. ^ ab McMinn, RG 1985a. Efecto de la masa inicial sobre el rendimiento en campo del material de plantación de abeto blanco. Poder. Para. Serv., Victoria BC, Archivo Rep. PC 48-357, Exp. 72-F2. 5p.
  21. ^ McMinn, RG 1980. Capacidad de crecimiento de raíces y desempeño en el campo de varios tipos y tamaños de abeto blanco luego de su trasplante en el interior central de Columbia Británica. pag. 37–41 en Schmidt-Vogt, H. (Ed.). Caracterización del Material Vegetal. Proc. Reunión del Grupo de Trabajo IUFRO S1.05-04, Waldbau-Institut, Univ. Friburgo, Alemania.
  22. ^ McMinn, RG 1984. Rendimiento en el campo de varios tamaños de abeto blanco en sitios recientemente cortados y atrasados. Poder. Para. Serv., Victoria BC, Archivo Rep. PC 48-357, Exp. 78-F1. 4p.
  23. ^ Paterson, JM; Hutchison, RE 1989. Comparaciones de tipos de cepas de pino rojo, pino blanco y abeto blanco. Ont. Mín. Nat. Recurso., Para. Res. Nota 47. 4 p.
  24. ^ Lajzerowicz, CC, Vyse, A., Jull, M. y Newsome, T. 2006. Rendimiento de plántulas de abeto subalpino y picea de Engelmann plantadas en las montañas del sur de Columbia Británica. Para. Crón. 82(1):84–94
  25. ^ Thompson, C. 1995. Expectativas preliminares de altura de las plantaciones de abeto Engelmann para tres elevaciones en la región forestal de Nelson. BC mín. Para. Nelson para. Región, Res. Suma RS-020. (Citado por Lajzerowicz et al. 2006, original no visto.)
  26. ^ Ford-Robertson, FC (Ed.) 1971. Terminología de ciencia, tecnología, prácticas y productos forestales. Versión en idioma inglés. Soc. América. Para., Washington DC. 349 págs.
  27. ^ Willen, P.; Sutton, RF 1980. Evaluación de la calidad del material de plantación: Evaluación del material de siembra después de la siembra. Nueva Zelanda J. Para. Ciencia. 10:297–299.
  28. ^ Sutton, RF 1982. Establecimiento de plantaciones en el bosque boreal: extensión de la temporada de siembra . Poder. Dep. Entorno., Can. Para. Serv., Sault Ste. Marie ON, Inf. Representante OX-344. 129p.
  29. ^ Sutton, RF 1987. Establecimiento de plantaciones en la Ontario boreal: un estudio sobre la mecanización y la siembra de primavera. El gobierno puede., puede. Para. Serv., Sault Ste. Marie ON, Inf. Representante OX-383. 26 p.
  30. ^ Wakely, PC 1954. Plantando los pinos del sur. USDA para. Serv.. Monografía 18. 233 p.
  31. ^ Tucker, RE; Jarvis, JM; Waldron, RM 1968. Supervivencia temprana y crecimiento de plantaciones de abeto blanco, Parque Nacional Riding Mountain, Manitoba. Poder. Dep. Para. Desarrollo Rural, Para. Sucursal, Ottawa ON, Publ. 1239, 26 págs.
  32. ^ Sutton, RF 1979. Establecimiento de plantaciones en el bosque boreal: redistribución de nutrientes durante la plantación mecanizada. Poder. Dep. Entorno., Can. Para. Serv., Sault Ste. Marie ON, Inf. Representante OX-303. 16p. (Citado en Coates et al. 1994)
  33. ^ Mullin, RE; Christl, C. 1981. Clasificación morfológica del material de vivero de abeto blanco. Para. Crón. 57(3):126–130. (Citado en Coates et al. 1994).
  34. ^ Schmidt-Vogt, H. (Ed.) 1980. Caracterización de material vegetal. Proc. Reunión IUFRO. Div. 1, Friburgo, Alemania.
  35. ^ van den Driessche, R. 1976. ¿Hasta qué punto los estándares para las plántulas reflejan la calidad de las plántulas? pag. 50–52 en Proc. XVI Congreso Mundial IUFRO. Div. II, para. Plantas para. Prot., Oslo, Noruega.
  36. ^ Navratil, S.; Apoyo, LG; Edwards, IK 1986. Monitoreo de la calidad del stock de plantación. Servicio Forestal Canadiense, Centro Forestal del Norte, Edmonton, Alberta NOR-X-279.
  37. ^ Morrison, IK; Armson, KA 1968. El rizometro: un nuevo dispositivo para medir las raíces de las plántulas de árboles. Para. Crón. 44: 21-23.
  38. ^ Burdett, AN 1979. Nuevos métodos para medir la capacidad de crecimiento de las raíces: su valor en la evaluación de la calidad del stock de pino torcido. Poder. J. Para. Res. 9:63–67.
  39. ^ Helgerson, OT 1990. Daño por calor en plántulas de árboles y su prevención. Nuevo para. 3:333–358.
  40. ^ abc Colombo, SJ; Temporizador, realidad virtual; Colclough, ML; Blumwald, E. 1995. Variación diurna en la tolerancia al calor y expresión de la proteína de choque térmico en abeto negro ( Picea mariana ). Poder. J. Para. Res. 25(3):369–375.
  41. ^ Clave, JL; Lin, CY; Chen, YM 1981. Proteínas de choque térmico de plantas superiores. Proc. Académico de EE. UU. Ciencia. 78:3526–3530.
  42. ^ Kimpel, JA; Clave, JL 1985a. Calce las plantas con calor. Tendencias Bioquímica. Ciencia. 10:353–357.
  43. ^ Kimpel, JA; Clave, JL 1985b. Presencia de ARNm de choque térmico en soja cultivada en el campo. Fisiol vegetal. 79:672–678.
  44. ^ Coclough, ML 1991. La inducción de termotolerancia y síntesis de proteínas de choque térmico en plántulas de Picea mariana mediante acondicionamiento térmico. Maestría en Ciencias Tesis, Universidad de Toronto, Toronto, Ontario.
  45. ^ Colombo, SJ; Colclough, ML; Temporizador, realidad virtual; Blumwald, E. 1992. Variación clonal en la tolerancia al calor y expresión de la proteína de choque térmico en abeto negro. Silvae Gent. 41:234–239.
  46. ^ abcde Navratil, S. 1982. Almacenamiento de material de plantación a raíz desnuda. Proc. Fed.–Prov. Encuentro de viveristas, Smoky Lake AB, noviembre de 1982. Alberta Energy & Nat. Recurso. 13p.
  47. ^ Sutton, RF 1990. Capacidad de crecimiento de raíces en árboles de bosques de coníferas. HortSci. 25:259–266.
  48. ^ Hambly, ESL 1973. La periodicidad del potencial de regeneración de raíces de las plántulas de vivero de abeto blanco y negro y pino jack. Maestría en Ciencias tesis, Univ. Toronto, Fac. Para., Toronto ON. 66p.
  49. ^ Día, RJ; MacGillivray, GR 1975. Regeneración de raíces de material de vivero de abeto blanco levantado en otoño en relación con el contenido de humedad del suelo. Para. Crón. 51:196–199.
  50. ^ Día, RJ; Breunig, E. 1997. La generación de raíces del abeto blanco 3+0 varía según el tamaño del sistema radicular, la humedad posterior a la plantación y el clima. B.Sc.F. Tesis, Universidad de Lakehead, Thunder Bay, Ontario. 38p.
  51. ^ Stone, EC 1955. Mala supervivencia y condición fisiológica del material de plantación. Para. Ciencia. 1:90–94.
  52. ^ Simpson, director general; Ritchie, GA 1997. ¿RGP predice el desempeño en el campo? Un debate. Nuevo para. 13:253–277.
  53. ^ Scagel, CF; Linderman, RG 2001. Modificación de las concentraciones de AIA en las raíces, el crecimiento y la supervivencia de los árboles mediante la aplicación de sustancias reguladoras del crecimiento de las plantas a coníferas cultivadas en contenedores. Nuevo para. 21:159–186.
  54. ^ Sutton, RF 1984. Establecimiento de plantaciones en el bosque boreal: glifosato, hexazinona y control manual de malezas. Para. Crón. 60:282–287.
  55. ^ Grossnickle, SC 1988. Estrés de plantación en pino jack y abeto blanco recién plantados. I. Factores que influyen en la absorción de agua. Fisiol del árbol. 4(1):71–84. [Buscar 8 abstr 38 de 99]
  56. ^ Grossnickle, Carolina del Sur; Blake, TJ 1986. Control ambiental y fisiológico de la conductancia de la aguja para plántulas de abeto negro, abeto blanco y pino jack a raíz desnuda en sitios de corte boreal. Poder. J.Bot. 64(5):943–949.
  57. ^ Grossnickle, Carolina del Sur; Blake, TJ 1987. Patrones de relación hídrica de plántulas de pino y abeto negro a raíz desnuda y en contenedor plantadas en sitios de corte boreal. Nuevo para. 1:101–116.
  58. ^ ab Marsden, BJ; Lieffers, VJ; y Zwiazek, JJ 1996. El efecto de la humedad en la fotosíntesis y las relaciones hídricas de las plántulas de abeto blanco durante la fase inicial de establecimiento. Poder. J. Para. Res. 26(6):1015–1021.
  59. ^ Candy, RH 1929. Plántulas versus trasplantes en la estación experimental forestal de Petawawa. Para. Crón. 5(4):17–20.
  60. ^ Korstian, CF; Baker, FS 1925. Plantación forestal en la región entre montañas. USDA, para. Serv., Washington DC, Agricultura. Toro. 1264, 56 págs.
  61. ^ Kittredge, J (1929). "Plantación forestal en los estados de los lagos". USDA, por. Serv., Washington DC, Agricultura. Toro. (1497): 87 págs.
  62. ^ Claro, BD; Grebas, RD; Hermann, RK (compiladores y editores). 1978. Regeneración de los bosques de Oregón. Universidad Estatal de Oregón. Ampliar. Serv., Corvallis OR. 287p.
  63. ^ abcdefghijklmn Lumis, AH (2017). Norma canadiense sobre viveros, novena edición. Milton: Asociación Canadiense de Jardinería y Jardinería.
  64. ^ Lumis, G. (1990). Cestas de alambre: una mirada más amplia. Viverista americano , 128-131.
  65. ^ Duryea, ML; Landis, TD (Eds.) 1984. Manual de vivero forestal: producción de plántulas a raíz desnuda. Nijhoff/Junk, Boston MA. 386 págs.
  66. ^ Tinus, RW; McDonald, SE 1979. Cómo cultivar plántulas de árboles en contenedores en invernaderos. USDA, para. Serv., Montañas Rocosas Para. Rango Exp. Sta., Fort Collins CO, Gen. Tech. Representante RM-60. 256 págs. (Citado en Nienstaedt y Zasada 1990).
  67. ^ Quinn, WA (2014). Norma americana para material de vivero. Colón: AmericanHort.
  68. ^ abcd Ministerio de Agricultura, Alimentación y Asuntos Rurales. (2022, 18 de julio). Iniciar un vivero comercial en Ontario.
  69. ^ ab Shaw, C. (2019). "Un enfoque de sentido común para la poda de raíces". Revista Gestión Vivero , 1.
  70. ^ Tripepi, B. (2009). Poda de raíces durante la producción vegetal. Exposición de horticultura de Idaho - 2009 (págs. 1-7). Idaho: División de Ciencias Hortícolas de la Universidad de Idaho.
  71. ^ Damman, A. (2021, 1 de febrero). Vivero Swansons : Lo más básico: todo lo que necesita saber sobre las plantas de raíz desnuda
  72. ^ Bassuk 2. Trowbridge, Nina 2. Peter (2004). Árboles En El Paisaje Urbano . John Wiley & Sons, Inc. pág. 140.ISBN 0471392464.{{cite book}}: Mantenimiento CS1: nombres numéricos: lista de autores ( enlace )

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