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Motilidad de los espermatozoides

Vídeo de espermatozoides humanos moviéndose bajo el microscopio

La motilidad de los espermatozoides describe la capacidad de los espermatozoides para moverse adecuadamente a través del tracto reproductivo femenino ( fecundación interna ) o a través del agua ( fecundación externa ) para llegar al óvulo . La motilidad de los espermatozoides también puede considerarse como la calidad , que es un factor en la concepción exitosa ; los espermatozoides que no "nadan" adecuadamente no llegarán al óvulo para fecundarlo . La motilidad de los espermatozoides en los mamíferos también facilita el paso de los espermatozoides a través del cúmulo oóforo (una capa de células) y la zona pelúcida (una capa de matriz extracelular ), que rodean al ovocito de los mamíferos .

En el ratón de campo Apodemus sylvaticus , los espermatozoides se agrupan en "trenes" que son más capaces de fecundar los óvulos porque son más capaces de desplazarse por el ambiente viscoso del tracto reproductivo femenino. Los trenes se mueven en un movimiento sinusoidal.

La motilidad de los espermatozoides también se ve afectada por ciertos factores liberados por los óvulos. [1]

El movimiento de los espermatozoides se activa por cambios en la concentración de iones intracelulares. [2] Los cambios en la concentración de iones que provocan la motilidad son diferentes entre especies. En invertebrados marinos y erizos de mar , el aumento del pH a aproximadamente 7,2-7,6 activa la ATPasa , lo que conduce a una disminución del potasio intracelular y, por lo tanto, induce la hiperpolarización de la membrana . Como resultado, se activa el movimiento de los espermatozoides. [3] El cambio en el volumen celular que altera la concentración de iones intracelulares también puede contribuir a la activación de la motilidad de los espermatozoides. En algunos mamíferos , la motilidad de los espermatozoides se activa por el aumento del pH, el ion calcio y el AMPc , pero se suprime por un pH bajo en el epidídimo .

La cola del espermatozoide, el flagelo , confiere movilidad al espermatozoide y tiene tres componentes principales:

  1. Un esqueleto central construido de 11 microtúbulos denominados colectivamente axonema y similar a la estructura equivalente que se encuentra en los cilios.
  2. una membrana celular delgada que cubre el axonema
  3. mitocondrias dispuestas en espiral alrededor del axonema en la pieza media,

El movimiento de vaivén de la cola es el resultado de un movimiento rítmico de deslizamiento longitudinal entre los túbulos anterior y posterior que forman el axonema. La energía para este proceso es suministrada por el ATP producido por las mitocondrias. La velocidad de un espermatozoide en un medio líquido suele ser de 1 a 4 mm/min. Esto le permite desplazarse hacia un óvulo para fecundarlo.

El axonema está unido en su base a un centríolo conocido como centríolo distal y actúa como un cuerpo basal . [4] En la mayoría de los animales, este centríolo distal actúa como un amortiguador que evita que los filamentos de microtúbulos se muevan en la base del axonema. Por el contrario, en los mamíferos, el centríolo distal desarrolló una estructura atípica, conocida como centríolo distal atípico. [5] El centríolo atípico está formado por microtúbulos extendidos organizados en lados izquierdo y derecho. Durante el movimiento del esperma, los dos lados se mueven uno con respecto al otro, lo que ayuda a dar forma a la forma de onda de la cola del esperma. [5]

En los mamíferos, los espermatozoides maduran funcionalmente a través de un proceso conocido como capacitación . Cuando los espermatozoides llegan al oviducto ístmico , se ha informado que su motilidad se reduce a medida que se adhieren al epitelio. Cerca del momento de la ovulación, se produce una hiperactivación. Durante este proceso, los flagelos se mueven con una gran curvatura y una longitud de onda larga. [6] La hiperactivación es iniciada por el calcio extracelular; sin embargo, se desconocen los factores que regulan el nivel de calcio. [7]

Sin una intervención tecnológica, un espermatozoide inmóvil o con una movilidad anormal no va a fecundar. Por lo tanto, la fracción de una población de espermatozoides que es móvil se utiliza ampliamente como una medida de la calidad del semen. La movilidad insuficiente de los espermatozoides es una causa común de subfertilidad o infertilidad . Existen varias medidas disponibles para mejorar la calidad de los espermatozoides.

Movimiento del axonema

La motilidad de los espermatozoides depende de varias vías metabólicas y mecanismos reguladores.

El movimiento de flexión axonemal se basa en el deslizamiento activo de los microtúbulos del doblete axonemal por el motor molecular dineína, que se divide en un brazo externo y otro interno. El brazo externo e interno desempeñan diferentes papeles en la producción y regulación de la motilidad flagelar: el brazo externo aumenta la frecuencia de batido, el brazo interno está involucrado en la propulsión y propagación de la flexión flagelar. La flexión del flagelo se debe a ciclos posteriores de unión del brazo de dineína, generación de fuerza y ​​desprendimiento de la subunidad B. La unión del axonema es el resultado de la presencia de una resistencia al deslizamiento de los microtúbulos generada por la dineína.

Las dineínas de los dos lados del aparato del par central están reguladas de forma opuesta por un juego de activación/desactivación realizado por el aparato del par central-radial, que regula la curvatura flagelar. La motilidad de los espermatozoides está regulada por varias vías, siendo las más importantes la vía del calcio y la vía de la PKA. Estas vías involucran iones, adenilato ciclasa, AMPc, canales de membrana y fosforilaciones.

El primer evento es la activación de un cotransportador Na + /HCO3 − (NBC) y la regulación de HCO3 /Cl por los transportadores SLC26, que provocan un aumento en los niveles de HCO3 .

El segundo evento es la activación de un intercambiador Na + /H + y del canal de protones Hv-1, que conduce a un aumento en los niveles de pH.

Estos aumentos en los niveles de HCO3 y pH provocan la activación del canal CatSper, un canal de calcio específico de la membrana del espermatozoide. CatSperm también puede ser activado por progesterona y albúmina. CatSper, una vez activado, se abre y deja entrar calcio libre dentro de la célula, con un aumento global de los niveles intracelulares de calcio.

En conjunto, el aumento de HCO3 , pH y calcio conduce a la activación de una adenilil ciclasa soluble (SAC o SACY), que aumenta la producción de AMPc y lleva a la activación de PKA, una proteína quinasa que fosforila varias tirosina quinasas y conduce a una cascada de fosforilación que termina con la fosforilación de la dineína axonemal y el inicio del movimiento flagelar. [8]

Daños en el ADN del esperma

El daño del ADN de los espermatozoides es común en hombres infértiles . [9] Alrededor del 31% de los hombres con defectos de motilidad de los espermatozoides tienen altos niveles de fragmentación del ADN de los espermatozoides . [10]

Motilidad y edad de los espermatozoides

La motilidad de los espermatozoides aumenta desde la pubertad hasta los treinta y cinco años. Las investigaciones muestran que a partir de los 36 años, la motilidad de los espermatozoides disminuye del 40 % (grado A y B) al 31 % a los 50 años. Los efectos del envejecimiento en la calidad del semen se resumen a continuación según un estudio de 1219 sujetos: [11]

Clasificaciones de la motilidad

  1. Movimiento recto,
  2. Movimiento en zigzag,
  3. Vibrando,
  4. No móvil

Referencias

  1. ^ Quill, AT, Garbers, LD (2002). "Activación de la motilidad de los espermatozoides y quimioatracción". En Daniel M. Hardy (ed.). Fertilization . California: Academic press. p. 29. ISBN 978-0-12-311629-1.{{cite book}}: CS1 maint: varios nombres: lista de autores ( enlace )
  2. ^ Jensen, Martin Blomberg (marzo de 2014). "Vitamina D y reproducción masculina". Nature Reviews Endocrinology . 10 (3): 175–186. doi :10.1038/nrendo.2013.262. PMID  24419359. S2CID  32394600.
  3. ^ Darszon, Alberto; Labarca, Pedro; Nishigaki, Takuya; Espinosa, Felipe (1 de abril de 1999). "Canales iónicos en la fisiología del esperma". Physiological Reviews . 79 (2): 481–510. doi :10.1152/physrev.1999.79.2.481. PMID  10221988. S2CID  30768971.
  4. ^ Avidor-Reiss, Tomer; Carr, Alexa; Fishman, Emily Lillian (diciembre de 2020). "Los centriolos de los espermatozoides". Endocrinología molecular y celular . 518 : 110987. doi :10.1016/j.mce.2020.110987. PMC 7606549. PMID  32810575 . 
  5. ^ ab Fishman, Emily L.; Jo, Kyoung; Nguyen, Quynh PH; Kong, Dong; Royfman, Rachel; Cekic, Anthony R.; Khanal, Sushil; Miller, Ann L.; Simerly, Calvin; Schatten, Gerald; Loncarek, Jadranka; Mennella, Vito; Avidor-Reiss, Tomer (diciembre de 2018). "Un nuevo centríolo atípico del espermatozoide es funcional durante la fertilización humana". Nature Communications . 9 (1): 2210. Bibcode :2018NatCo...9.2210F. doi :10.1038/s41467-018-04678-8. PMC 5992222 . PMID  29880810. 
  6. ^ Mortimer, D; Aitken, Rj; Mortimer, St; Pacey, Aa (1995). "Informe de taller: CASA clínico: la búsqueda de consenso". Reproducción, fertilidad y desarrollo . 7 (4): 951–959. doi :10.1071/RD9950951. PMID  8711226.
  7. ^ Yanagimachi, R. (1994). "Fertilización de mamíferos". En Knobil, E.; Neill, JD (eds.). La fisiología de la reproducción . Nueva York: Raven Press. págs. 189–317.[ Falta ISBN ]
  8. ^ Sun, Xiang-hong; Zhu, Ying-ying; Wang, Lin; Liu, Hong-ling; Ling, Yong; Li, Zong-li; Sun, Li-bo (diciembre de 2017). "El canal Catsper y sus funciones en la fertilidad masculina: una revisión sistemática". Biología reproductiva y endocrinología . 15 (1): 65. doi : 10.1186/s12958-017-0281-2 . PMC 5558725 . PMID  28810916. 
  9. ^ Simon, Luke; Lutton, Deborah; McManus, Joanne; Lewis, Sheena EM (febrero de 2011). "Daños en el ADN del esperma medidos mediante el ensayo alcalino Comet como predictor independiente de la infertilidad masculina y el éxito de la fertilización in vitro". Fertilidad y esterilidad . 95 (2): 652–657. doi : 10.1016/j.fertnstert.2010.08.019 . PMID  20864101.
  10. ^ Belloc, Stephanie; Benkhalifa, Moncef; Cohen-Bacrie, Martine; Dalleac, Alain; Chahine, Hikmat; Amar, Edouard; Zini, Armand (mayo de 2014). "Qué anomalía aislada del esperma está más relacionada con el daño del ADN del esperma en hombres que se presentan para una evaluación de infertilidad". Revista de reproducción asistida y genética . 31 (5): 527–532. doi :10.1007/s10815-014-0194-3. PMC 4016368 . PMID  24566945. 
  11. ^ Kumar, MD, Naina; Singh, MD, Amit K; Choudhari, MD, Ajay R (agosto de 2017). "Impacto de la edad en los parámetros del semen en parejas masculinas de parejas infértiles en un centro de atención terciaria rural de la India central: un estudio transversal". Revista internacional de biomedicina reproductiva . 15 (8): 497–502.

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