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Fósmido

Los fósmidos son similares a los cósmidos , pero se basan en el plásmido bacteriano F. El vector de clonación es limitado, ya que un huésped (normalmente E. coli ) solo puede contener una molécula de fósmido. Los fósmidos pueden contener insertos de ADN de hasta 40 kb de tamaño; a menudo, la fuente del inserto es ADN genómico aleatorio. Se prepara una biblioteca de fósmidos extrayendo el ADN genómico del organismo objetivo y clonándolo en el vector de fósmido. [1] Luego, la mezcla de ligadura se empaqueta en partículas de fago y el ADN se transfecta en el huésped bacteriano. Los clones bacterianos propagan la biblioteca de fósmidos. El bajo número de copias ofrece una mayor estabilidad que los vectores con números de copias relativamente más altos, incluidos los cósmidos. Los fósmidos pueden ser útiles para construir bibliotecas estables a partir de genomas complejos . Los fósmidos tienen una alta estabilidad estructural y se ha descubierto que mantienen el ADN humano de manera eficaz incluso después de 100 generaciones de crecimiento bacteriano. [2] Los clones de fósmidos se utilizaron para ayudar a evaluar la precisión de la secuencia pública del genoma humano. [3]

Descubrimiento

El plásmido de fertilidad o plásmido F fue descubierto por Esther Lederberg y codifica información para la biosíntesis del pilus sexual para ayudar en la conjugación bacteriana. La conjugación implica el uso del pilus sexual para formar un puente entre dos células bacterianas; este puente permite que la célula F+ transfiera una copia monocatenaria del plásmido para que ambas células contengan una copia del plásmido. En el camino hacia la célula receptora, la célula receptora sintetiza la cadena de ADN correspondiente. La célula donante mantiene una copia funcional del plásmido. Más tarde se descubrió que el factor F fue el primer episoma y puede existir como un plásmido independiente, lo que lo convierte en un vector muy estable para la clonación. La conjugación ayuda en la formación de bibliotecas de clones bacterianos al garantizar que todas las células contengan el fósmido deseado. [4]

Los fósmidos son vectores de ADN que utilizan el origen de replicación y los mecanismos de partición del plásmido F para permitir la clonación de grandes fragmentos de ADN. Se puede preparar fácilmente una biblioteca que proporcione una cobertura redundante de 20 a 70 veces del genoma. [5]

Bibliotecas de ADN

El primer paso para secuenciar genomas completos es clonarlos en unidades manejables de unas 50-200 kilobases de longitud. Lo ideal es utilizar una biblioteca de fósmidos debido a su estabilidad y a la limitación de un plásmido por célula. Al limitar el número de plásmidos en las células, se reduce el potencial de recombinación, con lo que se preserva el inserto del genoma. [6]

Los fósmidos contienen varios elementos funcionales:

Los métodos de corte e inserción de ADN en vectores fósmidos se han perfeccionado. Actualmente, existen muchas empresas que pueden crear una biblioteca de fósmidos a partir de cualquier muestra de ADN en un período de tiempo muy breve y a un coste relativamente bajo. Esto ha sido fundamental para permitir a los investigadores secuenciar numerosos genomas para su estudio. Mediante una variedad de métodos, se han secuenciado completamente más de 6651 genomas de organismos, y 58 695 están en proceso. [7]

Usos

A veces es difícil distinguir con precisión los cromosomas individuales en función de la longitud cromosómica, la proporción de brazos y el patrón de bandas C. Los fósmidos se pueden utilizar como marcadores citológicos fiables para la identificación de cromosomas individuales y se pueden utilizar cariotipos cromosómicos en metafase basados ​​en la hibridación in situ fluorescente para mostrar si las posiciones de estos fósmidos se construyeron con éxito. [8]

El sistema de fósmidos es excelente para crear rápidamente bibliotecas de mini-BAC específicas de cromosomas a partir de ADN cromosómico clasificado por flujo. La principal ventaja de los fósmidos sobre otros sistemas de cósmidos reside en su capacidad de propagar de forma estable fragmentos de ADN humano. [9] El ADN humano, de naturaleza altamente repetitiva, es bien conocido por su extrema inestabilidad en sistemas de vectores multicopia. Se ha descubierto que la estabilidad aumenta drásticamente cuando los insertos de ADN humano están presentes en copias individuales en células de E. coli deficientes en recombinación . Por lo tanto, los fósmidos sirven como sustratos fiables para la secuenciación de ADN genómico a gran escala. [2]

Referencias

  1. ^ Hall BG (mayo de 2004). "Predicción de la evolución de los genes de resistencia a los antibióticos". Nature Reviews. Microbiology . 2 (5): 430–5. doi :10.1038/nrmicro888. PMID  15100696. S2CID  8892046.
  2. ^ ab Shizuya H, Birren B, Kim UJ, Mancino V, Slepak T, Tachiiri Y, Simon M (septiembre de 1992). "Clonación y mantenimiento estable de fragmentos de 300 kilobases de ADN humano en Escherichia coli utilizando un vector basado en el factor F". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 89 (18): 8794–7. Bibcode :1992PNAS...89.8794S. doi : 10.1073/pnas.89.18.8794 . PMC 50007 . PMID  1528894. 
  3. ^ Kim UJ, Shizuya H, de Jong PJ, Birren B, Simon MI (marzo de 1992). "Propagación estable de insertos de ADN humano del tamaño de un cósmido en un vector basado en el factor F". Nucleic Acids Research . 20 (5): 1083–5. doi :10.1093/nar/20.5.1083. PMC 312094 . PMID  1549470. 
  4. ^ Bauman, Robert. Microbiología con enfermedades por taxonomía (3.ª ed.). Pearson Education Press. pág. 218.
  5. ^ \ Kim UJ, Shizuya H, Sainz J, Garnes J, Pulst SM, de Jong P, Simon MI (octubre de 1995). "Construcción y utilidad de una biblioteca de fósmidos específicos del cromosoma humano 22". Análisis genético: ingeniería biomolecular . 12 (2): 81–4. doi :10.1016/1050-3862(95)00122-0. PMID  8574898.
  6. ^ Gibson, Greg. Muse, Spencer. "A Primer of Genome Science". Tercera edición. Sinauer Associates, págs. 84-85.
  7. ^ "JGI GOLD - Página de inicio". gold.jgi-psf.org . Archivado desde el original el 2021-04-16 . Consultado el 2015-04-17 .
  8. ^ Liu, C 2010 Cariotipado en melón (Cucumis melo L.) mediante hibridación in situ con fluorescencia de fósmidos entre especies, INVESTIGACIÓN CITOGENÉTICA Y DEL GENOMA
  9. ^ Tursun B, Cochella L, Carrera I, Hobert O (2009). "Un conjunto de herramientas y una sólida metodología para la generación de genes reporteros basados ​​en fósmidos en C. elegans". PLOS ONE . ​​4 (3): e4625. Bibcode :2009PLoSO...4.4625T. doi : 10.1371/journal.pone.0004625 . PMC 2649505 . PMID  19259264. 

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