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Corrección de errores conformacionales

La corrección conformacional o selección conformacional es un mecanismo general de los sistemas de reconocimiento molecular , sugerido por Yonatan Savir y Tsvi Tlusty, en el que la introducción de una barrera energética (como un desajuste estructural entre un reconocedor molecular y su diana) mejora la especificidad y la calidad del reconocimiento. [1] [2] [3] [4] [5] [6] La corrección conformacional no requiere el consumo de energía y, por lo tanto, puede utilizarse en cualquier sistema de reconocimiento molecular. La corrección conformacional es especialmente útil en escenarios en los que el reconocedor tiene que seleccionar la diana apropiada entre muchos competidores similares. Las proteínas desarrollan la capacidad de corrección conformacional mediante el ajuste fino de su geometría, flexibilidad e interacciones químicas con la diana. [7]

Equilibrar la encuadernación correcta e incorrecta

El reconocimiento molecular tiene lugar en un entorno biológico ruidoso y abarrotado y el reconocedor a menudo tiene que hacer frente a la tarea de seleccionar su objetivo entre una variedad de competidores similares. Por ejemplo, el ribosoma tiene que seleccionar el ARNt correcto que coincida con el codón del ARNm entre muchos ARNt estructuralmente similares. Si el reconocedor y su objetivo correcto coinciden perfectamente como una cerradura y una llave , entonces la probabilidad de unión será alta ya que no se requiere deformación al unirse. Al mismo tiempo, el reconocedor también podría unirse a un competidor con una estructura similar con alta probabilidad. La introducción de una barrera de energía , en particular, un desajuste estructural entre el reconocedor (cerradura) y la llave, reduce la probabilidad de unión al objetivo correcto, pero reduce aún más la probabilidad de unión a un objetivo incorrecto similar y, por lo tanto, mejora la especificidad. [1] [2] [3] [7] Sin embargo, la introducción de demasiada deformación reduce drásticamente la probabilidad de unión al objetivo correcto. Por lo tanto, el equilibrio óptimo entre maximizar la probabilidad de unión correcta y minimizar la probabilidad de unión incorrecta se logra cuando el reconocedor está ligeramente fuera del objetivo . Esto sugiere que los cambios conformacionales durante los procesos de reconocimiento molecular, como el mecanismo de ajuste inducido [8] , son ventajosos para mejorar la especificidad del reconocimiento. Dichos cambios conformacionales pueden ser ajustados por mutaciones que afectan la respuesta mecánica del reconocedor, también en posiciones alejadas del sitio de unión. [7]

En la corrección conformacional, la introducción de un desajuste estructural o una barrera energética entre un reconocedor molecular y su diana, o una barrera energética, mejora la especificidad y la calidad del reconocimiento. La mejora puede alcanzar varios órdenes de magnitud.
Corrección conformacional en la recombinación homóloga . Arriba : La probabilidad de unión a secuencias de ADN homólogas (correctas) y no homólogas (incorrectas) disminuye con la barrera de energía de deformación . La probabilidad de unión incorrecta disminuye antes que la correcta. Abajo : Como resultado, la aptitud , que es la diferencia, aptitud = probabilidad (correcta) − probabilidad (incorrecta), es máxima en una energía de deformación distinta de cero. Esta barrera es óptima en el sentido de que reduce significativamente la probabilidad de unión mientras mantiene la probabilidad de unión correcta aproximadamente igual. Las mediciones bioquímicas de la recombinación inducida por RecA sugieren que la deformación observada es casi óptima. [3] [4]

Uso por recombinación homóloga para búsqueda de homología

El mecanismo de corrección conformacional se utiliza en el sistema de recombinación homóloga para discernir entre secuencias de ADN similares. [3] [4] La recombinación homóloga facilita el intercambio de material genético entre moléculas de ADN homólogas. Este proceso crucial requiere detectar una secuencia de ADN homóloga específica dentro de una gran variedad de secuencias heterólogas. La detección está mediada por RecA en E. coli, o miembros de su superfamilia en otros organismos. RecA primero se polimeriza a lo largo de un tramo de ADN monocatenario, y luego este filamento de proteína-ADN busca homología a lo largo del ADN bicatenario. En el filamento RecA-ADN, la distancia entre bases aumenta significativamente con respecto a los 3,4 Å desnudos en la doble hebra (en un 50% en promedio [9] ). Esto establece una barrera energética significativa en la búsqueda, ya que el ADN bicatenario tiene que estirarse en la misma magnitud para verificar la homología. Al formular el proceso de reconocimiento de ADN como un problema de detección de señales, se demostró que la deformación del ADN inducida por RecA observada experimentalmente y la energía de unión están ajustadas con precisión para garantizar una detección óptima de la secuencia. La cantidad de deformación es tal que la unión a secuencias de ADN homólogas solo disminuye ligeramente, mientras que la unión a secuencias erróneas disminuye significativamente. Este es exactamente el mecanismo de corrección conformacional.

Evidencia experimental de corrección conformacional por recombinación homóloga

El grupo de C. Dekker (Universidad de Delft) investigó directamente las interacciones implicadas en la búsqueda de homología combinando pinzas magnéticas y ópticas. [10] Han descubierto que la búsqueda y el reconocimiento de homología requieren la apertura de la hélice y, por lo tanto, se pueden acelerar desenrollando el ADN. Esta es exactamente la barrera energética predicha por el modelo de corrección conformacional. Los datos indican una imagen física para el reconocimiento de homología en la que la fidelidad del proceso de búsqueda está regida por la distancia entre los sitios de unión del ADN. Los autores concluyen que su interpretación de las mediciones "es similar a un esquema de corrección conformacional ... donde el dsADN, y no el filamento RecA, es la entidad de búsqueda activa que reconoce. Existe un gran desajuste conformacional entre los estados unidos al objetivo y no unidos del dsADN. Se accede al estado unido al objetivo a través de estados intermedios energéticamente desfavorables, como se ha comentado anteriormente. El desajuste conformacional mejora la selectividad de la reacción de reconocimiento". En otras palabras, han identificado la barrera energética y han demostrado que efectivamente el ADN de doble cadena es el participante activo, ya que tiene que pasar esta barrera.

Uso por el ribosoma para la decodificación del ARNt

El ribosoma es una máquina molecular compleja que, para sintetizar proteínas durante el proceso de traducción , tiene que decodificar los ARNm apareando sus codones con los ARNt correspondientes . La decodificación es un determinante importante de la aptitud y requiere una selección precisa y rápida de los ARNt correctos entre muchos competidores similares. Hay que tener en cuenta que la mayoría de los eventos de unión se producen por ARNt no coincidentes ("no cognados") y el ribosoma necesita rechazarlos lo más rápido posible para desocupar el sitio de unión. Al mismo tiempo, el ribosoma debe mantener unidos los ARNt coincidentes el tiempo suficiente para permitir que se produzca el proceso de síntesis de proteínas. A pesar de la importancia de la decodificación del ARNt, hasta hace poco no estaba claro si el ribosoma moderno, y en particular sus grandes cambios conformacionales durante la decodificación, son el resultado de la adaptación a su tarea como decodificador o el resultado de otras limitaciones. Un estudio reciente [5] derivó el paisaje energético que proporciona una discriminación óptima entre los sustratos de ARNt en competencia y, por lo tanto, una decodificación óptima del ARNt. El paisaje óptimo es simétrico (ver imagen). El estudio muestra que el paisaje medido del ribosoma procariota es, de hecho, simétrico . Este modelo sugiere que los cambios conformacionales del ribosoma y del ARNt durante la decodificación son medios para obtener un decodificador de ARNt óptimo. El hecho de que tanto la recombinación homóloga como la decodificación del ARNt utilicen corrección conformacional sugiere que se trata de un mecanismo genérico que puede ser utilizado ampliamente por los sistemas de reconocimiento molecular.

El ribosoma utiliza la corrección conformacional para la decodificación del ARNt . principal : Las curvas muestran el paisaje de energía libre del reconocimiento de codones según lo sugerido por los experimentos. En las etapas que son sensibles a la identidad del codón, las vías de los ARNt correctos (verdes) e incorrectos (rojos) se dividen. La cinética de múltiples etapas incluye: Unión inicial y reconocimiento de codones: un complejo de factor de elongación (EF-Tu) y aminoacil-ARNt se une al ribosoma. El codón se reconoce al emparejarse con el anticodón y por interacción adicional con el "centro de decodificación" del ribosoma. Como resultado, los ARNt correctos (cognados) son más estables que los no cognados. Activación e hidrólisis de GTP: el reconocimiento de codones conduce a cambios conformacionales globales del ribosoma y el ARNt, que son diferentes para los ARNt cognados o no cognados y afectan la activación e hidrólisis de GTP por EF-Tu. El modelo de corrección conformacional explica estos cambios conformacionales como un medio para mejorar el reconocimiento del ARNt. recuadro : El paisaje adaptado simétrico implica que la relación entre las velocidades hacia adelante y hacia atrás se invierte entre los paisajes energéticos correctos e incorrectos. [5]

En otros sistemas biológicos

Reparación del daño causado por los rayos UV en humanos

Un estudio reciente muestra que los mecanismos de reparación del ADN humano utilizan la corrección conformacional. [11] La investigación se centró en la cuestión de cómo las proteínas de reparación del ADN escanean el genoma humano en busca de daños inducidos por la radiación UV durante el paso inicial de la reparación por escisión de nucleótidos (NER). Las mediciones detalladas de moléculas individuales revelaron cómo la proteína de unión al ADN dañada por la radiación UV (UV-DDB) humana realiza una búsqueda en 3D. Los autores descubrieron que "la UV-DDB examina los sitios del ADN en pasos discretos antes de formar dímeros UV-DDB inmóviles de larga duración ( DDB1 - DDB2 ) 2 en los sitios dañados. El análisis de las tasas de disociación de las moléculas de unión transitorias tanto en el ADN dañado como en el no dañado muestra múltiples tiempos de permanencia en tres órdenes de magnitud... Se cree que estos estados intermedios representan confórmeros UV-DDB discretos en la trayectoria hacia la detección estable del daño". Los autores concluyen a partir de sus mediciones cinéticas detalladas que la UV-DDB reconoce las lesiones utilizando un mecanismo de corrección conformacional a través de múltiples intermediarios.

Otros esquemas de reconocimiento

Relación con la corrección cinética

En el esquema de corrección cinética [12] [13] , se introduce un retraso temporal (equivalente a una etapa intermedia irreversible) durante la formación de los complejos correctos o incorrectos. Este retraso temporal reduce las tasas de producción de ambos complejos, pero mejora la fidelidad más allá del límite de equilibrio. La irreversibilidad del esquema requiere una fuente de energía. El retraso temporal en la corrección cinética es análogo a la diferencia espacial en la corrección conformacional. Sin embargo, la corrección conformacional puede ser un esquema de equilibrio que no consume energía.

Referencias

  1. ^ ab Savir Y, Tlusty T (mayo de 2007). Scalas E (ed.). "Corrección conformacional: el impacto de los cambios conformacionales en la especificidad del reconocimiento molecular". PLOS ONE . ​​2 (5): e468. Bibcode :2007PLoSO...2..468S. doi : 10.1371/journal.pone.0000468 . PMC  1868595 . PMID  17520027.
  2. ^ ab Savir Y, Tlusty T (2008). "Diseño óptimo de un reconocedor molecular: reconocimiento molecular como un problema de detección de señales bayesiano". IEEE J Sel Topics Signal Process . 2 (3): 390–399. arXiv : 1007.4527 . Código Bibliográfico :2008ISTSP...2..390S. doi :10.1109/JSTSP.2008.923859. S2CID  7210763.
  3. ^ abcd Savir Y, Tlusty T (noviembre de 2010). "Búsqueda de homología mediada por RecA como un sistema de detección de señales casi óptimo". Molecular Cell . 40 (3): 388–396. arXiv : 1011.4382 . doi :10.1016/j.molcel.2010.10.020. PMID  21070965. S2CID  1682936.
  4. ^ abc Rambo RP, Williams GJ, Tainer JA (noviembre de 2010). "Lograr fidelidad en la recombinación homóloga a pesar de la complejidad extrema: decisiones informadas mediante perfiles moleculares". Molecular Cell . 40 (3): 347–348. doi :10.1016/j.molcel.2010.10.032. PMC 3003302 . PMID  21070960. 
  5. ^ abc Savir Y, Tlusty T (abril de 2013). "El ribosoma como decodificador óptimo: una lección de reconocimiento molecular". Cell . 153 (2): 471–479. Bibcode :2013APS..MARY46006T. doi : 10.1016/j.cell.2013.03.032 . PMID  23582332.
  6. ^ Alon U (2008). "Journal Club". Nature . 453 (7196): 701. Código Bibliográfico :2008Natur.453..701A. doi : 10.1038/453701e . S2CID  29639642.
  7. ^ abc McBride JM, Eckmann JP, Tlusty T (noviembre de 2022). Echave J (ed.). "Teoría general de la unión específica: perspectivas a partir de un modelo genético-mecanoquímico de proteínas". Biología molecular y evolución . 39 (11): msac217. doi :10.1093/molbev/msac217. PMC 9641994 . PMID  36208205. 
  8. ^ Koshland DE (febrero de 1958). "Aplicación de una teoría de la especificidad enzimática a la síntesis de proteínas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 44 (2): 98–104. Bibcode :1958PNAS...44...98K. doi : 10.1073/pnas.44.2.98 . PMC 335371 . PMID  16590179. 
  9. ^ Chen Z, Yang H, Pavletich NP (mayo de 2008). "Mecanismo de recombinación homóloga a partir de las estructuras RecA-ssDNA/dsDNA". Nature . 453 (7194): 489–484. Bibcode :2008Natur.453..489C. doi :10.1038/nature06971. PMID  18497818. S2CID  4416531.
  10. ^ De Vlaminck I, van Loenhout MT, Zweifel L, den Blanken J, Hooning K, Hage S, et al. (junio de 2012). "Mecanismo de reconocimiento de homología en la recombinación de ADN a partir de experimentos de moléculas duales". Célula molecular . 46 (5): 616–624. doi : 10.1016/j.molcel.2012.03.029 . PMID  22560720.
  11. ^ Ghodke H, Wang H, Hsieh CL, Woldemeskel S, Watkins SC, Rapić-Otrin V, Van Houten B (mayo de 2014). "El análisis de una sola molécula revela que la proteína de unión al ADN dañada por los rayos UV (UV-DDB) humana dimeriza en el ADN a través de múltiples intermediarios cinéticos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 111 (18): E1862–E1871. Código Bibliográfico :2014PNAS..111E1862G. doi : 10.1073/pnas.1323856111 . PMC 4020048 . PMID  24760829. 
  12. ^ Hopfield JJ (octubre de 1974). "Corrección cinética: un nuevo mecanismo para reducir errores en procesos biosintéticos que requieren alta especificidad". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 71 (10): 4135–4139. Bibcode :1974PNAS...71.4135H. doi : 10.1073/pnas.71.10.4135 . PMC 434344 . PMID  4530290. 
  13. ^ Ninio J (1975). "Amplificación cinética de la discriminación enzimática". Biochimie . 57 (5): 587–595. doi :10.1016/S0300-9084(75)80139-8. PMID  1182215.

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