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ADN

Estructura de la doble hélice del ADN (ADN tipo B ). Los átomos de la estructura están codificados por colores según el elemento y las estructuras detalladas de dos pares de bases se muestran en la parte inferior derecha.
Diagrama simplificado

Ácido desoxirribonucleico ( / d ˈ ɒ k s ɪ ˌ r b nj ˌ k l ɪ k , - ˌ k l -/ ;[1] El ADN) es unpolímerocompuesto por dosde polinucleótidosque se enrollan una alrededor de la otra para formar unadoble hélice. El polímero llevagenéticaspara el desarrollo, funcionamiento, crecimiento yreproducciónde todoslos organismosy muchosvirus. El ADN yel ácido ribonucleico(ARN) sonácidos nucleicos. Junto conlas proteínas,los lípidosy los carbohidratos complejos (polisacáridos), los ácidos nucleicos son uno de los cuatro tipos principales demacromoléculasvidaconocidas.

Las dos cadenas de ADN se conocen como polinucleótidos, ya que están compuestas de unidades monoméricas más simples llamadas nucleótidos . [2] [3] Cada nucleótido está compuesto de una de las cuatro nucleobases que contienen nitrógeno ( citosina [C], guanina [G], adenina [A] o timina [T]), un azúcar llamado desoxirribosa y un grupo fosfato . Los nucleótidos están unidos entre sí en una cadena mediante enlaces covalentes (conocidos como enlace fosfodiéster ) entre el azúcar de un nucleótido y el fosfato del siguiente, lo que da como resultado una cadena principal alternada de azúcar-fosfato . Las bases nitrogenadas de las dos cadenas de polinucleótidos separadas están unidas entre sí, de acuerdo con las reglas de apareamiento de bases (A con T y C con G), con enlaces de hidrógeno para formar ADN bicatenario. Las bases nitrogenadas complementarias se dividen en dos grupos, las pirimidinas de anillo simple y las purinas de anillo doble . En el ADN, las pirimidinas son timina y citosina; las purinas son adenina y guanina.

Ambas hebras de ADN bicatenario almacenan la misma información biológica . Esta información se replica cuando las dos hebras se separan. Una gran parte del ADN (más del 98% para los humanos) es no codificante , lo que significa que estas secciones no sirven como patrones para las secuencias de proteínas . Las dos hebras de ADN discurren en direcciones opuestas entre sí y, por lo tanto, son antiparalelas . Unido a cada azúcar hay uno de los cuatro tipos de nucleobases (o bases ). Es la secuencia de estas cuatro nucleobases a lo largo de la cadena principal la que codifica la información genética. Las hebras de ARN se crean utilizando hebras de ADN como plantilla en un proceso llamado transcripción , donde las bases de ADN se intercambian por sus bases correspondientes excepto en el caso de la timina (T), por la que el ARN sustituye al uracilo (U). [4] Según el código genético , estas hebras de ARN especifican la secuencia de aminoácidos dentro de las proteínas en un proceso llamado traducción .

Dentro de las células eucariotas, el ADN se organiza en estructuras largas llamadas cromosomas . Antes de la división celular típica , estos cromosomas se duplican en el proceso de replicación del ADN, proporcionando un conjunto completo de cromosomas para cada célula hija. Los organismos eucariotas ( animales , plantas , hongos y protistas ) almacenan la mayor parte de su ADN dentro del núcleo celular como ADN nuclear , y algo en las mitocondrias como ADN mitocondrial o en los cloroplastos como ADN de cloroplasto . [5] En contraste, los procariotas ( bacterias y arqueas ) almacenan su ADN solo en el citoplasma , en cromosomas circulares . Dentro de los cromosomas eucariotas, las proteínas de la cromatina , como las histonas , compactan y organizan el ADN. Estas estructuras compactadoras guían las interacciones entre el ADN y otras proteínas, ayudando a controlar qué partes del ADN se transcriben.

Propiedades

Estructura química del ADN; los enlaces de hidrógeno se muestran como líneas de puntos. Cada extremo de la doble hélice tiene un fosfato 5' expuesto en una cadena y un grupo hidroxilo 3' expuesto (—OH) en la otra.

El ADN es un polímero largo hecho de unidades repetidas llamadas nucleótidos . [6] [7] La ​​estructura del ADN es dinámica a lo largo de su longitud, siendo capaz de enrollarse en bucles apretados y otras formas. [8] En todas las especies está compuesto de dos cadenas helicoidales, unidas entre sí por enlaces de hidrógeno . Ambas cadenas están enrolladas alrededor del mismo eje y tienen el mismo paso de 34 ångströms (3,4  nm ). El par de cadenas tiene un radio de 10 Å (1,0 nm). [9] Según otro estudio, cuando se midió en una solución diferente, la cadena de ADN midió 22-26 Å (2,2-2,6 nm) de ancho, y una unidad de nucleótido midió 3,3 Å (0,33 nm) de largo. [10] La densidad de flotación de la mayoría del ADN es de 1,7 g/cm 3 . [11]

El ADN no suele existir como una sola hebra, sino como un par de hebras que se mantienen firmemente unidas. [9] [12] Estas dos hebras largas se enrollan una alrededor de la otra, en forma de doble hélice . El nucleótido contiene tanto un segmento de la estructura principal de la molécula (que mantiene unida la cadena) como una nucleobase (que interactúa con la otra hebra de ADN en la hélice). Una nucleobase unida a un azúcar se llama nucleósido , y una base unida a un azúcar y a uno o más grupos fosfato se llama nucleótido . Un biopolímero que comprende múltiples nucleótidos unidos (como en el ADN) se llama polinucleótido . [13]

La estructura principal de la cadena de ADN está formada por grupos de fosfato y azúcar alternados . [14] El azúcar del ADN es la 2-desoxirribosa , que es un azúcar pentosa (de cinco carbonos ). Los azúcares están unidos por grupos de fosfato que forman enlaces fosfodiéster entre el tercer y quinto átomo de carbono de los anillos de azúcar adyacentes. Estos se conocen como carbonos del extremo 3' (tres extremos primos) y del extremo 5' (cinco extremos primos), utilizándose el símbolo primo para distinguir estos átomos de carbono de los de la base con la que la desoxirribosa forma un enlace glucosídico . [12]

Por lo tanto, cualquier cadena de ADN normalmente tiene un extremo en el que hay un grupo fosfato unido al carbono 5' de una ribosa (el fosforilo 5') y otro extremo en el que hay un grupo hidroxilo libre unido al carbono 3' de una ribosa (el hidroxilo 3'). La orientación de los carbonos 3' y 5' a lo largo de la cadena principal de azúcar-fosfato confiere direccionalidad (a veces llamada polaridad) a cada cadena de ADN. En una doble hélice de ácido nucleico , la dirección de los nucleótidos en una cadena es opuesta a su dirección en la otra cadena: las cadenas son antiparalelas . Se dice que los extremos asimétricos de las cadenas de ADN tienen una direccionalidad de cinco extremos primarios (5') y tres extremos primarios (3'), con el extremo 5' que tiene un grupo fosfato terminal y el extremo 3' un grupo hidroxilo terminal. Una diferencia importante entre el ADN y el ARN es el azúcar, ya que la 2-desoxirribosa en el ADN es reemplazada por el azúcar pentosa relacionado, la ribosa, en el ARN. [12]

Una sección de ADN. Las bases se encuentran horizontalmente entre las dos hebras en espiral [15] ( versión animada ).

La doble hélice del ADN se estabiliza principalmente por dos fuerzas: los enlaces de hidrógeno entre los nucleótidos y las interacciones de apilamiento de bases entre las nucleobases aromáticas . [16] Las cuatro bases que se encuentran en el ADN son adenina ( A ), citosina ( C ), guanina ( G ) y timina ( T ). Estas cuatro bases están unidas al fosfato de azúcar para formar el nucleótido completo, como se muestra para el monofosfato de adenosina . La adenina se empareja con la timina y la guanina se empareja con la citosina, formando pares de bases AT y GC . [17] [18]

Clasificación de nucleobases

Las nucleobases se clasifican en dos tipos: las purinas , A y G , que son compuestos heterocíclicos fusionados de cinco y seis miembros , y las pirimidinas , los anillos de seis miembros C y T. [12] Una quinta nucleobase pirimidínica, el uracilo ( U ), suele ocupar el lugar de la timina en el ARN y se diferencia de esta por carecer de un grupo metilo en su anillo. Además del ARN y el ADN, se han creado muchos análogos artificiales de ácidos nucleicos para estudiar las propiedades de los ácidos nucleicos o para su uso en biotecnología. [19]

Bases no canónicas

Las bases modificadas se encuentran en el ADN. La primera de ellas reconocida fue la 5-metilcitosina , que se encontró en el genoma de Mycobacterium tuberculosis en 1925. [20] La razón de la presencia de estas bases no canónicas en los virus bacterianos ( bacteriófagos ) es evitar las enzimas de restricción presentes en las bacterias. Este sistema enzimático actúa al menos en parte como un sistema inmunológico molecular que protege a las bacterias de la infección por virus. [21] Las modificaciones de las bases citosina y adenina, las bases del ADN más comunes y modificadas, desempeñan papeles vitales en el control epigenético de la expresión génica en plantas y animales. [22]

Se sabe que en el ADN existen varias bases no canónicas. [23] La mayoría de ellas son modificaciones de las bases canónicas más uracilo.

Surcos

Surcos mayor y menor del ADN. Este último es un sitio de unión para el colorante de tinción de Hoechst 33258.

Las hebras helicoidales gemelas forman la estructura principal del ADN. Se puede encontrar otra doble hélice trazando los espacios, o surcos, entre las hebras. Estos huecos son adyacentes a los pares de bases y pueden proporcionar un sitio de unión . Como las hebras no están ubicadas simétricamente entre sí, los surcos tienen un tamaño desigual. El surco mayor tiene 22 ångströms (2,2 nm) de ancho, mientras que el surco menor tiene 12 Å (1,2 nm) de ancho. [24] Debido al mayor ancho del surco mayor, los bordes de las bases son más accesibles en el surco mayor que en el surco menor. Como resultado, las proteínas como los factores de transcripción que pueden unirse a secuencias específicas en el ADN bicatenario generalmente hacen contacto con los lados de las bases expuestas en el surco mayor. [25] Esta situación varía en conformaciones inusuales de ADN dentro de la célula (ver abajo) , pero los surcos mayores y menores siempre se nombran para reflejar las diferencias de ancho que se verían si el ADN se torciera nuevamente a la forma B ordinaria .

Apareamiento de bases

Arriba, un par de bases GC con tres enlaces de hidrógeno . Abajo, un par de bases AT con dos enlaces de hidrógeno. Los enlaces de hidrógeno no covalentes entre los pares se muestran como líneas discontinuas.

En una doble hélice de ADN, cada tipo de nucleobase en una cadena se enlaza con solo un tipo de nucleobase en la otra cadena. Esto se llama apareamiento de bases complementarias . Las purinas forman enlaces de hidrógeno con las pirimidinas, con la adenina uniéndose solo a la timina en dos enlaces de hidrógeno, y la citosina uniéndose solo a la guanina en tres enlaces de hidrógeno. Esta disposición de dos nucleótidos que se unen a través de la doble hélice (de anillo de seis carbonos a anillo de seis carbonos) se llama par de bases Watson-Crick. El ADN con alto contenido de GC es más estable que el ADN con bajo contenido de GC . Un par de bases Hoogsteen (unión de hidrógeno del anillo de 6 carbonos al anillo de 5 carbonos) es una variación rara del apareamiento de bases. [26] Como los enlaces de hidrógeno no son covalentes , se pueden romper y volver a unir con relativa facilidad. Las dos cadenas de ADN en una doble hélice se pueden separar como una cremallera, ya sea por una fuerza mecánica o alta temperatura . [27] Como resultado de esta complementariedad de pares de bases, toda la información de la secuencia bicatenaria de una hélice de ADN se duplica en cada hebra, lo que es vital para la replicación del ADN. Esta interacción reversible y específica entre pares de bases complementarios es fundamental para todas las funciones del ADN en los organismos. [7]

ssDNA frente a dsDNA

La mayoría de las moléculas de ADN son en realidad dos cadenas de polímeros unidas entre sí de forma helicoidal mediante enlaces no covalentes; esta estructura de doble cadena (dsADN) se mantiene en gran medida gracias a las interacciones de apilamiento de bases intracatenarias, que son más fuertes para las pilas G,C . Las dos cadenas pueden separarse (un proceso conocido como fusión) para formar dos moléculas de ADN monocatenario (ssADN). La fusión se produce a altas temperaturas, bajo nivel de sal y pH alto (el pH bajo también funde el ADN, pero como el ADN es inestable debido a la despurinización ácida, rara vez se utiliza un pH bajo).

La estabilidad de la forma dsADN depende no solo del contenido de GC (porcentaje de pares de bases G,C ), sino también de la secuencia (ya que el apilamiento es específico de la secuencia) y también de la longitud (las moléculas más largas son más estables). La estabilidad se puede medir de varias maneras; una forma común es la temperatura de fusión (también llamada valor Tm ), que es la temperatura a la que el 50% de las moléculas de doble cadena se convierten en moléculas de cadena sencilla; la temperatura de fusión depende de la fuerza iónica y la concentración de ADN. Como resultado, es tanto el porcentaje de pares de bases GC como la longitud total de una doble hélice de ADN lo que determina la fuerza de la asociación entre las dos cadenas de ADN. Las hélices de ADN largas con un alto contenido de GC tienen cadenas que interactúan más fuertemente, mientras que las hélices cortas con un alto contenido de AT tienen cadenas que interactúan más débilmente. [28] En biología, las partes de la doble hélice del ADN que necesitan separarse fácilmente, como la caja TATAAT Pribnow en algunos promotores , tienden a tener un alto contenido de AT , lo que hace que las hebras sean más fáciles de separar. [29]

En el laboratorio, la fuerza de esta interacción se puede medir hallando la temperatura de fusión Tm necesaria para romper la mitad de los enlaces de hidrógeno. Cuando todos los pares de bases de una doble hélice de ADN se funden, las cadenas se separan y existen en solución como dos moléculas completamente independientes. Estas moléculas de ADN monocatenario no tienen una única forma común, pero algunas conformaciones son más estables que otras. [30]

Cantidad

Cariograma esquemático de un ser humano. Muestra 22 cromosomas homólogos , tanto la versión femenina (XX) como la masculina (XY) del cromosoma sexual (abajo a la derecha), así como el genoma mitocondrial (a escala en la parte inferior izquierda). La escala azul a la izquierda de cada par de cromosomas (y del genoma mitocondrial) muestra su longitud en términos de millones de pares de bases de ADN .

En los seres humanos, el genoma nuclear diploide femenino total por célula se extiende por 6,37 pares de gigabases (Gbp), tiene 208,23 cm de largo y pesa 6,51 picogramos (pg). [31] Los valores masculinos son 6,27 Gbp, 205,00 cm, 6,41 pg. [31] Cada polímero de ADN puede contener cientos de millones de nucleótidos, como en el cromosoma 1. El cromosoma 1 es el cromosoma humano más grande con aproximadamente 220 millones de pares de bases , y sería85 mm de largo si se endereza. [32]

En los eucariotas , además del ADN nuclear , también existe el ADN mitocondrial (ADNmt), que codifica ciertas proteínas utilizadas por las mitocondrias. El ADNmt suele ser relativamente pequeño en comparación con el ADN nuclear. Por ejemplo, el ADN mitocondrial humano forma moléculas circulares cerradas, cada una de las cuales contiene 16.569 [33] [34] pares de bases de ADN, [35] y cada una de estas moléculas contiene normalmente un conjunto completo de genes mitocondriales. Cada mitocondria humana contiene, en promedio, aproximadamente 5 moléculas de ADNmt. [35] Cada célula humana contiene aproximadamente 100 mitocondrias, lo que da un número total de moléculas de ADNmt por célula humana de aproximadamente 500. [35] Sin embargo, la cantidad de mitocondrias por célula también varía según el tipo de célula, y un óvulo puede contener 100.000 mitocondrias, que corresponden a hasta 1.500.000 copias del genoma mitocondrial (que constituye hasta el 90% del ADN de la célula). [36]

Sentido y antisentido

Una secuencia de ADN se denomina secuencia "sentido" si es la misma que la de una copia de ARN mensajero que se traduce en proteína. [37] La ​​secuencia en la cadena opuesta se denomina secuencia "antisentido". Tanto las secuencias sentido como las antisentido pueden existir en diferentes partes de la misma cadena de ADN (es decir, ambas cadenas pueden contener secuencias sentido y antisentido). Tanto en procariotas como en eucariotas, se producen secuencias de ARN antisentido, pero las funciones de estos ARN no están del todo claras. [38] Una propuesta es que los ARN antisentido están involucrados en la regulación de la expresión génica a través del apareamiento de bases ARN-ARN. [39]

Unas pocas secuencias de ADN en procariotas y eucariotas, y más en plásmidos y virus , difuminan la distinción entre cadenas con sentido y antisentido al tener genes superpuestos . [40] En estos casos, algunas secuencias de ADN cumplen una doble función, codificando una proteína cuando se leen a lo largo de una cadena, y una segunda proteína cuando se leen en la dirección opuesta a lo largo de la otra cadena. En las bacterias , esta superposición puede estar involucrada en la regulación de la transcripción genética, [41] mientras que en los virus, los genes superpuestos aumentan la cantidad de información que se puede codificar dentro del pequeño genoma viral. [42]

Superenrollamiento

El ADN se puede torcer como una cuerda en un proceso llamado superenrollamiento del ADN . Con el ADN en su estado "relajado", una hebra generalmente rodea el eje de la doble hélice una vez cada 10,4 pares de bases, pero si el ADN está torcido, las hebras se enrollan más apretadamente o más flojamente. [43] Si el ADN se tuerce en la dirección de la hélice, esto es superenrollamiento positivo, y las bases se mantienen más juntas. Si se tuercen en la dirección opuesta, esto es superenrollamiento negativo, y las bases se separan más fácilmente. En la naturaleza, la mayoría del ADN tiene un ligero superenrollamiento negativo que es introducido por enzimas llamadas topoisomerasas . [44] Estas enzimas también son necesarias para aliviar las tensiones de torsión introducidas en las hebras de ADN durante procesos como la transcripción y la replicación del ADN . [45]

Estructuras alternativas del ADN

De izquierda a derecha, las estructuras del ADN A , B y Z

El ADN existe en muchas conformaciones posibles que incluyen las formas A-ADN , B-ADN y Z-ADN , aunque solo el B-ADN y el Z-ADN se han observado directamente en organismos funcionales. [14] La conformación que adopta el ADN depende del nivel de hidratación, la secuencia de ADN, la cantidad y dirección del superenrollamiento, las modificaciones químicas de las bases, el tipo y la concentración de iones metálicos y la presencia de poliaminas en solución. [46]

Los primeros informes publicados de patrones de difracción de rayos X de A-ADN (y también de B-ADN) utilizaron análisis basados ​​en funciones de Patterson que proporcionaron solo una cantidad limitada de información estructural para fibras orientadas de ADN. [47] [48] Wilkins et al. propusieron un análisis alternativo en 1953 para los patrones de dispersión por difracción de rayos X de B-ADN in vivo de fibras de ADN altamente hidratadas en términos de cuadrados de funciones de Bessel . [49] En la misma revista, James Watson y Francis Crick presentaron su análisis de modelado molecular de los patrones de difracción de rayos X de ADN para sugerir que la estructura era una doble hélice. [9]

Aunque la forma B-ADN es la más común en las condiciones que se dan en las células, [50] no es una conformación bien definida sino una familia de conformaciones de ADN relacionadas [51] que se dan en los altos niveles de hidratación presentes en las células. Sus correspondientes patrones de difracción y dispersión de rayos X son característicos de los paracristales moleculares con un grado significativo de desorden. [52] [53]

En comparación con el ADN-B, la forma del ADN-A es una espiral dextrógira más ancha , con un surco menor ancho y poco profundo y un surco mayor más estrecho y profundo. La forma A se produce en condiciones no fisiológicas en muestras de ADN parcialmente deshidratadas, mientras que en la célula puede producirse en apareamientos híbridos de cadenas de ADN y ARN, y en complejos enzima-ADN. [54] [55] Los segmentos de ADN en los que las bases han sido modificadas químicamente por metilación pueden sufrir un cambio mayor en la conformación y adoptar la forma Z. Aquí, las cadenas giran alrededor del eje helicoidal en una espiral levógira, lo opuesto a la forma B más común. [56] Estas estructuras inusuales pueden ser reconocidas por proteínas de unión específicas del ADN-Z y pueden estar involucradas en la regulación de la transcripción. [57]

Química alternativa del ADN

Durante muchos años, los exobiólogos han propuesto la existencia de una biosfera de sombra , una biosfera microbiana postulada de la Tierra que utiliza procesos bioquímicos y moleculares radicalmente diferentes a los de la vida actualmente conocida. Una de las propuestas fue la existencia de formas de vida que utilizan arsénico en lugar de fósforo en el ADN . En 2010 se anunció un informe sobre la posibilidad en la bacteria GFAJ-1 , [58] [59] aunque la investigación fue cuestionada, [59] [60] y la evidencia sugiere que la bacteria previene activamente la incorporación de arsénico en la cadena principal del ADN y otras biomoléculas. [61]

Estructuras cuádruplex

Cuádruplex de ADN formado por repeticiones de telómeros . La conformación en bucle de la estructura principal del ADN es muy diferente de la típica hélice del ADN. Las esferas verdes del centro representan iones de potasio. [62]

En los extremos de los cromosomas lineales hay regiones especializadas de ADN llamadas telómeros . La función principal de estas regiones es permitir que la célula replique los extremos de los cromosomas utilizando la enzima telomerasa , ya que las enzimas que normalmente replican el ADN no pueden copiar los extremos 3' de los cromosomas. [63] Estas tapas cromosómicas especializadas también ayudan a proteger los extremos del ADN y evitan que los sistemas de reparación del ADN en la célula los traten como un daño que debe corregirse. [64] En las células humanas , los telómeros suelen ser longitudes de ADN monocatenario que contienen varios miles de repeticiones de una secuencia TTAGGG simple. [65]

Estas secuencias ricas en guanina pueden estabilizar los extremos de los cromosomas al formar estructuras de conjuntos apilados de unidades de cuatro bases, en lugar de los pares de bases habituales que se encuentran en otras moléculas de ADN. Aquí, cuatro bases de guanina, conocidas como tétrada de guanina , forman una placa plana. Estas unidades planas de cuatro bases luego se apilan una sobre otra para formar una estructura estable de G-quadruplex . [66] Estas estructuras se estabilizan mediante enlaces de hidrógeno entre los bordes de las bases y la quelación de un ion metálico en el centro de cada unidad de cuatro bases. [67] También se pueden formar otras estructuras, con el conjunto central de cuatro bases provenientes de una sola hebra doblada alrededor de las bases, o de varias hebras paralelas diferentes, cada una contribuyendo con una base a la estructura central.

Además de estas estructuras apiladas, los telómeros también forman grandes estructuras en forma de bucle llamadas bucles teloméricos o bucles T. En estos bucles, el ADN monocatenario se enrolla en un largo círculo estabilizado por proteínas que se unen a los telómeros. [68] En el extremo del bucle T, el ADN monocatenario del telómero se mantiene en una región de ADN bicatenario por la hebra del telómero, lo que altera la doble hélice del ADN y el apareamiento de bases con una de las dos hebras. Esta estructura de triple hebra se denomina bucle de desplazamiento o bucle D. [66]

ADN ramificado

El ADN ramificado puede formar redes que contienen múltiples ramificaciones.

En el ADN, el deshilachado se produce cuando existen regiones no complementarias al final de una doble cadena de ADN que, por lo demás, sería complementaria. Sin embargo, el ADN ramificado puede producirse si se introduce una tercera cadena de ADN que contenga regiones adyacentes capaces de hibridar con las regiones deshilachadas de la doble cadena preexistente. Aunque el ejemplo más simple de ADN ramificado implica solo tres cadenas de ADN, también son posibles complejos que implican cadenas adicionales y múltiples ramificaciones. [69] El ADN ramificado se puede utilizar en nanotecnología para construir formas geométricas; consulte la sección sobre usos en tecnología a continuación.

Bases artificiales

Se han sintetizado varias nucleobases artificiales y se han incorporado con éxito en el análogo de ADN de ocho bases llamado ADN Hachimoji . Bautizadas como S, B, P y Z, estas bases artificiales son capaces de unirse entre sí de una manera predecible (S–B y P–Z), mantener la estructura de doble hélice del ADN y transcribirse en ARN. Su existencia podría verse como una indicación de que no hay nada especial en las cuatro nucleobases naturales que evolucionaron en la Tierra. [70] [71] Por otro lado, el ADN está estrechamente relacionado con el ARN , que no solo actúa como una transcripción del ADN, sino que también realiza como máquinas moleculares muchas tareas en las células. Para este propósito, tiene que plegarse en una estructura. Se ha demostrado que para permitir la creación de todas las estructuras posibles se requieren al menos cuatro bases para el ARN correspondiente , [72] aunque también es posible un número mayor, pero esto iría en contra del principio natural del mínimo esfuerzo .

Acidez

Los grupos fosfato del ADN le confieren propiedades ácidas similares a las del ácido fosfórico y puede considerarse un ácido fuerte . Se ionizará por completo a un pH celular normal, liberando protones que dejan cargas negativas en los grupos fosfato. Estas cargas negativas protegen al ADN de la descomposición por hidrólisis al repeler a los nucleófilos que podrían hidrolizarlo. [73]

Aspecto macroscópico

ADN impuro extraído de una naranja

El ADN puro extraído de las células forma grumos blancos y fibrosos. [74]

Modificaciones químicas y empaquetamiento alterado del ADN

Modificaciones de bases y empaquetamiento del ADN

Estructura de la citosina con y sin el grupo 5-metilo. La desaminación convierte la 5-metilcitosina en timina.

La expresión de los genes está influenciada por la forma en que el ADN está empaquetado en los cromosomas, en una estructura llamada cromatina . Las modificaciones de bases pueden estar involucradas en el empaquetamiento, con regiones que tienen baja o nula expresión génica que generalmente contienen altos niveles de metilación de bases de citosina . El empaquetamiento del ADN y su influencia en la expresión génica también puede ocurrir por modificaciones covalentes del núcleo de la proteína histona alrededor del cual el ADN está envuelto en la estructura de la cromatina o bien por remodelación llevada a cabo por complejos de remodelación de la cromatina (ver Remodelación de la cromatina ). Existe, además, una comunicación cruzada entre la metilación del ADN y la modificación de las histonas, por lo que pueden afectar de manera coordinada a la cromatina y la expresión génica. [75]

Por ejemplo, la metilación de la citosina produce 5-metilcitosina , que es importante para la inactivación del cromosoma X. [76] El nivel promedio de metilación varía entre organismos: el gusano Caenorhabditis elegans carece de metilación de citosina, mientras que los vertebrados tienen niveles más altos, con hasta un 1% de su ADN que contiene 5-metilcitosina. [77] A pesar de la importancia de la 5-metilcitosina, puede desaminarse para dejar una base de timina, por lo que las citosinas metiladas son particularmente propensas a las mutaciones . [78] Otras modificaciones de bases incluyen la metilación de adenina en bacterias, la presencia de 5-hidroximetilcitosina en el cerebro , [79] y la glicosilación de uracilo para producir la "base J" en los cinetoplastos . [80] [81]

Daño

Un aducto covalente entre una forma metabólicamente activada de benzo[ a ]pireno , el principal mutágeno del humo del tabaco , y el ADN [82]

El ADN puede resultar dañado por muchos tipos de mutágenos , que modifican la secuencia del ADN . Los mutágenos incluyen agentes oxidantes , agentes alquilantes y también radiación electromagnética de alta energía como la luz ultravioleta y los rayos X. El tipo de daño al ADN producido depende del tipo de mutágeno. Por ejemplo, la luz ultravioleta puede dañar el ADN produciendo dímeros de timina , que son enlaces cruzados entre bases de pirimidina. [83] Por otro lado, oxidantes como los radicales libres o el peróxido de hidrógeno producen múltiples formas de daño, incluidas modificaciones de bases, en particular de guanosina, y roturas de doble cadena. [84] Una célula humana típica contiene alrededor de 150.000 bases que han sufrido daño oxidativo. [85] De estas lesiones oxidativas, las más peligrosas son las roturas de doble cadena, ya que son difíciles de reparar y pueden producir mutaciones puntuales , inserciones , deleciones de la secuencia del ADN y translocaciones cromosómicas . [86] Estas mutaciones pueden provocar cáncer . Debido a los límites inherentes de los mecanismos de reparación del ADN, si los humanos vivieran lo suficiente, todos acabarían desarrollando cáncer. [87] [88] Los daños en el ADN que se producen de forma natural , debido a los procesos celulares normales que producen especies reactivas de oxígeno, las actividades hidrolíticas del agua celular, etc., también ocurren con frecuencia. Aunque la mayoría de estos daños se reparan, en cualquier célula puede quedar algo de daño en el ADN a pesar de la acción de los procesos de reparación. Estos daños restantes en el ADN se acumulan con la edad en los tejidos postmitóticos de los mamíferos. Esta acumulación parece ser una causa subyacente importante del envejecimiento. [89] [90] [91]

Muchos mutágenos encajan en el espacio entre dos pares de bases adyacentes, esto se llama intercalación . La mayoría de los intercaladores son moléculas aromáticas y planares; los ejemplos incluyen bromuro de etidio , acridinas , daunomicina y doxorrubicina . Para que un intercalador encaje entre pares de bases, las bases deben separarse, distorsionando las cadenas de ADN al desenrollar la doble hélice. Esto inhibe tanto la transcripción como la replicación del ADN, causando toxicidad y mutaciones. [92] Como resultado, los intercaladores de ADN pueden ser carcinógenos y, en el caso de la talidomida, un teratógeno . [93] Otros, como el epóxido de benzo[ a ]pirenodiol y la aflatoxina, forman aductos de ADN que inducen errores en la replicación. [94] Sin embargo, debido a su capacidad para inhibir la transcripción y replicación del ADN, también se utilizan otras toxinas similares en quimioterapia para inhibir las células cancerosas de crecimiento rápido . [95]

Funciones biológicas

Ubicación del ADN nuclear eucariota dentro de los cromosomas

El ADN generalmente se presenta como cromosomas lineales en eucariotas y cromosomas circulares en procariotas . El conjunto de cromosomas en una célula constituye su genoma ; el genoma humano tiene aproximadamente 3 mil millones de pares de bases de ADN organizados en 46 cromosomas. [96] La información transportada por el ADN se mantiene en la secuencia de piezas de ADN llamadas genes . La transmisión de información genética en los genes se logra mediante el apareamiento de bases complementarias. Por ejemplo, en la transcripción, cuando una célula usa la información en un gen, la secuencia de ADN se copia en una secuencia de ARN complementaria a través de la atracción entre el ADN y los nucleótidos de ARN correctos. Por lo general, esta copia de ARN se usa luego para hacer una secuencia de proteína coincidente en un proceso llamado traducción , que depende de la misma interacción entre los nucleótidos de ARN. De manera alternativa, una célula puede copiar su información genética en un proceso llamado replicación de ADN . Los detalles de estas funciones se tratan en otros artículos; aquí el enfoque está en las interacciones entre el ADN y otras moléculas que median la función del genoma.

Genes y genomas

El ADN genómico se empaqueta de forma compacta y ordenada en el proceso llamado condensación del ADN , para adaptarse a los pequeños volúmenes disponibles de la célula. En los eucariotas, el ADN se encuentra en el núcleo celular , con pequeñas cantidades en las mitocondrias y los cloroplastos . En los procariotas, el ADN se mantiene dentro de un cuerpo de forma irregular en el citoplasma llamado nucleoide . [97] La ​​información genética de un genoma se mantiene dentro de los genes, y el conjunto completo de esta información en un organismo se llama genotipo . Un gen es una unidad de herencia y es una región de ADN que influye en una característica particular de un organismo. Los genes contienen un marco de lectura abierto que se puede transcribir y secuencias reguladoras como promotores y potenciadores , que controlan la transcripción del marco de lectura abierto.

En muchas especies , sólo una pequeña fracción de la secuencia total del genoma codifica proteínas. Por ejemplo, sólo alrededor del 1,5% del genoma humano consiste en exones codificadores de proteínas, y más del 50% del ADN humano consiste en secuencias repetitivas no codificantes . [98] Las razones de la presencia de tanto ADN no codificante en los genomas eucariotas y las extraordinarias diferencias en el tamaño del genoma , o valor C , entre especies, representan un rompecabezas de larga data conocido como el " enigma del valor C ". [99] Sin embargo, algunas secuencias de ADN que no codifican proteínas aún pueden codificar moléculas de ARN no codificantes funcionales , que están involucradas en la regulación de la expresión génica . [100]

La ARN polimerasa T7 (azul) produce un ARNm (verde) a partir de una plantilla de ADN (naranja) [101]

Algunas secuencias de ADN no codificante desempeñan funciones estructurales en los cromosomas. Los telómeros y centrómeros suelen contener pocos genes, pero son importantes para la función y la estabilidad de los cromosomas. [64] [102] Una forma abundante de ADN no codificante en los seres humanos son los pseudogenes , que son copias de genes que han sido desactivados por mutación. [103] Estas secuencias suelen ser simplemente fósiles moleculares , aunque ocasionalmente pueden servir como material genético en bruto para la creación de nuevos genes a través del proceso de duplicación y divergencia genética . [104]

Transcripción y traducción

Un gen es una secuencia de ADN que contiene información genética y puede influir en el fenotipo de un organismo. Dentro de un gen, la secuencia de bases a lo largo de una cadena de ADN define una secuencia de ARN mensajero , que a su vez define una o más secuencias de proteínas. La relación entre las secuencias de nucleótidos de los genes y las secuencias de aminoácidos de las proteínas está determinada por las reglas de traducción , conocidas colectivamente como el código genético . El código genético consta de "palabras" de tres letras llamadas codones formadas a partir de una secuencia de tres nucleótidos (por ejemplo, ACT, CAG, TTT).

En la transcripción, los codones de un gen se copian en ARN mensajero por la ARN polimerasa . Esta copia de ARN luego es decodificada por un ribosoma que lee la secuencia de ARN mediante el apareamiento de bases del ARN mensajero con el ARN de transferencia , que transporta aminoácidos. Dado que hay 4 bases en combinaciones de 3 letras, hay 64 codones posibles (4 combinaciones de 3  ). Estos codifican los veinte aminoácidos estándar , lo que da a la mayoría de los aminoácidos más de un codón posible. También hay tres codones de "parada" o "sin sentido" que significan el final de la región codificante; estos son los codones TAG, TAA y TGA (UAG, UAA y UGA en el ARNm).

Replicación

Replicación del ADN: la doble hélice se desenrolla mediante una helicasa y una topoisomerasa. A continuación , una ADN polimerasa produce la copia de la cadena líder . Otra ADN polimerasa se une a la cadena rezagada . Esta enzima crea segmentos discontinuos (llamados fragmentos de Okazaki ) antes de que la ADN ligasa los una.

La división celular es esencial para que un organismo crezca, pero, cuando una célula se divide, debe replicar el ADN en su genoma para que las dos células hijas tengan la misma información genética que su progenitora. La estructura bicatenaria del ADN proporciona un mecanismo simple para la replicación del ADN . Aquí, las dos hebras se separan y luego la secuencia de ADN complementaria de cada hebra es recreada por una enzima llamada ADN polimerasa . Esta enzima crea la hebra complementaria al encontrar la base correcta a través del apareamiento de bases complementarias y unirla a la hebra original. Como las ADN polimerasas solo pueden extender una hebra de ADN en una dirección de 5' a 3', se utilizan diferentes mecanismos para copiar las hebras antiparalelas de la doble hélice. [105] De esta manera, la base en la hebra antigua dicta qué base aparece en la nueva hebra, y la célula termina con una copia perfecta de su ADN.

Ácidos nucleicos extracelulares

El ADN extracelular desnudo (eDNA), la mayor parte del cual se libera por la muerte celular, es casi omnipresente en el medio ambiente. Su concentración en el suelo puede ser tan alta como 2 μg/L, y su concentración en ambientes acuáticos naturales puede ser tan alta como 88 μg/L. [106] Se han propuesto varias funciones posibles para el eDNA: puede estar involucrado en la transferencia horizontal de genes ; [107] puede proporcionar nutrientes; [108] y puede actuar como un amortiguador para reclutar o titular iones o antibióticos. [109] El ADN extracelular actúa como un componente funcional de la matriz extracelular en las biopelículas de varias especies bacterianas. Puede actuar como un factor de reconocimiento para regular la adhesión y dispersión de tipos de células específicos en la biopelícula; [110] puede contribuir a la formación de la biopelícula; [111] y puede contribuir a la fuerza física de la biopelícula y la resistencia al estrés biológico. [112]

El ADN fetal libre de células se encuentra en la sangre de la madre y se puede secuenciar para determinar una gran cantidad de información sobre el feto en desarrollo. [113]

Bajo el nombre de ADN ambiental, el eDNA se ha utilizado cada vez más en las ciencias naturales como herramienta de estudio para la ecología , el seguimiento de los movimientos y la presencia de especies en el agua, el aire o la tierra y la evaluación de la biodiversidad de una zona. [114] [115]

Trampas extracelulares de neutrófilos

Las trampas extracelulares de neutrófilos (NET) son redes de fibras extracelulares, compuestas principalmente de ADN, que permiten a los neutrófilos , un tipo de glóbulo blanco, matar patógenos extracelulares mientras minimizan el daño a las células huésped.

Interacciones con proteínas

Todas las funciones del ADN dependen de interacciones con proteínas. Estas interacciones pueden ser inespecíficas o la proteína puede unirse específicamente a una única secuencia de ADN. Las enzimas también pueden unirse al ADN y, entre ellas, las polimerasas que copian la secuencia de bases del ADN en la transcripción y replicación del ADN son particularmente importantes.

Proteínas de unión al ADN

Interacción del ADN (en naranja) con las histonas (en azul). Los aminoácidos básicos de estas proteínas se unen a los grupos fosfato ácidos del ADN.

Las proteínas estructurales que se unen al ADN son ejemplos bien conocidos de interacciones no específicas entre ADN y proteína. Dentro de los cromosomas, el ADN se mantiene en complejos con proteínas estructurales. Estas proteínas organizan el ADN en una estructura compacta llamada cromatina . En los eucariotas, esta estructura implica la unión del ADN a un complejo de pequeñas proteínas básicas llamadas histonas , mientras que en los procariotas intervienen múltiples tipos de proteínas. [116] [117] Las histonas forman un complejo en forma de disco llamado nucleosoma , que contiene dos vueltas completas de ADN bicatenario envuelto alrededor de su superficie. Estas interacciones no específicas se forman a través de residuos básicos en las histonas, que forman enlaces iónicos con la cadena principal de azúcar-fosfato ácida del ADN y, por tanto, son en gran medida independientes de la secuencia de bases. [118] Las modificaciones químicas de estos residuos de aminoácidos básicos incluyen la metilación , la fosforilación y la acetilación . [119] Estos cambios químicos alteran la fuerza de la interacción entre el ADN y las histonas, haciendo que el ADN sea más o menos accesible a los factores de transcripción y cambiando la tasa de transcripción. [120] Otras proteínas de unión al ADN no específicas en la cromatina incluyen las proteínas del grupo de alta movilidad, que se unen al ADN doblado o distorsionado. [121] Estas proteínas son importantes para doblar conjuntos de nucleosomas y organizarlos en las estructuras más grandes que forman los cromosomas. [122]

Un grupo distinto de proteínas de unión al ADN son las proteínas de unión al ADN que se unen específicamente al ADN monocatenario. En los seres humanos, la proteína de replicación A es el miembro mejor comprendido de esta familia y se utiliza en procesos en los que se separa la doble hélice, incluida la replicación, la recombinación y la reparación del ADN. [123] Estas proteínas de unión parecen estabilizar el ADN monocatenario y protegerlo de la formación de bucles de tallo o de la degradación por nucleasas .

El factor de transcripción hélice-giro-hélice del represor lambda unido a su ADN objetivo [124]

Por el contrario, otras proteínas han evolucionado para unirse a secuencias de ADN particulares. Las más estudiadas de ellas son los diversos factores de transcripción , que son proteínas que regulan la transcripción. Cada factor de transcripción se une a un conjunto particular de secuencias de ADN y activa o inhibe la transcripción de genes que tienen estas secuencias cerca de sus promotores. Los factores de transcripción hacen esto de dos maneras. En primer lugar, pueden unirse a la ARN polimerasa responsable de la transcripción, ya sea directamente o a través de otras proteínas mediadoras; esto ubica la polimerasa en el promotor y le permite comenzar la transcripción. [125] Alternativamente, los factores de transcripción pueden unirse a enzimas que modifican las histonas en el promotor. Esto cambia la accesibilidad de la plantilla de ADN a la polimerasa. [126]

Como estos objetivos de ADN pueden estar presentes en todo el genoma de un organismo, los cambios en la actividad de un tipo de factor de transcripción pueden afectar a miles de genes. [127] En consecuencia, estas proteínas suelen ser los objetivos de los procesos de transducción de señales que controlan las respuestas a los cambios ambientales o la diferenciación y el desarrollo celular . La especificidad de las interacciones de estos factores de transcripción con el ADN proviene de que las proteínas hacen múltiples contactos con los bordes de las bases del ADN, lo que les permite "leer" la secuencia del ADN. La mayoría de estas interacciones de bases se realizan en el surco mayor, donde las bases son más accesibles. [25]

Enzimas modificadoras del ADN

Nucleasas y ligasas

La enzima de restricción EcoRV (verde) en un complejo con su sustrato ADN [128]

Las nucleasas son enzimas que cortan las cadenas de ADN al catalizar la hidrólisis de los enlaces fosfodiéster . Las nucleasas que hidrolizan los nucleótidos de los extremos de las cadenas de ADN se denominan exonucleasas , mientras que las endonucleasas cortan dentro de las cadenas. Las nucleasas más utilizadas en biología molecular son las endonucleasas de restricción , que cortan el ADN en secuencias específicas. Por ejemplo, la enzima EcoRV que se muestra a la izquierda reconoce la secuencia de 6 bases 5′-GATATC-3′ y realiza un corte en la línea horizontal. En la naturaleza, estas enzimas protegen a las bacterias contra la infección por fagos al digerir el ADN del fago cuando ingresa a la célula bacteriana, actuando como parte del sistema de modificación de restricción . [129] En tecnología, estas nucleasas específicas de secuencia se utilizan en la clonación molecular y la huella genética del ADN .

Las enzimas llamadas ligasas de ADN pueden volver a unir las cadenas de ADN cortadas o rotas. [130] Las ligasas son particularmente importantes en la replicación de la cadena rezagada de ADN, ya que unen los segmentos cortos de ADN producidos en la horquilla de replicación para formar una copia completa de la plantilla de ADN. También se utilizan en la reparación del ADN y la recombinación genética . [130]

Topoisomerasas y helicasas

Las topoisomerasas son enzimas con actividad tanto de nucleasa como de ligasa. Estas proteínas modifican la cantidad de superenrollamiento del ADN. Algunas de estas enzimas funcionan cortando la hélice del ADN y permitiendo que una sección rote, reduciendo así su nivel de superenrollamiento; la enzima luego sella la rotura del ADN. [44] Otros tipos de estas enzimas son capaces de cortar una hélice del ADN y luego pasar una segunda hebra de ADN a través de esta rotura, antes de volver a unir la hélice. [131] Las topoisomerasas son necesarias para muchos procesos que involucran al ADN, como la replicación y la transcripción del ADN. [45]

Las helicasas son proteínas que son un tipo de motor molecular . Utilizan la energía química de los trifosfatos de nucleósidos , predominantemente trifosfato de adenosina (ATP), para romper los enlaces de hidrógeno entre las bases y desenrollar la doble hélice del ADN en cadenas simples. [132] Estas enzimas son esenciales para la mayoría de los procesos en los que las enzimas necesitan acceder a las bases del ADN.

Polimerasas

Las polimerasas son enzimas que sintetizan cadenas de polinucleótidos a partir de trifosfatos de nucleósidos . La secuencia de sus productos se crea en función de las cadenas de polinucleótidos existentes, que se denominan plantillas . Estas enzimas funcionan añadiendo repetidamente un nucleótido al grupo hidroxilo 3′ al final de la cadena de polinucleótidos en crecimiento. Como consecuencia, todas las polimerasas funcionan en una dirección de 5′ a 3′. [133] En el sitio activo de estas enzimas, el trifosfato de nucleósido entrante se aparea con la plantilla: esto permite a las polimerasas sintetizar con precisión la cadena complementaria de su plantilla. Las polimerasas se clasifican según el tipo de plantilla que utilizan.

En la replicación del ADN, las ADN polimerasas dependientes del ADN hacen copias de las cadenas de polinucleótidos del ADN. Para preservar la información biológica, es esencial que la secuencia de bases en cada copia sea precisamente complementaria a la secuencia de bases en la cadena molde. Muchas ADN polimerasas tienen una actividad de corrección de errores . Aquí, la polimerasa reconoce los errores ocasionales en la reacción de síntesis por la falta de apareamiento de bases entre los nucleótidos desapareados. Si se detecta un desapareamiento, se activa una actividad de exonucleasa 3' a 5' y se elimina la base incorrecta. [134] En la mayoría de los organismos, las ADN polimerasas funcionan en un gran complejo llamado replisoma que contiene múltiples subunidades accesorias, como la abrazadera de ADN o las helicasas . [135]

Las polimerasas de ADN dependientes de ARN son una clase especializada de polimerasas que copian la secuencia de una cadena de ARN en ADN. Incluyen la transcriptasa inversa , que es una enzima viral involucrada en la infección de células por retrovirus , y la telomerasa , que es necesaria para la replicación de los telómeros. [63] [136] Por ejemplo, la transcriptasa inversa del VIH es una enzima para la replicación del virus del SIDA. [136] La telomerasa es una polimerasa inusual porque contiene su propia plantilla de ARN como parte de su estructura. Sintetiza telómeros en los extremos de los cromosomas. Los telómeros previenen la fusión de los extremos de los cromosomas vecinos y protegen los extremos de los cromosomas de daños. [64]

La transcripción la lleva a cabo una ARN polimerasa dependiente del ADN que copia la secuencia de una cadena de ADN en ARN. Para comenzar a transcribir un gen, la ARN polimerasa se une a una secuencia de ADN llamada promotor y separa las cadenas de ADN. Luego copia la secuencia del gen en una transcripción de ARN mensajero hasta que llega a una región de ADN llamada terminador , donde se detiene y se separa del ADN. Al igual que con las ADN polimerasas dependientes del ADN humano, la ARN polimerasa II , la enzima que transcribe la mayoría de los genes en el genoma humano, opera como parte de un gran complejo proteico con múltiples subunidades reguladoras y accesorias. [137]

Recombinación genética

Estructura de la unión de Holliday, intermediario en la recombinación genética . Las cuatro cadenas de ADN independientes están coloreadas de rojo, azul, verde y amarillo. [138]
Un modelo actual de recombinación meiótica, iniciada por una rotura o brecha de doble cadena, seguida de un apareamiento con un cromosoma homólogo y una invasión de la cadena para iniciar el proceso de reparación recombinatoria. La reparación de la brecha puede conducir al entrecruzamiento (CO) o no entrecruzamiento (NCO) de las regiones flanqueantes. Se cree que la recombinación CO ocurre mediante el modelo de unión doble de Holliday (DHJ), ilustrado a la derecha, arriba. Se cree que los recombinantes NCO ocurren principalmente mediante el modelo de anexión de cadena dependiente de síntesis (SDSA), ilustrado a la izquierda, arriba. La mayoría de los eventos de recombinación parecen ser del tipo SDSA.

Una hélice de ADN normalmente no interactúa con otros segmentos de ADN, y en las células humanas, los diferentes cromosomas incluso ocupan áreas separadas en el núcleo llamadas " territorios cromosómicos ". [139] Esta separación física de diferentes cromosomas es importante para la capacidad del ADN de funcionar como un depósito estable de información, ya que una de las pocas veces que los cromosomas interactúan es en el cruce cromosómico que ocurre durante la reproducción sexual , cuando ocurre la recombinación genética . El cruce cromosómico es cuando dos hélices de ADN se rompen, intercambian una sección y luego se vuelven a unir.

La recombinación permite que los cromosomas intercambien información genética y produzcan nuevas combinaciones de genes, lo que aumenta la eficiencia de la selección natural y puede ser importante en la rápida evolución de nuevas proteínas. [140] La recombinación genética también puede estar involucrada en la reparación del ADN, particularmente en la respuesta de la célula a las roturas de doble cadena. [141]

La forma más común de entrecruzamiento cromosómico es la recombinación homóloga , donde los dos cromosomas involucrados comparten secuencias muy similares. La recombinación no homóloga puede ser dañina para las células, ya que puede producir translocaciones cromosómicas y anomalías genéticas. La reacción de recombinación es catalizada por enzimas conocidas como recombinasas , como RAD51 . [142] El primer paso en la recombinación es una ruptura de doble cadena causada por una endonucleasa o daño al ADN. [143] Una serie de pasos catalizados en parte por la recombinasa luego conduce a la unión de las dos hélices por al menos una unión de Holliday , en la que un segmento de una sola cadena en cada hélice se une a la cadena complementaria en la otra hélice. La unión de Holliday es una estructura de unión tetraédrica que se puede mover a lo largo del par de cromosomas, intercambiando una cadena por otra. La reacción de recombinación se detiene entonces por la escisión de la unión y la religación del ADN liberado. [144] Sólo las hebras de polaridad similar intercambian ADN durante la recombinación. Hay dos tipos de escisión: escisión este-oeste y escisión norte-sur. La escisión norte-sur corta ambas hebras de ADN, mientras que la escisión este-oeste deja una hebra de ADN intacta. La formación de una unión de Holliday durante la recombinación hace posible la diversidad genética, el intercambio de genes en los cromosomas y la expresión de genomas virales de tipo salvaje.

Evolución

El ADN contiene la información genética que permite que todas las formas de vida funcionen, crezcan y se reproduzcan. Sin embargo, no está claro durante cuánto tiempo en los 4 mil millones de años de historia de la vida el ADN ha realizado esta función, ya que se ha propuesto que las primeras formas de vida pueden haber utilizado ARN como material genético. [145] [146] El ARN puede haber actuado como la parte central del metabolismo celular temprano , ya que puede transmitir información genética y llevar a cabo la catálisis como parte de las ribozimas . [147] Este antiguo mundo de ARN donde el ácido nucleico se habría utilizado tanto para la catálisis como para la genética puede haber influido en la evolución del código genético actual basado en cuatro bases de nucleótidos. Esto ocurriría, ya que el número de bases diferentes en un organismo de este tipo es una compensación entre un pequeño número de bases que aumenta la precisión de la replicación y un gran número de bases que aumenta la eficiencia catalítica de las ribozimas. [148] Sin embargo, no hay evidencia directa de sistemas genéticos antiguos, ya que la recuperación de ADN de la mayoría de los fósiles es imposible porque el ADN sobrevive en el medio ambiente durante menos de un millón de años y se degrada lentamente en fragmentos cortos en solución. [149] Se han hecho afirmaciones de ADN más antiguo, más notablemente un informe del aislamiento de una bacteria viable de un cristal de sal de 250 millones de años, [150] pero estas afirmaciones son controvertidas. [151] [152]

Los bloques de construcción del ADN ( adenina , guanina y moléculas orgánicas relacionadas ) pueden haberse formado extraterrestremente en el espacio exterior . [153] [154] [155] Los compuestos orgánicos complejos de ADN y ARN de la vida , incluidos el uracilo , la citosina y la timina , también se han formado en el laboratorio en condiciones que imitan las que se encuentran en el espacio exterior , utilizando sustancias químicas de partida, como la pirimidina , que se encuentra en meteoritos . La pirimidina, como los hidrocarburos aromáticos policíclicos (HAP), la sustancia química más rica en carbono que se encuentra en el universo , puede haberse formado en gigantes rojas o en nubes de polvo y gas cósmicos interestelares . [156]

Se ha recuperado ADN antiguo de organismos antiguos en una escala de tiempo en la que se puede observar directamente la evolución del genoma, incluso de organismos extintos de hasta millones de años de antigüedad, como el mamut lanudo . [157] [158]

Usos en tecnología

Ingeniería genética

Se han desarrollado métodos para purificar el ADN de los organismos, como la extracción con fenol-cloroformo , y para manipularlo en el laboratorio, como las digestiones de restricción y la reacción en cadena de la polimerasa . La biología y la bioquímica modernas hacen un uso intensivo de estas técnicas en la tecnología del ADN recombinante. El ADN recombinante es una secuencia de ADN hecha por el hombre que se ha ensamblado a partir de otras secuencias de ADN. Se pueden transformar en organismos en forma de plásmidos o en el formato apropiado, utilizando un vector viral . [159] Los organismos genéticamente modificados producidos se pueden utilizar para producir productos como proteínas recombinantes , utilizadas en investigación médica , [160] o se pueden cultivar en agricultura . [161] [162]

Perfil de ADN

Los científicos forenses pueden utilizar el ADN en la sangre , el semen , la piel , la saliva o el cabello encontrados en la escena de un crimen para identificar un ADN coincidente de un individuo, como un perpetrador. [163] Este proceso se denomina formalmente perfil de ADN , también llamado huella de ADN . En el perfil de ADN, las longitudes de secciones variables de ADN repetitivo, como repeticiones cortas en tándem y minisatélites , se comparan entre personas. Este método suele ser una técnica extremadamente confiable para identificar un ADN coincidente. [164] Sin embargo, la identificación puede ser complicada si la escena está contaminada con ADN de varias personas. [165] El perfil de ADN fue desarrollado en 1984 por el genetista británico Sir Alec Jeffreys , [166] y utilizado por primera vez en la ciencia forense para condenar a Colin Pitchfork en el caso de los asesinatos de Enderby de 1988. [167]

El desarrollo de la ciencia forense y la capacidad de obtener ahora coincidencias genéticas en muestras minúsculas de sangre, piel, saliva o cabello han llevado a reexaminar muchos casos. Ahora se pueden descubrir pruebas que eran científicamente imposibles en el momento del examen original. Combinado con la eliminación de la ley de doble enjuiciamiento en algunos lugares, esto puede permitir que se reabran casos en los que los juicios anteriores no han logrado producir pruebas suficientes para convencer a un jurado. A las personas acusadas de delitos graves se les puede exigir que proporcionen una muestra de ADN para fines de comparación. La defensa más obvia para las coincidencias de ADN obtenidas forensemente es alegar que se ha producido una contaminación cruzada de las pruebas. Esto ha dado lugar a procedimientos de manejo estrictos y meticulosos en los nuevos casos de delitos graves.

Los perfiles de ADN también se utilizan con éxito para identificar de forma positiva a víctimas de incidentes con víctimas en masa, [168] cadáveres o partes del cuerpo en accidentes graves y víctimas individuales en fosas de guerra masivas, mediante la comparación con miembros de la familia.

El perfil de ADN también se utiliza en las pruebas de paternidad de ADN para determinar si alguien es el padre o abuelo biológico de un niño; la probabilidad de paternidad suele ser del 99,99 % cuando el supuesto padre está biológicamente relacionado con el niño. Los métodos normales de secuenciación de ADN se realizan después del nacimiento, pero existen nuevos métodos para probar la paternidad mientras la madre todavía está embarazada. [169]

Enzimas de ADN o ADN catalítico

Las desoxirribozimas , también llamadas ADNzimas o ADN catalítico, se descubrieron por primera vez en 1994. [170] En su mayoría son secuencias de ADN monocatenarias aisladas de un gran grupo de secuencias de ADN aleatorias a través de un enfoque combinatorio llamado selección in vitro o evolución sistemática de ligandos por enriquecimiento exponencial (SELEX). Las ADNzimas catalizan una variedad de reacciones químicas, incluida la escisión de ARN-ADN, la ligación de ARN-ADN, la fosforilación-desfosforilación de aminoácidos, la formación de enlaces carbono-carbono, etc. Las ADNzimas pueden mejorar la tasa catalítica de las reacciones químicas hasta 100 000 000 000 de veces sobre la reacción no catalizada. [171] La clase de ADNzimas más estudiada son los tipos de escisión de ARN que se han utilizado para detectar diferentes iones metálicos y diseñar agentes terapéuticos. Se han descrito varias ADNzimas específicas de metales, entre ellas la ADNzima GR-5 (específica del plomo), [170] las ADNzimas CA1-3 (específicas del cobre), [172] la ADNzima 39E (específica del uranilo) y la ADNzima NaA43 (específica del sodio). [173] La ADNzima NaA43, que se ha descrito como más de 10 000 veces selectiva para el sodio frente a otros iones metálicos, se utilizó para fabricar un sensor de sodio en tiempo real en células.

Bioinformática

La bioinformática implica el desarrollo de técnicas para almacenar, extraer datos , buscar y manipular datos biológicos, incluidos los datos de secuencias de ácidos nucleicos de ADN. Estos han llevado a avances ampliamente aplicados en la ciencia informática , especialmente algoritmos de búsqueda de cadenas , aprendizaje automático y teoría de bases de datos . [174] Los algoritmos de búsqueda o coincidencia de cadenas, que encuentran una ocurrencia de una secuencia de letras dentro de una secuencia más grande de letras, se desarrollaron para buscar secuencias específicas de nucleótidos. [175] La secuencia de ADN se puede alinear con otras secuencias de ADN para identificar secuencias homólogas y localizar las mutaciones específicas que las hacen distintas. Estas técnicas, especialmente la alineación de secuencias múltiples , se utilizan para estudiar las relaciones filogenéticas y la función de las proteínas. [176] Los conjuntos de datos que representan secuencias de ADN de genomas enteros, como los producidos por el Proyecto Genoma Humano , son difíciles de usar sin las anotaciones que identifican las ubicaciones de los genes y los elementos reguladores en cada cromosoma. Las regiones de la secuencia de ADN que tienen patrones característicos asociados con genes codificantes de proteínas o ARN se pueden identificar mediante algoritmos de búsqueda de genes , que permiten a los investigadores predecir la presencia de productos genéticos particulares y sus posibles funciones en un organismo incluso antes de que hayan sido aislados experimentalmente. [177] También se pueden comparar genomas completos, lo que puede arrojar luz sobre la historia evolutiva de un organismo particular y permitir el examen de eventos evolutivos complejos.

Nanotecnología del ADN

La estructura del ADN de la izquierda (esquema mostrado) se autoensamblará en la estructura visualizada mediante microscopía de fuerza atómica de la derecha. La nanotecnología del ADN es el campo que busca diseñar estructuras a escala nanométrica utilizando las propiedades de reconocimiento molecular de las moléculas de ADN. [178]

La nanotecnología del ADN utiliza las propiedades únicas de reconocimiento molecular del ADN y otros ácidos nucleicos para crear complejos de ADN ramificados autoensamblables con propiedades útiles. [179] Por lo tanto, el ADN se utiliza como material estructural en lugar de como portador de información biológica. Esto ha llevado a la creación de redes periódicas bidimensionales (tanto basadas en mosaicos como utilizando el método de origami de ADN ) y estructuras tridimensionales en forma de poliedros . [180] También se han demostrado dispositivos nanomecánicos y autoensamblaje algorítmico , [181] y estas estructuras de ADN se han utilizado para modelar la disposición de otras moléculas como nanopartículas de oro y proteínas estreptavidina . [182] El ADN y otros ácidos nucleicos son la base de los aptámeros , ligandos oligonucleótidos sintéticos para moléculas diana específicas utilizadas en una variedad de aplicaciones biotecnológicas y biomédicas. [183]

Historia y antropología

Debido a que el ADN recoge mutaciones a lo largo del tiempo, que luego se heredan, contiene información histórica y, al comparar secuencias de ADN, los genetistas pueden inferir la historia evolutiva de los organismos, su filogenia . [184] Este campo de la filogenética es una herramienta poderosa en la biología evolutiva . Si se comparan las secuencias de ADN dentro de una especie, los genetistas de poblaciones pueden aprender la historia de poblaciones particulares. Esto se puede utilizar en estudios que van desde la genética ecológica hasta la antropología .

Almacenamiento de información

El ADN como dispositivo de almacenamiento de información tiene un potencial enorme, ya que tiene una densidad de almacenamiento mucho mayor en comparación con los dispositivos electrónicos. Sin embargo, los altos costos, los tiempos de lectura y escritura lentos ( latencia de memoria ) y la confiabilidad insuficiente han impedido su uso práctico. [185] [186]

Historia

Maclyn McCarty (izquierda) estrecha la mano de Francis Crick y James Watson , co-creadores del modelo de doble hélice basado en los datos de difracción de rayos X y las ideas de Rosalind Franklin y Raymond Gosling .

El ADN fue aislado por primera vez por el médico suizo Friedrich Miescher , quien, en 1869, descubrió una sustancia microscópica en el pus de vendajes quirúrgicos desechados. Como residía en los núcleos de las células, la llamó "nucleína". [187] [188] En 1878, Albrecht Kossel aisló el componente no proteico de la "nucleína", el ácido nucleico, y más tarde aisló sus cinco nucleobases primarias . [189] [190]

En 1909, Phoebus Levene identificó la unidad de nucleótidos de base, azúcar y fosfato del ARN (entonces llamado "ácido nucleico de levadura"). [191] [192] [193] En 1929, Levene identificó el azúcar desoxirribosa en el "ácido nucleico del timo" (ADN). [194] Levene sugirió que el ADN consistía en una cadena de cuatro unidades de nucleótidos unidas entre sí a través de los grupos fosfato ("hipótesis del tetranucleótido"). Levene pensó que la cadena era corta y las bases se repetían en un orden fijo. En 1927, Nikolai Koltsov propuso que los rasgos hereditarios se heredarían a través de una "molécula hereditaria gigante" compuesta de "dos cadenas espejo que se replicarían de manera semiconservativa utilizando cada cadena como plantilla". [195] [196] En 1928, Frederick Griffith en su experimento descubrió que los rasgos de la forma "lisa" de Pneumococcus podían transferirse a la forma "rugosa" de la misma bacteria mezclando bacterias "lisas" muertas con la forma "rugosa" viva. [197] [198] Este sistema proporcionó la primera sugerencia clara de que el ADN transporta información genética.

En 1933, mientras estudiaba los huevos de erizo de mar virgen , Jean Brachet sugirió que el ADN se encuentra en el núcleo celular y que el ARN está presente exclusivamente en el citoplasma . En ese momento, se pensaba que el "ácido nucleico de levadura" (ARN) se encontraba solo en plantas, mientras que el "ácido nucleico del timo" (ADN) solo en animales. Se pensaba que este último era un tetrámero, con la función de amortiguar el pH celular. [199] [200]

En 1937, William Astbury produjo los primeros patrones de difracción de rayos X que demostraron que el ADN tenía una estructura regular. [201]

En 1943, Oswald Avery , junto con sus colaboradores Colin MacLeod y Maclyn McCarty , identificaron al ADN como el principio transformante , apoyando la sugerencia de Griffith ( experimento de Avery-MacLeod-McCarty ). [202] Erwin Chargaff desarrolló y publicó observaciones ahora conocidas como reglas de Chargaff , que establecen que en el ADN de cualquier especie de cualquier organismo, la cantidad de guanina debe ser igual a la citosina y la cantidad de adenina debe ser igual a la timina . [203] [204]

Una placa azul en el exterior del pub The Eagle en Cambridge, Inglaterra, en conmemoración de Crick y Watson

A finales de 1951, Francis Crick comenzó a trabajar con James Watson en el Laboratorio Cavendish de la Universidad de Cambridge . El papel del ADN en la herencia se confirmó en 1952 cuando Alfred Hershey y Martha Chase, en el experimento Hershey-Chase, demostraron que el ADN es el material genético del fago enterobacteriano T2 . [205]

In May 1952, Raymond Gosling, a graduate student working under the supervision of Rosalind Franklin, took an X-ray diffraction image, labeled as "Photo 51",[206] at high hydration levels of DNA. This photo was given to Watson and Crick by Maurice Wilkins and was critical to their obtaining the correct structure of DNA. Franklin told Crick and Watson that the backbones had to be on the outside. Before then, Linus Pauling, and Watson and Crick, had erroneous models with the chains inside and the bases pointing outwards. Franklin's identification of the space group for DNA crystals revealed to Crick that the two DNA strands were antiparallel.[207] In February 1953, Linus Pauling and Robert Corey proposed a model for nucleic acids containing three intertwined chains, with the phosphates near the axis, and the bases on the outside.[208] Watson and Crick completed their model, which is now accepted as the first correct model of the double helix of DNA. On 28 February 1953 Crick interrupted patrons' lunchtime at The Eagle pub in Cambridge, England to announce that he and Watson had "discovered the secret of life".[209]

Pencil sketch of the DNA double helix by Francis Crick in 1953

The 25 April 1953 issue of the journal Nature published a series of five articles giving the Watson and Crick double-helix structure DNA and evidence supporting it.[210] The structure was reported in a letter titled "MOLECULAR STRUCTURE OF NUCLEIC ACIDS A Structure for Deoxyribose Nucleic Acid", in which they said, "It has not escaped our notice that the specific pairing we have postulated immediately suggests a possible copying mechanism for the genetic material."[9] This letter was followed by a letter from Franklin and Gosling, which was the first publication of their own X-ray diffraction data and of their original analysis method.[48][211] Then followed a letter by Wilkins and two of his colleagues, which contained an analysis of in vivo B-DNA X-ray patterns, and which supported the presence in vivo of the Watson and Crick structure.[49]

In April 2023, scientists, based on new evidence, concluded that Rosalind Franklin was a contributor and "equal player" in the discovery process of DNA, rather than otherwise, as may have been presented subsequently after the time of the discovery.[212][213][214]

In 1962, after Franklin's death, Watson, Crick, and Wilkins jointly received the Nobel Prize in Physiology or Medicine.[215] Nobel Prizes are awarded only to living recipients. A debate continues about who should receive credit for the discovery.[216]

In an influential presentation in 1957, Crick laid out the central dogma of molecular biology, which foretold the relationship between DNA, RNA, and proteins, and articulated the "adaptor hypothesis".[217] Final confirmation of the replication mechanism that was implied by the double-helical structure followed in 1958 through the Meselson–Stahl experiment.[218] Further work by Crick and co-workers showed that the genetic code was based on non-overlapping triplets of bases, called codons, allowing Har Gobind Khorana, Robert W. Holley, and Marshall Warren Nirenberg to decipher the genetic code.[219] These findings represent the birth of molecular biology.[220]

In 1986, DNA analysis was first used for criminal investigative purposes when police in the UK requested Alec Jeffreys of the University of Leicester to verify or disprove a suspect's rape-murder "confession". In this particular case, the suspect had confessed to two rape-murders, but had later retracted his confession. DNA testing at the university labs soon disproved the veracity of the suspect's original "confession", and the suspect was exonerated from the murder-rape charges.[221]

See also

References

  1. ^ "deoxyribonucleic acid". Merriam-Webster.com Dictionary. Merriam-Webster.
  2. ^ Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P (2014). Molecular Biology of the Cell (6th ed.). Garland. p. Chapter 4: DNA, Chromosomes and Genomes. ISBN 978-0-8153-4432-2. Archived from the original on 14 July 2014.
  3. ^ Purcell A. "DNA". Basic Biology. Archived from the original on 5 January 2017.
  4. ^ "Uracil". Genome.gov. Retrieved 21 November 2019.
  5. ^ Russell P (2001). iGenetics. New York: Benjamin Cummings. ISBN 0-8053-4553-1.
  6. ^ Saenger W (1984). Principles of Nucleic Acid Structure. New York: Springer-Verlag. ISBN 0-387-90762-9.
  7. ^ a b Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Peter W (2002). Molecular Biology of the Cell (Fourth ed.). New York and London: Garland Science. ISBN 0-8153-3218-1. OCLC 145080076. Archived from the original on 1 November 2016.
  8. ^ Irobalieva RN, Fogg JM, Catanese DJ, Catanese DJ, Sutthibutpong T, Chen M, Barker AK, Ludtke SJ, Harris SA, Schmid MF, Chiu W, Zechiedrich L (October 2015). "Structural diversity of supercoiled DNA". Nature Communications. 6: 8440. Bibcode:2015NatCo...6.8440I. doi:10.1038/ncomms9440. ISSN 2041-1723. PMC 4608029. PMID 26455586.
  9. ^ a b c d Watson JD, Crick FH (April 1953). "Molecular structure of nucleic acids; a structure for deoxyribose nucleic acid" (PDF). Nature. 171 (4356): 737–38. Bibcode:1953Natur.171..737W. doi:10.1038/171737a0. ISSN 0028-0836. PMID 13054692. S2CID 4253007. Archived (PDF) from the original on 4 February 2007.
  10. ^ Mandelkern M, Elias JG, Eden D, Crothers DM (October 1981). "The dimensions of DNA in solution". Journal of Molecular Biology. 152 (1): 153–61. doi:10.1016/0022-2836(81)90099-1. ISSN 0022-2836. PMID 7338906.
  11. ^ Arrighi, Frances E.; Mandel, Manley; Bergendahl, Janet; Hsu, T. C. (June 1970). "Buoyant densities of DNA of mammals". Biochemical Genetics. 4 (3): 367–376. doi:10.1007/BF00485753. ISSN 0006-2928. PMID 4991030. S2CID 27950750.
  12. ^ a b c d Berg J, Tymoczko J, Stryer L (2002). Biochemistry. W.H. Freeman and Company. ISBN 0-7167-4955-6.
  13. ^ IUPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclature (CBN) (December 1970). "Abbreviations and Symbols for Nucleic Acids, Polynucleotides and their Constituents. Recommendations 1970". The Biochemical Journal. 120 (3): 449–54. doi:10.1042/bj1200449. ISSN 0306-3283. PMC 1179624. PMID 5499957. Archived from the original on 5 February 2007.
  14. ^ a b Ghosh A, Bansal M (April 2003). "A glossary of DNA structures from A to Z". Acta Crystallographica Section D. 59 (Pt 4): 620–26. Bibcode:2003AcCrD..59..620G. doi:10.1107/S0907444903003251. ISSN 0907-4449. PMID 12657780.
  15. ^ Edwards KJ, Brown DG, Spink N, Skelly JV, Neidle S. "RCSB PDB – 1D65: Molecular structure of the B-DNA dodecamer d(CGCAAATTTGCG)2. An examination of propeller twist and minor-groove water structure at 2.2 A resolution". www.rcsb.org. Retrieved 27 March 2023.
  16. ^ Yakovchuk P, Protozanova E, Frank-Kamenetskii MD (2006). "Base-stacking and base-pairing contributions into thermal stability of the DNA double helix". Nucleic Acids Research. 34 (2): 564–74. doi:10.1093/nar/gkj454. ISSN 0305-1048. PMC 1360284. PMID 16449200.
  17. ^ Tropp BE (2012). Molecular Biology (4th ed.). Sudbury, Mass.: Jones and Barlett Learning. ISBN 978-0-7637-8663-2.
  18. ^ Carr S (1953). "Watson-Crick Structure of DNA". Memorial University of Newfoundland. Archived from the original on 19 July 2016. Retrieved 13 July 2016.
  19. ^ Verma S, Eckstein F (1998). "Modified oligonucleotides: synthesis and strategy for users". Annual Review of Biochemistry. 67: 99–134. doi:10.1146/annurev.biochem.67.1.99. ISSN 0066-4154. PMID 9759484.
  20. ^ Johnson TB, Coghill RD (1925). "Pyrimidines. CIII. The discovery of 5-methylcytosine in tuberculinic acid, the nucleic acid of the tubercle bacillus". Journal of the American Chemical Society. 47: 2838–44. doi:10.1021/ja01688a030. ISSN 0002-7863.
  21. ^ Weigele P, Raleigh EA (October 2016). "Biosynthesis and Function of Modified Bases in Bacteria and Their Viruses". Chemical Reviews. 116 (20): 12655–12687. doi:10.1021/acs.chemrev.6b00114. ISSN 0009-2665. PMID 27319741.
  22. ^ Kumar S, Chinnusamy V, Mohapatra T (2018). "Epigenetics of Modified DNA Bases: 5-Methylcytosine and Beyond". Frontiers in Genetics. 9: 640. doi:10.3389/fgene.2018.00640. ISSN 1664-8021. PMC 6305559. PMID 30619465.
  23. ^ Carell T, Kurz MQ, Müller M, Rossa M, Spada F (April 2018). "Non-canonical Bases in the Genome: The Regulatory Information Layer in DNA". Angewandte Chemie. 57 (16): 4296–4312. doi:10.1002/anie.201708228. PMID 28941008.
  24. ^ Wing R, Drew H, Takano T, Broka C, Tanaka S, Itakura K, Dickerson RE (October 1980). "Crystal structure analysis of a complete turn of B-DNA". Nature. 287 (5784): 755–58. Bibcode:1980Natur.287..755W. doi:10.1038/287755a0. PMID 7432492. S2CID 4315465.
  25. ^ a b Pabo CO, Sauer RT (1984). "Protein-DNA recognition". Annual Review of Biochemistry. 53: 293–321. doi:10.1146/annurev.bi.53.070184.001453. PMID 6236744.
  26. ^ Nikolova EN, Zhou H, Gottardo FL, Alvey HS, Kimsey IJ, Al-Hashimi HM (2013). "A historical account of Hoogsteen base-pairs in duplex DNA". Biopolymers. 99 (12): 955–68. doi:10.1002/bip.22334. PMC 3844552. PMID 23818176.
  27. ^ Clausen-Schaumann H, Rief M, Tolksdorf C, Gaub HE (April 2000). "Mechanical stability of single DNA molecules". Biophysical Journal. 78 (4): 1997–2007. Bibcode:2000BpJ....78.1997C. doi:10.1016/S0006-3495(00)76747-6. PMC 1300792. PMID 10733978.
  28. ^ Chalikian TV, Völker J, Plum GE, Breslauer KJ (July 1999). "A more unified picture for the thermodynamics of nucleic acid duplex melting: a characterization by calorimetric and volumetric techniques". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (14): 7853–58. Bibcode:1999PNAS...96.7853C. doi:10.1073/pnas.96.14.7853. PMC 22151. PMID 10393911.
  29. ^ deHaseth PL, Helmann JD (June 1995). "Open complex formation by Escherichia coli RNA polymerase: the mechanism of polymerase-induced strand separation of double helical DNA". Molecular Microbiology. 16 (5): 817–24. doi:10.1111/j.1365-2958.1995.tb02309.x. PMID 7476180. S2CID 24479358.
  30. ^ Isaksson J, Acharya S, Barman J, Cheruku P, Chattopadhyaya J (December 2004). "Single-stranded adenine-rich DNA and RNA retain structural characteristics of their respective double-stranded conformations and show directional differences in stacking pattern" (PDF). Biochemistry. 43 (51): 15996–6010. doi:10.1021/bi048221v. PMID 15609994. Archived (PDF) from the original on 10 June 2007.
  31. ^ a b Piovesan A, Pelleri MC, Antonaros F, Strippoli P, Caracausi M, Vitale L (2019). "On the length, weight and GC content of the human genome". BMC Res Notes. 12 (1): 106. doi:10.1186/s13104-019-4137-z. PMC 6391780. PMID 30813969.
  32. ^ Gregory SG, Barlow KF, McLay KE, Kaul R, Swarbreck D, Dunham A, et al. (May 2006). "The DNA sequence and biological annotation of human chromosome 1". Nature. 441 (7091): 315–21. Bibcode:2006Natur.441..315G. doi:10.1038/nature04727. PMID 16710414.
  33. ^ Anderson S, Bankier AT, Barrell BG, de Bruijn MH, Coulson AR, Drouin J, et al. (April 1981). "Sequence and organization of the human mitochondrial genome". Nature. 290 (5806): 457–465. Bibcode:1981Natur.290..457A. doi:10.1038/290457a0. PMID 7219534. S2CID 4355527.
  34. ^ "Untitled". Archived from the original on 13 August 2011. Retrieved 13 June 2012.
  35. ^ a b c Satoh M, Kuroiwa T (September 1991). "Organization of multiple nucleoids and DNA molecules in mitochondria of a human cell". Experimental Cell Research. 196 (1): 137–140. doi:10.1016/0014-4827(91)90467-9. PMID 1715276.
  36. ^ Zhang D, Keilty D, Zhang ZF, Chian RC (March 2017). "Mitochondria in oocyte aging: current understanding". Facts, Views & Vision in ObGyn. 9 (1): 29–38. PMC 5506767. PMID 28721182.
  37. ^ Designation of the two strands of DNA Archived 24 April 2008 at the Wayback Machine JCBN/NC-IUB Newsletter 1989. Retrieved 7 May 2008
  38. ^ Hüttenhofer A, Schattner P, Polacek N (May 2005). "Non-coding RNAs: hope or hype?". Trends in Genetics. 21 (5): 289–97. doi:10.1016/j.tig.2005.03.007. PMID 15851066.
  39. ^ Munroe SH (November 2004). "Diversity of antisense regulation in eukaryotes: multiple mechanisms, emerging patterns". Journal of Cellular Biochemistry. 93 (4): 664–71. doi:10.1002/jcb.20252. PMID 15389973. S2CID 23748148.
  40. ^ Makalowska I, Lin CF, Makalowski W (February 2005). "Overlapping genes in vertebrate genomes". Computational Biology and Chemistry. 29 (1): 1–12. doi:10.1016/j.compbiolchem.2004.12.006. PMID 15680581.
  41. ^ Johnson ZI, Chisholm SW (November 2004). "Properties of overlapping genes are conserved across microbial genomes". Genome Research. 14 (11): 2268–72. doi:10.1101/gr.2433104. PMC 525685. PMID 15520290.
  42. ^ Lamb RA, Horvath CM (August 1991). "Diversity of coding strategies in influenza viruses". Trends in Genetics. 7 (8): 261–66. doi:10.1016/0168-9525(91)90326-L. PMC 7173306. PMID 1771674.
  43. ^ Benham CJ, Mielke SP (2005). "DNA mechanics" (PDF). Annual Review of Biomedical Engineering. 7: 21–53. doi:10.1146/annurev.bioeng.6.062403.132016. PMID 16004565. S2CID 1427671. Archived from the original (PDF) on 1 March 2019.
  44. ^ a b Champoux JJ (2001). "DNA topoisomerases: structure, function, and mechanism". Annual Review of Biochemistry. 70: 369–413. doi:10.1146/annurev.biochem.70.1.369. PMID 11395412. S2CID 18144189.
  45. ^ a b Wang JC (June 2002). "Cellular roles of DNA topoisomerases: a molecular perspective". Nature Reviews Molecular Cell Biology. 3 (6): 430–40. doi:10.1038/nrm831. PMID 12042765. S2CID 205496065.
  46. ^ Basu HS, Feuerstein BG, Zarling DA, Shafer RH, Marton LJ (October 1988). "Recognition of Z-RNA and Z-DNA determinants by polyamines in solution: experimental and theoretical studies". Journal of Biomolecular Structure & Dynamics. 6 (2): 299–309. doi:10.1080/07391102.1988.10507714. PMID 2482766.
  47. ^
    • Franklin RE, Gosling RG (6 March 1953). "The Structure of Sodium Thymonucleate Fibres I. The Influence of Water Content" (PDF). Acta Crystallogr. 6 (8–9): 673–77. Bibcode:1953AcCry...6..673F. doi:10.1107/S0365110X53001939. Archived (PDF) from the original on 9 January 2016.
    • Franklin RE, Gosling RG (1953). "The structure of sodium thymonucleate fibres. II. The cylindrically symmetrical Patterson function" (PDF). Acta Crystallogr. 6 (8–9): 678–85. Bibcode:1953AcCry...6..678F. doi:10.1107/S0365110X53001940. Archived (PDF) from the original on 29 June 2017.
  48. ^ a b Franklin RE, Gosling RG (April 1953). "Molecular configuration in sodium thymonucleate" (PDF). Nature. 171 (4356): 740–41. Bibcode:1953Natur.171..740F. doi:10.1038/171740a0. PMID 13054694. S2CID 4268222. Archived (PDF) from the original on 3 January 2011.
  49. ^ a b Wilkins MH, Stokes AR, Wilson HR (April 1953). "Molecular structure of deoxypentose nucleic acids" (PDF). Nature. 171 (4356): 738–40. Bibcode:1953Natur.171..738W. doi:10.1038/171738a0. PMID 13054693. S2CID 4280080. Archived (PDF) from the original on 13 May 2011.
  50. ^ Leslie AG, Arnott S, Chandrasekaran R, Ratliff RL (October 1980). "Polymorphism of DNA double helices". Journal of Molecular Biology. 143 (1): 49–72. doi:10.1016/0022-2836(80)90124-2. PMID 7441761.
  51. ^ Baianu IC (1980). "Structural Order and Partial Disorder in Biological systems". Bull. Math. Biol. 42 (4): 137–41. doi:10.1007/BF02462372. S2CID 189888972.
  52. ^ Hosemann R, Bagchi RN (1962). Direct analysis of diffraction by matter. Amsterdam – New York: North-Holland Publishers.
  53. ^ Baianu IC (1978). "X-ray scattering by partially disordered membrane systems" (PDF). Acta Crystallogr A. 34 (5): 751–53. Bibcode:1978AcCrA..34..751B. doi:10.1107/S0567739478001540. Archived from the original (PDF) on 14 March 2020. Retrieved 29 August 2019.
  54. ^ Wahl MC, Sundaralingam M (1997). "Crystal structures of A-DNA duplexes". Biopolymers. 44 (1): 45–63. doi:10.1002/(SICI)1097-0282(1997)44:1<45::AID-BIP4>3.0.CO;2-#. PMID 9097733.
  55. ^ Lu XJ, Shakked Z, Olson WK (July 2000). "A-form conformational motifs in ligand-bound DNA structures". Journal of Molecular Biology. 300 (4): 819–40. doi:10.1006/jmbi.2000.3690. PMID 10891271.
  56. ^ Rothenburg S, Koch-Nolte F, Haag F (December 2001). "DNA methylation and Z-DNA formation as mediators of quantitative differences in the expression of alleles". Immunological Reviews. 184: 286–98. doi:10.1034/j.1600-065x.2001.1840125.x. PMID 12086319. S2CID 20589136.
  57. ^ Oh DB, Kim YG, Rich A (December 2002). "Z-DNA-binding proteins can act as potent effectors of gene expression in vivo". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (26): 16666–71. Bibcode:2002PNAS...9916666O. doi:10.1073/pnas.262672699. PMC 139201. PMID 12486233.
  58. ^ Palmer J (2 December 2010). "Arsenic-loving bacteria may help in hunt for alien life". BBC News. Archived from the original on 3 December 2010. Retrieved 2 December 2010.
  59. ^ a b Bortman H (2 December 2010). "Arsenic-Eating Bacteria Opens New Possibilities for Alien Life". Space.com. Archived from the original on 4 December 2010. Retrieved 2 December 2010.
  60. ^ Katsnelson A (2 December 2010). "Arsenic-eating microbe may redefine chemistry of life". Nature News. doi:10.1038/news.2010.645. Archived from the original on 12 February 2012.
  61. ^ Cressey D (3 October 2012). "'Arsenic-life' Bacterium Prefers Phosphorus after all". Nature News. doi:10.1038/nature.2012.11520. S2CID 87341731.
  62. ^ "Structure and packing of human telomeric DNA". ndbserver.rutgers.edu. Retrieved 18 May 2023.
  63. ^ a b Greider CW, Blackburn EH (December 1985). "Identification of a specific telomere terminal transferase activity in Tetrahymena extracts". Cell. 43 (2 Pt 1): 405–13. doi:10.1016/0092-8674(85)90170-9. PMID 3907856.
  64. ^ a b c Nugent CI, Lundblad V (April 1998). "The telomerase reverse transcriptase: components and regulation". Genes & Development. 12 (8): 1073–85. doi:10.1101/gad.12.8.1073. PMID 9553037.
  65. ^ Wright WE, Tesmer VM, Huffman KE, Levene SD, Shay JW (November 1997). "Normal human chromosomes have long G-rich telomeric overhangs at one end". Genes & Development. 11 (21): 2801–09. doi:10.1101/gad.11.21.2801. PMC 316649. PMID 9353250.
  66. ^ a b Burge S, Parkinson GN, Hazel P, Todd AK, Neidle S (2006). "Quadruplex DNA: sequence, topology and structure". Nucleic Acids Research. 34 (19): 5402–15. doi:10.1093/nar/gkl655. PMC 1636468. PMID 17012276.
  67. ^ Parkinson GN, Lee MP, Neidle S (June 2002). "Crystal structure of parallel quadruplexes from human telomeric DNA". Nature. 417 (6891): 876–80. Bibcode:2002Natur.417..876P. doi:10.1038/nature755. PMID 12050675. S2CID 4422211.
  68. ^ Griffith JD, Comeau L, Rosenfield S, Stansel RM, Bianchi A, Moss H, de Lange T (May 1999). "Mammalian telomeres end in a large duplex loop". Cell. 97 (4): 503–14. CiteSeerX 10.1.1.335.2649. doi:10.1016/S0092-8674(00)80760-6. PMID 10338214. S2CID 721901.
  69. ^ Seeman NC (November 2005). "DNA enables nanoscale control of the structure of matter". Quarterly Reviews of Biophysics. 38 (4): 363–71. doi:10.1017/S0033583505004087. PMC 3478329. PMID 16515737.
  70. ^ Warren M (21 February 2019). "Four new DNA letters double life's alphabet". Nature. 566 (7745): 436. Bibcode:2019Natur.566..436W. doi:10.1038/d41586-019-00650-8. PMID 30809059.
  71. ^ Hoshika S, Leal NA, Kim MJ, Kim MS, Karalkar NB, Kim HJ, et al. (22 February 2019). "Hachimoji DNA and RNA: A genetic system with eight building blocks (paywall)". Science. 363 (6429): 884–887. Bibcode:2019Sci...363..884H. doi:10.1126/science.aat0971. PMC 6413494. PMID 30792304.
  72. ^ Burghardt B, Hartmann AK (February 2007). "RNA secondary structure design". Physical Review E. 75 (2): 021920. arXiv:physics/0609135. Bibcode:2007PhRvE..75b1920B. doi:10.1103/PhysRevE.75.021920. PMID 17358380. S2CID 17574854.
  73. ^ Reusch W. "Nucleic Acids". Michigan State University. Retrieved 30 June 2022.
  74. ^ "How To Extract DNA From Anything Living". University of Utah. Retrieved 30 June 2022.
  75. ^ Hu Q, Rosenfeld MG (2012). "Epigenetic regulation of human embryonic stem cells". Frontiers in Genetics. 3: 238. doi:10.3389/fgene.2012.00238. PMC 3488762. PMID 23133442.
  76. ^ Klose RJ, Bird AP (February 2006). "Genomic DNA methylation: the mark and its mediators". Trends in Biochemical Sciences. 31 (2): 89–97. doi:10.1016/j.tibs.2005.12.008. PMID 16403636.
  77. ^ Bird A (January 2002). "DNA methylation patterns and epigenetic memory". Genes & Development. 16 (1): 6–21. doi:10.1101/gad.947102. PMID 11782440.
  78. ^ Walsh CP, Xu GL (2006). "Cytosine methylation and DNA repair". DNA Methylation: Basic Mechanisms. Current Topics in Microbiology and Immunology. Vol. 301. pp. 283–315. doi:10.1007/3-540-31390-7_11. ISBN 3-540-29114-8. PMID 16570853.
  79. ^ Kriaucionis S, Heintz N (May 2009). "The nuclear DNA base 5-hydroxymethylcytosine is present in Purkinje neurons and the brain". Science. 324 (5929): 929–30. Bibcode:2009Sci...324..929K. doi:10.1126/science.1169786. PMC 3263819. PMID 19372393.
  80. ^ Ratel D, Ravanat JL, Berger F, Wion D (March 2006). "N6-methyladenine: the other methylated base of DNA". BioEssays. 28 (3): 309–15. doi:10.1002/bies.20342. PMC 2754416. PMID 16479578.
  81. ^ Gommers-Ampt JH, Van Leeuwen F, de Beer AL, Vliegenthart JF, Dizdaroglu M, Kowalak JA, Crain PF, Borst P (December 1993). "beta-D-glucosyl-hydroxymethyluracil: a novel modified base present in the DNA of the parasitic protozoan T. brucei". Cell. 75 (6): 1129–36. doi:10.1016/0092-8674(93)90322-H. hdl:1874/5219. PMID 8261512. S2CID 24801094.
  82. ^ Created from PDB 1JDG Archived 22 September 2008 at the Wayback Machine
  83. ^ Douki T, Reynaud-Angelin A, Cadet J, Sage E (August 2003). "Bipyrimidine photoproducts rather than oxidative lesions are the main type of DNA damage involved in the genotoxic effect of solar UVA radiation". Biochemistry. 42 (30): 9221–26. doi:10.1021/bi034593c. PMID 12885257.
  84. ^ Cadet J, Delatour T, Douki T, Gasparutto D, Pouget JP, Ravanat JL, Sauvaigo S (March 1999). "Hydroxyl radicals and DNA base damage". Mutation Research. 424 (1–2): 9–21. Bibcode:1999MRFMM.424....9C. doi:10.1016/S0027-5107(99)00004-4. PMID 10064846.
  85. ^ Beckman KB, Ames BN (August 1997). "Oxidative decay of DNA". The Journal of Biological Chemistry. 272 (32): 19633–36. doi:10.1074/jbc.272.32.19633. PMID 9289489.
  86. ^ Valerie K, Povirk LF (September 2003). "Regulation and mechanisms of mammalian double-strand break repair". Oncogene. 22 (37): 5792–812. doi:10.1038/sj.onc.1206679. PMID 12947387.
  87. ^ Johnson G (28 December 2010). "Unearthing Prehistoric Tumors, and Debate". The New York Times. Archived from the original on 24 June 2017. If we lived long enough, sooner or later we all would get cancer.
  88. ^ Alberts B, Johnson A, Lewis J, et al. (2002). "The Preventable Causes of Cancer". Molecular biology of the cell (4th ed.). New York: Garland Science. ISBN 0-8153-4072-9. Archived from the original on 2 January 2016. A certain irreducible background incidence of cancer is to be expected regardless of circumstances: mutations can never be absolutely avoided, because they are an inescapable consequence of fundamental limitations on the accuracy of DNA replication, as discussed in Chapter 5. If a human could live long enough, it is inevitable that at least one of his or her cells would eventually accumulate a set of mutations sufficient for cancer to develop.
  89. ^ Bernstein H, Payne CM, Bernstein C, Garewal H, Dvorak K (2008). "Cancer and aging as consequences of un-repaired DNA damage". In Kimura H, Suzuki A (eds.). New Research on DNA Damage. New York: Nova Science Publishers. pp. 1–47. ISBN 978-1-60456-581-2. Archived from the original on 25 October 2014.
  90. ^ Hoeijmakers JH (October 2009). "DNA damage, aging, and cancer". The New England Journal of Medicine. 361 (15): 1475–85. doi:10.1056/NEJMra0804615. PMID 19812404.
  91. ^ Freitas AA, de Magalhães JP (2011). "A review and appraisal of the DNA damage theory of ageing". Mutation Research. 728 (1–2): 12–22. Bibcode:2011MRRMR.728...12F. doi:10.1016/j.mrrev.2011.05.001. PMID 21600302.
  92. ^ Ferguson LR, Denny WA (September 1991). "The genetic toxicology of acridines". Mutation Research. 258 (2): 123–60. doi:10.1016/0165-1110(91)90006-H. PMID 1881402.
  93. ^ Stephens TD, Bunde CJ, Fillmore BJ (June 2000). "Mechanism of action in thalidomide teratogenesis". Biochemical Pharmacology. 59 (12): 1489–99. doi:10.1016/S0006-2952(99)00388-3. PMID 10799645.
  94. ^ Jeffrey AM (1985). "DNA modification by chemical carcinogens". Pharmacology & Therapeutics. 28 (2): 237–72. doi:10.1016/0163-7258(85)90013-0. PMID 3936066.
  95. ^ Braña MF, Cacho M, Gradillas A, de Pascual-Teresa B, Ramos A (November 2001). "Intercalators as anticancer drugs". Current Pharmaceutical Design. 7 (17): 1745–80. doi:10.2174/1381612013397113. PMID 11562309.
  96. ^ Venter JC, Adams MD, Myers EW, Li PW, Mural RJ, Sutton GG, et al. (February 2001). "The sequence of the human genome". Science. 291 (5507): 1304–51. Bibcode:2001Sci...291.1304V. doi:10.1126/science.1058040. PMID 11181995.
  97. ^ Thanbichler M, Wang SC, Shapiro L (October 2005). "The bacterial nucleoid: a highly organized and dynamic structure". Journal of Cellular Biochemistry. 96 (3): 506–21. doi:10.1002/jcb.20519. PMID 15988757.
  98. ^ Wolfsberg TG, McEntyre J, Schuler GD (February 2001). "Guide to the draft human genome". Nature. 409 (6822): 824–26. Bibcode:2001Natur.409..824W. doi:10.1038/35057000. PMID 11236998.
  99. ^ Gregory TR (January 2005). "The C-value enigma in plants and animals: a review of parallels and an appeal for partnership". Annals of Botany. 95 (1): 133–46. doi:10.1093/aob/mci009. PMC 4246714. PMID 15596463.
  100. ^ Birney E, Stamatoyannopoulos JA, Dutta A, Guigó R, Gingeras TR, Margulies EH, et al. (June 2007). "Identification and analysis of functional elements in 1% of the human genome by the ENCODE pilot project". Nature. 447 (7146): 799–816. Bibcode:2007Natur.447..799B. doi:10.1038/nature05874. PMC 2212820. PMID 17571346.
  101. ^ Yin YW, Steitz TA. "RCSB PDB – 1MSW: Structural basis for the transition from initiation to elongation transcription in T7 RNA polymerase". www.rcsb.org. Retrieved 27 March 2023.
  102. ^ Pidoux AL, Allshire RC (March 2005). "The role of heterochromatin in centromere function". Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 360 (1455): 569–79. doi:10.1098/rstb.2004.1611. PMC 1569473. PMID 15905142.
  103. ^ Harrison PM, Hegyi H, Balasubramanian S, Luscombe NM, Bertone P, Echols N, Johnson T, Gerstein M (February 2002). "Molecular fossils in the human genome: identification and analysis of the pseudogenes in chromosomes 21 and 22". Genome Research. 12 (2): 272–80. doi:10.1101/gr.207102. PMC 155275. PMID 11827946.
  104. ^ Harrison PM, Gerstein M (May 2002). "Studying genomes through the aeons: protein families, pseudogenes and proteome evolution". Journal of Molecular Biology. 318 (5): 1155–74. doi:10.1016/S0022-2836(02)00109-2. PMID 12083509.
  105. ^ Albà M (2001). "Replicative DNA polymerases". Genome Biology. 2 (1): REVIEWS3002. doi:10.1186/gb-2001-2-1-reviews3002. PMC 150442. PMID 11178285.
  106. ^ Tani K, Nasu M (2010). "Roles of Extracellular DNA in Bacterial Ecosystems". In Kikuchi Y, Rykova EY (eds.). Extracellular Nucleic Acids. Springer. pp. 25–38. ISBN 978-3-642-12616-1.
  107. ^ Vlassov VV, Laktionov PP, Rykova EY (July 2007). "Extracellular nucleic acids". BioEssays. 29 (7): 654–67. doi:10.1002/bies.20604. PMID 17563084. S2CID 32463239.
  108. ^ Finkel SE, Kolter R (November 2001). "DNA as a nutrient: novel role for bacterial competence gene homologs". Journal of Bacteriology. 183 (21): 6288–93. doi:10.1128/JB.183.21.6288-6293.2001. PMC 100116. PMID 11591672.
  109. ^ Mulcahy H, Charron-Mazenod L, Lewenza S (November 2008). "Extracellular DNA chelates cations and induces antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms". PLOS Pathogens. 4 (11): e1000213. doi:10.1371/journal.ppat.1000213. PMC 2581603. PMID 19023416.
  110. ^ Berne C, Kysela DT, Brun YV (August 2010). "A bacterial extracellular DNA inhibits settling of motile progeny cells within a biofilm". Molecular Microbiology. 77 (4): 815–29. doi:10.1111/j.1365-2958.2010.07267.x. PMC 2962764. PMID 20598083.
  111. ^ Whitchurch CB, Tolker-Nielsen T, Ragas PC, Mattick JS (February 2002). "Extracellular DNA required for bacterial biofilm formation". Science. 295 (5559): 1487. doi:10.1126/science.295.5559.1487. PMID 11859186.
  112. ^ Hu W, Li L, Sharma S, Wang J, McHardy I, Lux R, Yang Z, He X, Gimzewski JK, Li Y, Shi W (2012). "DNA builds and strengthens the extracellular matrix in Myxococcus xanthus biofilms by interacting with exopolysaccharides". PLOS ONE. 7 (12): e51905. Bibcode:2012PLoSO...751905H. doi:10.1371/journal.pone.0051905. PMC 3530553. PMID 23300576.
  113. ^ Hui L, Bianchi DW (February 2013). "Recent advances in the prenatal interrogation of the human fetal genome". Trends in Genetics. 29 (2): 84–91. doi:10.1016/j.tig.2012.10.013. PMC 4378900. PMID 23158400.
  114. ^ Foote AD, Thomsen PF, Sveegaard S, Wahlberg M, Kielgast J, Kyhn LA, et al. (2012). "Investigating the potential use of environmental DNA (eDNA) for genetic monitoring of marine mammals". PLOS ONE. 7 (8): e41781. Bibcode:2012PLoSO...741781F. doi:10.1371/journal.pone.0041781. PMC 3430683. PMID 22952587.
  115. ^ "Researchers Detect Land Animals Using DNA in Nearby Water Bodies".
  116. ^ Sandman K, Pereira SL, Reeve JN (December 1998). "Diversity of prokaryotic chromosomal proteins and the origin of the nucleosome". Cellular and Molecular Life Sciences. 54 (12): 1350–64. doi:10.1007/s000180050259. PMC 11147202. PMID 9893710. S2CID 21101836.
  117. ^ Dame RT (May 2005). "The role of nucleoid-associated proteins in the organization and compaction of bacterial chromatin". Molecular Microbiology. 56 (4): 858–70. doi:10.1111/j.1365-2958.2005.04598.x. PMID 15853876. S2CID 26965112.
  118. ^ Luger K, Mäder AW, Richmond RK, Sargent DF, Richmond TJ (September 1997). "Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 A resolution". Nature. 389 (6648): 251–60. Bibcode:1997Natur.389..251L. doi:10.1038/38444. PMID 9305837. S2CID 4328827.
  119. ^ Jenuwein T, Allis CD (August 2001). "Translating the histone code" (PDF). Science. 293 (5532): 1074–80. doi:10.1126/science.1063127. PMID 11498575. S2CID 1883924. Archived (PDF) from the original on 8 August 2017.
  120. ^ Ito T (2003). "Nucleosome Assembly and Remodeling". Protein Complexes that Modify Chromatin. Current Topics in Microbiology and Immunology. Vol. 274. pp. 1–22. doi:10.1007/978-3-642-55747-7_1. ISBN 978-3-540-44208-0. PMID 12596902.
  121. ^ Thomas JO (August 2001). "HMG1 and 2: architectural DNA-binding proteins". Biochemical Society Transactions. 29 (Pt 4): 395–401. doi:10.1042/BST0290395. PMID 11497996.
  122. ^ Grosschedl R, Giese K, Pagel J (March 1994). "HMG domain proteins: architectural elements in the assembly of nucleoprotein structures". Trends in Genetics. 10 (3): 94–100. doi:10.1016/0168-9525(94)90232-1. PMID 8178371.
  123. ^ Iftode C, Daniely Y, Borowiec JA (1999). "Replication protein A (RPA): the eukaryotic SSB". Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology. 34 (3): 141–80. doi:10.1080/10409239991209255. PMID 10473346.
  124. ^ Beamer LJ, Pabo CO. "RCSB PDB – 1LMB: Refined 1.8 Å crystal structure of the lambda repressor-operator complex". www.rcsb.org. Retrieved 27 March 2023.
  125. ^ Myers LC, Kornberg RD (2000). "Mediator of transcriptional regulation". Annual Review of Biochemistry. 69: 729–49. doi:10.1146/annurev.biochem.69.1.729. PMID 10966474.
  126. ^ Spiegelman BM, Heinrich R (October 2004). "Biological control through regulated transcriptional coactivators". Cell. 119 (2): 157–67. doi:10.1016/j.cell.2004.09.037. PMID 15479634.
  127. ^ Li Z, Van Calcar S, Qu C, Cavenee WK, Zhang MQ, Ren B (July 2003). "A global transcriptional regulatory role for c-Myc in Burkitt's lymphoma cells". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (14): 8164–69. Bibcode:2003PNAS..100.8164L. doi:10.1073/pnas.1332764100. PMC 166200. PMID 12808131.
  128. ^ Kostrewa D, Winkler FK. "RCSB PDB – 1RVA: Mg2+ binding to the active site of EcoRV endonuclease: a crystallographic study of complexes with substrate and product DNA at 2 Å resolution". www.rcsb.org. Retrieved 27 March 2023.
  129. ^ Bickle TA, Krüger DH (June 1993). "Biology of DNA restriction". Microbiological Reviews. 57 (2): 434–50. doi:10.1128/MMBR.57.2.434-450.1993. PMC 372918. PMID 8336674.
  130. ^ a b Doherty AJ, Suh SW (November 2000). "Structural and mechanistic conservation in DNA ligases". Nucleic Acids Research. 28 (21): 4051–58. doi:10.1093/nar/28.21.4051. PMC 113121. PMID 11058099.
  131. ^ Schoeffler AJ, Berger JM (December 2005). "Recent advances in understanding structure-function relationships in the type II topoisomerase mechanism". Biochemical Society Transactions. 33 (Pt 6): 1465–70. doi:10.1042/BST20051465. PMID 16246147.
  132. ^ Tuteja N, Tuteja R (May 2004). "Unraveling DNA helicases. Motif, structure, mechanism and function" (PDF). European Journal of Biochemistry. 271 (10): 1849–63. doi:10.1111/j.1432-1033.2004.04094.x. PMID 15128295.
  133. ^ Joyce CM, Steitz TA (November 1995). "Polymerase structures and function: variations on a theme?". Journal of Bacteriology. 177 (22): 6321–29. doi:10.1128/jb.177.22.6321-6329.1995. PMC 177480. PMID 7592405.
  134. ^ Hubscher U, Maga G, Spadari S (2002). "Eukaryotic DNA polymerases" (PDF). Annual Review of Biochemistry. 71: 133–63. doi:10.1146/annurev.biochem.71.090501.150041. PMID 12045093. S2CID 26171993. Archived from the original (PDF) on 26 January 2021.
  135. ^ Johnson A, O'Donnell M (2005). "Cellular DNA replicases: components and dynamics at the replication fork". Annual Review of Biochemistry. 74: 283–315. doi:10.1146/annurev.biochem.73.011303.073859. PMID 15952889.
  136. ^ a b Tarrago-Litvak L, Andréola ML, Nevinsky GA, Sarih-Cottin L, Litvak S (May 1994). "The reverse transcriptase of HIV-1: from enzymology to therapeutic intervention". FASEB Journal. 8 (8): 497–503. doi:10.1096/fasebj.8.8.7514143. PMID 7514143. S2CID 39614573.
  137. ^ Martinez E (December 2002). "Multi-protein complexes in eukaryotic gene transcription". Plant Molecular Biology. 50 (6): 925–47. doi:10.1023/A:1021258713850. PMID 12516863. S2CID 24946189.
  138. ^ Thorpe JH, Gale BC, Teixeira SC, Cardin CJ. "RCSB PDB – 1M6G: Structural Characterisation of the Holliday Junction TCGGTACCGA". www.rcsb.org. Retrieved 27 March 2023.
  139. ^ Cremer T, Cremer C (April 2001). "Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells". Nature Reviews Genetics. 2 (4): 292–301. doi:10.1038/35066075. PMID 11283701. S2CID 8547149.
  140. ^ Pál C, Papp B, Lercher MJ (May 2006). "An integrated view of protein evolution". Nature Reviews Genetics. 7 (5): 337–48. doi:10.1038/nrg1838. PMID 16619049. S2CID 23225873.
  141. ^ O'Driscoll M, Jeggo PA (January 2006). "The role of double-strand break repair – insights from human genetics". Nature Reviews Genetics. 7 (1): 45–54. doi:10.1038/nrg1746. PMID 16369571. S2CID 7779574.
  142. ^ Vispé S, Defais M (October 1997). "Mammalian Rad51 protein: a RecA homologue with pleiotropic functions". Biochimie. 79 (9–10): 587–92. doi:10.1016/S0300-9084(97)82007-X. PMID 9466696.
  143. ^ Neale MJ, Keeney S (July 2006). "Clarifying the mechanics of DNA strand exchange in meiotic recombination". Nature. 442 (7099): 153–58. Bibcode:2006Natur.442..153N. doi:10.1038/nature04885. PMC 5607947. PMID 16838012.
  144. ^ Dickman MJ, Ingleston SM, Sedelnikova SE, Rafferty JB, Lloyd RG, Grasby JA, Hornby DP (November 2002). "The RuvABC resolvasome". European Journal of Biochemistry. 269 (22): 5492–501. doi:10.1046/j.1432-1033.2002.03250.x. PMID 12423347. S2CID 39505263.
  145. ^ Joyce GF (July 2002). "The antiquity of RNA-based evolution". Nature. 418 (6894): 214–21. Bibcode:2002Natur.418..214J. doi:10.1038/418214a. PMID 12110897. S2CID 4331004.
  146. ^ Orgel LE (2004). "Prebiotic chemistry and the origin of the RNA world". Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology. 39 (2): 99–123. CiteSeerX 10.1.1.537.7679. doi:10.1080/10409230490460765. PMID 15217990. S2CID 4939632.
  147. ^ Davenport RJ (May 2001). "Ribozymes. Making copies in the RNA world". Science. 292 (5520): 1278a–1278. doi:10.1126/science.292.5520.1278a. PMID 11360970. S2CID 85976762.
  148. ^ Szathmáry E (April 1992). "What is the optimum size for the genetic alphabet?". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (7): 2614–18. Bibcode:1992PNAS...89.2614S. doi:10.1073/pnas.89.7.2614. PMC 48712. PMID 1372984.
  149. ^ Lindahl T (April 1993). "Instability and decay of the primary structure of DNA". Nature. 362 (6422): 709–15. Bibcode:1993Natur.362..709L. doi:10.1038/362709a0. PMID 8469282. S2CID 4283694.
  150. ^ Vreeland RH, Rosenzweig WD, Powers DW (October 2000). "Isolation of a 250 million-year-old halotolerant bacterium from a primary salt crystal". Nature. 407 (6806): 897–900. Bibcode:2000Natur.407..897V. doi:10.1038/35038060. PMID 11057666. S2CID 9879073.
  151. ^ Hebsgaard MB, Phillips MJ, Willerslev E (May 2005). "Geologically ancient DNA: fact or artefact?". Trends in Microbiology. 13 (5): 212–20. doi:10.1016/j.tim.2005.03.010. PMID 15866038.
  152. ^ Nickle DC, Learn GH, Rain MW, Mullins JI, Mittler JE (January 2002). "Curiously modern DNA for a "250 million-year-old" bacterium". Journal of Molecular Evolution. 54 (1): 134–37. Bibcode:2002JMolE..54..134N. doi:10.1007/s00239-001-0025-x. PMID 11734907. S2CID 24740859.
  153. ^ Callahan MP, Smith KE, Cleaves HJ, Ruzicka J, Stern JC, Glavin DP, House CH, Dworkin JP (August 2011). "Carbonaceous meteorites contain a wide range of extraterrestrial nucleobases". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (34): 13995–98. Bibcode:2011PNAS..10813995C. doi:10.1073/pnas.1106493108. PMC 3161613. PMID 21836052.
  154. ^ Steigerwald J (8 August 2011). "NASA Researchers: DNA Building Blocks Can Be Made in Space". NASA. Archived from the original on 23 June 2015. Retrieved 10 August 2011.
  155. ^ ScienceDaily Staff (9 August 2011). "DNA Building Blocks Can Be Made in Space, NASA Evidence Suggests". ScienceDaily. Archived from the original on 5 September 2011. Retrieved 9 August 2011.
  156. ^ Marlaire R (3 March 2015). "NASA Ames Reproduces the Building Blocks of Life in Laboratory". NASA. Archived from the original on 5 March 2015. Retrieved 5 March 2015.
  157. ^ Hunt K (17 February 2021). "World's oldest DNA sequenced from a mammoth that lived more than a million years ago". CNN News. Retrieved 17 February 2021.
  158. ^ Callaway E (17 February 2021). "Million-year-old mammoth genomes shatter record for oldest ancient DNA – Permafrost-preserved teeth, up to 1.6 million years old, identify a new kind of mammoth in Siberia". Nature. 590 (7847): 537–538. Bibcode:2021Natur.590..537C. doi:10.1038/d41586-021-00436-x. ISSN 0028-0836. PMID 33597786.
  159. ^ Goff SP, Berg P (December 1976). "Construction of hybrid viruses containing SV40 and lambda phage DNA segments and their propagation in cultured monkey cells". Cell. 9 (4 PT 2): 695–705. doi:10.1016/0092-8674(76)90133-1. PMID 189942. S2CID 41788896.
  160. ^ Houdebine LM (2007). "Transgenic animal models in biomedical research". Target Discovery and Validation Reviews and Protocols. Methods in Molecular Biology. Vol. 360. pp. 163–202. doi:10.1385/1-59745-165-7:163. ISBN 978-1-59745-165-9. PMID 17172731.
  161. ^ Daniell H, Dhingra A (April 2002). "Multigene engineering: dawn of an exciting new era in biotechnology". Current Opinion in Biotechnology. 13 (2): 136–41. doi:10.1016/S0958-1669(02)00297-5. PMC 3481857. PMID 11950565.
  162. ^ Job D (November 2002). "Plant biotechnology in agriculture". Biochimie. 84 (11): 1105–10. doi:10.1016/S0300-9084(02)00013-5. PMID 12595138.
  163. ^ Curtis C, Hereward J (29 August 2017). "From the crime scene to the courtroom: the journey of a DNA sample". The Conversation. Archived from the original on 22 October 2017. Retrieved 22 October 2017.
  164. ^ Collins A, Morton NE (June 1994). "Likelihood ratios for DNA identification". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (13): 6007–11. Bibcode:1994PNAS...91.6007C. doi:10.1073/pnas.91.13.6007. PMC 44126. PMID 8016106.
  165. ^ Weir BS, Triggs CM, Starling L, Stowell LI, Walsh KA, Buckleton J (March 1997). "Interpreting DNA mixtures". Journal of Forensic Sciences. 42 (2): 213–22. doi:10.1520/JFS14100J. PMID 9068179. S2CID 14511630.
  166. ^ Jeffreys AJ, Wilson V, Thein SL (1985). "Individual-specific 'fingerprints' of human DNA". Nature. 316 (6023): 76–79. Bibcode:1985Natur.316...76J. doi:10.1038/316076a0. PMID 2989708. S2CID 4229883.
  167. ^ "Colin Pitchfork". 14 December 2006. Archived from the original on 14 December 2006. Retrieved 27 March 2023.
  168. ^ "DNA Identification in Mass Fatality Incidents". National Institute of Justice. September 2006. Archived from the original on 12 November 2006.
  169. ^ Pollack A (19 June 2012). "Before Birth, Dad's ID". The New York Times. ISSN 0362-4331. Archived from the original on 24 June 2017. Retrieved 27 March 2023.
  170. ^ a b Breaker RR, Joyce GF (December 1994). "A DNA enzyme that cleaves RNA". Chemistry & Biology. 1 (4): 223–29. doi:10.1016/1074-5521(94)90014-0. PMID 9383394.
  171. ^ Chandra M, Sachdeva A, Silverman SK (October 2009). "DNA-catalyzed sequence-specific hydrolysis of DNA". Nature Chemical Biology. 5 (10): 718–20. doi:10.1038/nchembio.201. PMC 2746877. PMID 19684594.
  172. ^ Carmi N, Shultz LA, Breaker RR (December 1996). "In vitro selection of self-cleaving DNAs". Chemistry & Biology. 3 (12): 1039–46. doi:10.1016/S1074-5521(96)90170-2. PMID 9000012.
  173. ^ Torabi SF, Wu P, McGhee CE, Chen L, Hwang K, Zheng N, Cheng J, Lu Y (May 2015). "In vitro selection of a sodium-specific DNAzyme and its application in intracellular sensing". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (19): 5903–08. Bibcode:2015PNAS..112.5903T. doi:10.1073/pnas.1420361112. PMC 4434688. PMID 25918425.
  174. ^ Baldi P, Brunak S (2001). Bioinformatics: The Machine Learning Approach. MIT Press. ISBN 978-0-262-02506-5. OCLC 45951728.
  175. ^ Gusfield D (15 January 1997). Algorithms on Strings, Trees, and Sequences: Computer Science and Computational Biology. Cambridge University Press. ISBN 978-0-521-58519-4.
  176. ^ Sjölander K (January 2004). "Phylogenomic inference of protein molecular function: advances and challenges". Bioinformatics. 20 (2): 170–79. CiteSeerX 10.1.1.412.943. doi:10.1093/bioinformatics/bth021. PMID 14734307.
  177. ^ Mount DM (2004). Bioinformatics: Sequence and Genome Analysis (2nd ed.). Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press. ISBN 0-87969-712-1. OCLC 55106399.
  178. ^ Strong M (March 2004). "Protein nanomachines". PLOS Biology. 2 (3): E73. doi:10.1371/journal.pbio.0020073. PMC 368168. PMID 15024422. S2CID 13222080.
  179. ^ Rothemund PW (March 2006). "Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns" (PDF). Nature. 440 (7082): 297–302. Bibcode:2006Natur.440..297R. doi:10.1038/nature04586. PMID 16541064. S2CID 4316391.
  180. ^ Andersen ES, Dong M, Nielsen MM, Jahn K, Subramani R, Mamdouh W, Golas MM, Sander B, Stark H, Oliveira CL, Pedersen JS, Birkedal V, Besenbacher F, Gothelf KV, Kjems J (May 2009). "Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid". Nature. 459 (7243): 73–76. Bibcode:2009Natur.459...73A. doi:10.1038/nature07971. hdl:11858/00-001M-0000-0010-9362-B. PMID 19424153. S2CID 4430815.
  181. ^ Ishitsuka Y, Ha T (May 2009). "DNA nanotechnology: a nanomachine goes live". Nature Nanotechnology. 4 (5): 281–82. Bibcode:2009NatNa...4..281I. doi:10.1038/nnano.2009.101. PMID 19421208.
  182. ^ Aldaye FA, Palmer AL, Sleiman HF (September 2008). "Assembling materials with DNA as the guide". Science. 321 (5897): 1795–99. Bibcode:2008Sci...321.1795A. doi:10.1126/science.1154533. PMID 18818351. S2CID 2755388.
  183. ^ Dunn MR, Jimenez RM, Chaput JC (2017). "Analysis of aptamer discovery and technology". Nature Reviews Chemistry. 1 (10). doi:10.1038/s41570-017-0076. Retrieved 30 June 2022.
  184. ^ Wray GA (2002). "Dating branches on the tree of life using DNA". Genome Biology. 3 (1): REVIEWS0001. doi:10.1186/gb-2001-3-1-reviews0001. PMC 150454. PMID 11806830.
  185. ^ Panda D, Molla KA, Baig MJ, Swain A, Behera D, Dash M (May 2018). "DNA as a digital information storage device: hope or hype?". 3 Biotech. 8 (5): 239. doi:10.1007/s13205-018-1246-7. PMC 5935598. PMID 29744271.
  186. ^ Akram F, Haq IU, Ali H, Laghari AT (October 2018). "Trends to store digital data in DNA: an overview". Molecular Biology Reports. 45 (5): 1479–1490. doi:10.1007/s11033-018-4280-y. PMID 30073589. S2CID 51905843.
  187. ^ Miescher F (1871). "Ueber die chemische Zusammensetzung der Eiterzellen" [On the chemical composition of pus cells]. Medicinisch-chemische Untersuchungen (in German). 4: 441–60. [p. 456] Ich habe mich daher später mit meinen Versuchen an die ganzen Kerne gehalten, die Trennung der Körper, die ich einstweilen ohne weiteres Präjudiz als lösliches und unlösliches Nuclein bezeichnen will, einem günstigeren Material überlassend. (Therefore, in my experiments I subsequently limited myself to the whole nucleus, leaving to a more favorable material the separation of the substances, that for the present, without further prejudice, I will designate as soluble and insoluble nuclear material ("Nuclein"))
  188. ^ Dahm R (January 2008). "Discovering DNA: Friedrich Miescher and the early years of nucleic acid research". Human Genetics. 122 (6): 565–81. doi:10.1007/s00439-007-0433-0. PMID 17901982. S2CID 915930.
  189. ^ See:
    • Kossel A (1879). "Ueber Nucleïn der Hefe" [On nuclein in yeast]. Zeitschrift für physiologische Chemie (in German). 3: 284–91.
    • Kossel A (1880). "Ueber Nucleïn der Hefe II" [On nuclein in yeast, Part 2]. Zeitschrift für physiologische Chemie (in German). 4: 290–95.
    • Kossel A (1881). "Ueber die Verbreitung des Hypoxanthins im Thier- und Pflanzenreich" [On the distribution of hypoxanthins in the animal and plant kingdoms]. Zeitschrift für physiologische Chemie (in German). 5: 267–71.
    • Kossel A (1881). Untersuchungen über die Nucleine und ihre Spaltungsprodukte [Investigations into nuclein and its cleavage products] (in German). Strassburg, Germany: K.J. Trübner. p. 19.
    • Kossel A (1882). "Ueber Xanthin und Hypoxanthin" [On xanthin and hypoxanthin]. Zeitschrift für physiologische Chemie. 6: 422–31.
    • Albrect Kossel (1883) "Zur Chemie des Zellkerns" Archived 17 November 2017 at the Wayback Machine (On the chemistry of the cell nucleus), Zeitschrift für physiologische Chemie, 7: 7–22.
    • Kossel A (1886). "Weitere Beiträge zur Chemie des Zellkerns" [Further contributions to the chemistry of the cell nucleus]. Zeitschrift für Physiologische Chemie (in German). 10: 248–64. On p. 264, Kossel remarked presciently: Der Erforschung der quantitativen Verhältnisse der vier stickstoffreichen Basen, der Abhängigkeit ihrer Menge von den physiologischen Zuständen der Zelle, verspricht wichtige Aufschlüsse über die elementaren physiologisch-chemischen Vorgänge. (The study of the quantitative relations of the four nitrogenous bases—[and] of the dependence of their quantity on the physiological states of the cell—promises important insights into the fundamental physiological-chemical processes.)
  190. ^ Jones ME (September 1953). "Albrecht Kossel, a biographical sketch". The Yale Journal of Biology and Medicine. 26 (1): 80–97. PMC 2599350. PMID 13103145.
  191. ^ Levene PA, Jacobs WA (1909). "Über Inosinsäure". Berichte der Deutschen Chemischen Gesellschaft (in German). 42: 1198–203. doi:10.1002/cber.190904201196.
  192. ^ Levene PA, Jacobs WA (1909). "Über die Hefe-Nucleinsäure". Berichte der Deutschen Chemischen Gesellschaft (in German). 42 (2): 2474–78. doi:10.1002/cber.190904202148.
  193. ^ Levene P (1919). "The structure of yeast nucleic acid". J Biol Chem. 40 (2): 415–24. doi:10.1016/S0021-9258(18)87254-4.
  194. ^ Cohen JS, Portugal FH (1974). "The search for the chemical structure of DNA" (PDF). Connecticut Medicine. 38 (10): 551–52, 554–57. PMID 4609088.
  195. ^ Koltsov proposed that a cell's genetic information was encoded in a long chain of amino acids. See:
    • Koltsov HK (12 December 1927). Физико-химические основы морфологии [The physical-chemical basis of morphology] (Speech). 3rd All-Union Meeting of Zoologist, Anatomists, and Histologists (in Russian). Leningrad, U.S.S.R.
    • Reprinted in: Koltsov HK (1928). "Физико-химические основы морфологии" [The physical-chemical basis of morphology]. Успехи экспериментальной биологии (Advances in Experimental Biology) series B (in Russian). 7 (1): ?.
    • Reprinted in German as: Koltzoff NK (1928). "Physikalisch-chemische Grundlagen der Morphologie" [The physical-chemical basis of morphology]. Biologisches Zentralblatt (in German). 48 (6): 345–69.
    • In 1934, Koltsov contended that the proteins that contain a cell's genetic information replicate. See: Koltzoff N (October 1934). "The structure of the chromosomes in the salivary glands of Drosophila". Science. 80 (2075): 312–13. Bibcode:1934Sci....80..312K. doi:10.1126/science.80.2075.312. PMID 17769043. From page 313: "I think that the size of the chromosomes in the salivary glands [of Drosophila] is determined through the multiplication of genonemes. By this term I designate the axial thread of the chromosome, in which the geneticists locate the linear combination of genes; … In the normal chromosome there is usually only one genoneme; before cell-division this genoneme has become divided into two strands."
  196. ^ Soyfer VN (September 2001). "The consequences of political dictatorship for Russian science". Nature Reviews Genetics. 2 (9): 723–29. doi:10.1038/35088598. PMID 11533721. S2CID 46277758.
  197. ^ Griffith F (January 1928). "The Significance of Pneumococcal Types". The Journal of Hygiene. 27 (2): 113–59. doi:10.1017/S0022172400031879. PMC 2167760. PMID 20474956.
  198. ^ Lorenz MG, Wackernagel W (September 1994). "Bacterial gene transfer by natural genetic transformation in the environment". Microbiological Reviews. 58 (3): 563–602. doi:10.1128/MMBR.58.3.563-602.1994. PMC 372978. PMID 7968924.
  199. ^ Brachet J (1933). "Recherches sur la synthese de l'acide thymonucleique pendant le developpement de l'oeuf d'Oursin". Archives de Biologie (in Italian). 44: 519–76.
  200. ^ Burian R (1994). "Jean Brachet's Cytochemical Embryology: Connections with the Renovation of Biology in France?" (PDF). In Debru C, Gayon J, Picard JF (eds.). Les sciences biologiques et médicales en France 1920–1950. Cahiers pour I'histoire de la recherche. Vol. 2. Paris: CNRS Editions. pp. 207–20.
  201. ^ See:
    • Astbury WT, Bell FO (1938). "Some recent developments in the X-ray study of proteins and related structures" (PDF). Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 6: 109–21. doi:10.1101/sqb.1938.006.01.013. Archived from the original (PDF) on 14 July 2014.
    • Astbury WT (1947). "X-ray studies of nucleic acids". Symposia of the Society for Experimental Biology (1): 66–76. PMID 20257017. Archived from the original on 5 July 2014.
  202. ^ Avery OT, Macleod CM, McCarty M (February 1944). "Studies on the Chemical Nature of the Substance Inducing Transformation of Pneumococcal Types: Induction of Transformation by a Desoxyribonucleic Acid Fraction Isolated from Pneumococcus Type III". The Journal of Experimental Medicine. 79 (2): 137–158. doi:10.1084/jem.79.2.137. PMC 2135445. PMID 19871359.
  203. ^ Chargaff E (June 1950). "Chemical specificity of nucleic acids and mechanism of their enzymatic degradation". Experientia. 6 (6): 201–209. doi:10.1007/BF02173653. PMID 15421335. S2CID 2522535.
  204. ^ Kresge N, Simoni RD, Hill RL (June 2005). "Chargaff's Rules: the Work of Erwin Chargaff". Journal of Biological Chemistry. 280 (24): 172–174. doi:10.1016/S0021-9258(20)61522-8.
  205. ^ Hershey AD, Chase M (May 1952). "Independent functions of viral protein and nucleic acid in growth of bacteriophage". The Journal of General Physiology. 36 (1): 39–56. doi:10.1085/jgp.36.1.39. PMC 2147348. PMID 12981234.
  206. ^ "Pictures and Illustrations: Crystallographic photo of Sodium Thymonucleate, Type B. "Photo 51." May 1952". scarc.library.oregonstate.edu. Retrieved 18 May 2023.
  207. ^ Schwartz J (2008). In pursuit of the gene: from Darwin to DNA. Cambridge, Mass.: Harvard University Press. ISBN 978-0-674-02670-4.
  208. ^ Pauling L, Corey RB (February 1953). "A Proposed Structure For The Nucleic Acids". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 39 (2): 84–97. Bibcode:1953PNAS...39...84P. doi:10.1073/pnas.39.2.84. PMC 1063734. PMID 16578429.
  209. ^ Regis E (2009). What Is Life?: investigating the nature of life in the age of synthetic biology. Oxford: Oxford University Press. p. 52. ISBN 978-0-19-538341-6.
  210. ^ "Double Helix of DNA: 50 Years". Nature Archives. Archived from the original on 5 April 2015.
  211. ^ "Original X-ray diffraction image". Oregon State Library. Archived from the original on 30 January 2009. Retrieved 6 February 2011.
  212. ^ Burakoff M (25 April 2023). "Rosalind Franklin's role in DNA discovery gets a new twist". AP News. Retrieved 25 April 2023.
  213. ^ Anthes E (25 April 2023). "Untangling Rosalind Franklin's Role in DNA Discovery, 70 Years On – Historians have long debated the role that Dr. Franklin played in identifying the double helix. A new opinion essay argues that she was an "equal contributor."". The New York Times. Archived from the original on 25 April 2023. Retrieved 26 April 2023.
  214. ^ Cobb M, Comfort N (25 April 2023). "What Rosalind Franklin truly contributed to the discovery of DNA's structure – Franklin was no victim in how the DNA double helix was solved. An overlooked letter and an unpublished news article, both written in 1953, reveal that she was an equal player". Nature. 616 (7958): 657–660. Bibcode:2023Natur.616..657C. doi:10.1038/d41586-023-01313-5. PMID 37100935. S2CID 258314143.
  215. ^ "The Nobel Prize in Physiology or Medicine 1962". Nobelprize.org.
  216. ^ Maddox B (January 2003). "The double helix and the 'wronged heroine'" (PDF). Nature. 421 (6921): 407–08. Bibcode:2003Natur.421..407M. doi:10.1038/nature01399. PMID 12540909. S2CID 4428347. Archived (PDF) from the original on 17 October 2016.
  217. ^ Crick FH (1955). A Note for the RNA Tie Club (PDF) (Speech). Cambridge, England. Archived from the original (PDF) on 1 October 2008.
  218. ^ Meselson M, Stahl FW (July 1958). "The Replication of DNA in Escherichia Coli". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 44 (7): 671–82. Bibcode:1958PNAS...44..671M. doi:10.1073/pnas.44.7.671. PMC 528642. PMID 16590258.
  219. ^ "The Nobel Prize in Physiology or Medicine 1968". Nobelprize.org.
  220. ^ Pray L (2008). "Discovery of DNA structure and function: Watson and Crick". Nature Education. 1 (1): 100.
  221. ^ Panneerchelvam S, Norazmi MN (2003). "Forensic DNA Profiling and Database". The Malaysian Journal of Medical Sciences. 10 (2): 20–26. PMC 3561883. PMID 23386793.

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