stringtranslate.com

Transformación del cloruro de calcio

La transformación con cloruro de calcio ( CaCl2 ) es una técnica de laboratorio en la biología celular procariota (bacteriana) . [1] La adición de cloruro de calcio a una suspensión celular promueve la unión del ADN plasmídico a los lipopolisacáridos (LPS). Los iones de calcio cargados positivamente atraen tanto la cadena principal del ADN cargada negativamente como los grupos cargados negativamente en el núcleo interno del LPS. El ADN plasmídico puede luego pasar a la célula mediante un choque térmico , donde las células enfriadas (+4 grados Celsius) se calientan a una temperatura más alta (+42 grados Celsius) durante un corto tiempo.

Historia de la transformación bacteriana

En 1928, Frederick Griffith publicó el primer informe sobre el potencial de transformación de las bacterias. [2] Griffith observó que los ratones no sucumbían al tipo "rugoso" de neumococo ( Streptococcus pneumoniae ), conocido como no virulento, pero sí sucumbían a la cepa "lisa", que se conoce como virulenta. La virulencia de la cepa lisa podía suprimirse mediante la eliminación por calor. Sin embargo, cuando la cepa rugosa no virulenta se combinaba con la cepa lisa eliminada por calor, la cepa rugosa lograba adoptar el fenotipo liso y, por lo tanto, se volvía virulenta. La investigación de Griffith indicó que el cambio se debía a una sustancia no viva y termoestable generada a partir de la cepa lisa. Más tarde, Oswald Avery, Colin MacLeod y Maclyn McCarty identificaron esta sustancia transformacional como ADN en 1944. [3]

Principio de transformación del cloruro de calcio

Como el ADN es una molécula muy hidrófila , a menudo no puede atravesar la membrana celular bacteriana. Por lo tanto, es necesario hacer que las bacterias sean competentes para poder internalizar el ADN . Esto se puede lograr suspendiendo las bacterias en una solución con una alta concentración de calcio , lo que crea pequeños agujeros en las células de la bacteria [ cita requerida ] . La suspensión de calcio, junto con la incubación del ADN junto con células competentes en hielo, seguida de un breve choque térmico, provocará directamente que el ADN extracromosómico entre de manera forzada en la célula. [4]

Según investigaciones anteriores, las moléculas del receptor de LPS en la superficie celular competente se unen a una molécula de ADN desnuda . [1] Esta unión se produce en vista del hecho de que las moléculas de ADN con carga negativa y el LPS forman complejos de coordinación con los cationes divalentes. Debido a su tamaño, el ADN no puede atravesar la membrana celular por sí solo para llegar al citoplasma. La membrana celular de las células tratadas con CaCl2 se despolariza gravemente durante la etapa de choque térmico y, como resultado, la caída del potencial de membrana reduce la naturaleza negativa del potencial interno de la célula, lo que permite que el ADN con carga negativa fluya hacia el interior de la célula. Posteriormente, el potencial de membrana puede volver a aumentar a su valor inicial mediante un choque de frío posterior. [4]

Células competentes

Las células competentes son células bacterianas con paredes celulares rediseñadas que facilitan el paso del ADN extraño. Sin tratamientos químicos o eléctricos particulares para hacerlas capaces, la mayoría de los tipos de células no pueden captar ADN con éxito , por esa razón, el tratamiento con iones de calcio es el procedimiento típico para modificar las bacterias para que sean permeables al ADN. [5] En las bacterias, la competencia está estrechamente regulada y las diferentes especies bacterianas tienen diferentes características relacionadas con la competencia. Aunque comparten algunas similitudes, las proteínas de competencia generadas por las bacterias Gram-positivas y Gram-negativas son diferentes. [6]

Competencia natural

La competencia natural se resume en tres métodos mediante los cuales las bacterias pueden adquirir ADN de su entorno: conjugación , transformación y transducción . [7] A medida que el ADN se inserta en la célula durante la transformación, las células receptoras deben estar en cierta condición fisiológica conocida como estado competente para poder absorber el ADN transformante . [6] Una vez que el ADN ha ingresado al citoplasma de la célula, enzimas como la nucleasa pueden descomponerlo. En los casos en que el ADN es extremadamente similar al material genético de la propia célula, las enzimas reparadoras del ADN lo recombinan con el cromosoma. [8]

Competencia artificial

Evidentemente, los genes de una célula no incluyen ninguna información sobre la competencia artificial. Este tipo de competencia requiere un proceso de laboratorio que cree condiciones que no suelen existir en la naturaleza para que las células puedan volverse permeables al ADN . [9] Aunque la eficiencia de la transformación es a menudo pobre, este proceso es relativamente simple y rápido de aplicar en la ingeniería genética bacteriana. Mandel y Higa, [10] quienes crearon un procedimiento fácil basado en remojar las células en CaCl2 frío, proporcionaron las bases para obtener células competentes sintéticas. La transformación química, como la transformación con cloruro de calcio y la electroporación son los métodos más utilizados para transformar células bacterianas, como las células de E. coli , con ADN plasmídico . [5]

Método para la transformación del cloruro de calcio

El tratamiento con cloruro de calcio se utiliza generalmente para la transformación de E. coli y otras bacterias. [11] Mejora la incorporación de ADN plasmídico por la célula bacteriana, promoviendo la transformación genética . El ADN plasmídico puede unirse al LPS al ser agregado a la solución celular junto con CaCl2 . [12] Por lo tanto, cuando se aplica un choque térmico, la cadena principal de ADN cargada negativamente y el LPS se combinan, lo que permite que el ADN plasmídico ingrese a la célula bacteriana. [13]

El proceso se resume en los siguientes pasos según el protocolo de The Undergraduate Journal of Experimental Microbiology and Immunology (UJEMI) :

  1. Preparar un cultivo bacteriano en caldo LB
  2. Antes de iniciar el procedimiento principal, utilice el volumen requerido del cultivo previamente elaborado para inocular el volumen requerido de caldo LB fresco.
  3. Sedimente las células centrifugándolas a 4 °C a 4000 rpm durante 10 minutos.
  4. Retire el sobrenadante y resuspenda las células en 20 ml de CaCl2 0,1 M helado , luego déjelas inmediatamente en hielo durante 20 minutos.
  5. Centrifugar como en el paso 3, se obtendrá un pellet más difuso como indicación de células competentes.
  6. Resuspender en CaCl2 frío como en el paso 4
  7. Retire el sobrenadante y resuspenda las células en 5 ml de CaCl2 0,1 M helado junto con glicerol al 15 % para combinar los pellets.
  8. Transfiera las suspensiones a tubos de vidrio delgados y estériles para lograr choques térmicos efectivos.
  9. Agregue la cantidad requerida de mg de ADN en los tubos de suspensión y déjelos inmediatamente en hielo.
  10. Coloque los tubos en un baño de agua a 42 °C durante 30 segundos y regréselos inmediatamente al hielo durante 2 minutos.
  11. Agregue 1 ml de medio LB o SOC
  12. Transfiera cada tubo a la cantidad requerida de mL de caldo LB en un matraz nuevo.
  13. Incubar con agitación a 37 °C a 200 rpm durante 60 minutos, sin embargo, se recomienda dejarlo durante 90 minutos para permitir que las bacterias se recuperen.
  14. Diluciones 1:10 y 1:100 de los cultivos incubados en placas selectivas/de cribado (por ejemplo, ampicilina y/o X-gal) en placas LB a las que se han añadido los antibióticos que se utilizarán para la selección.
  15. Incubar durante la noche a 37°C.
  16. Por último, observe las colonias aisladas en las placas.

Referencias

  1. ^ ab Dagert, M.; Ehrlich, S. (1979). "La incubación prolongada en cloruro de calcio mejora la competencia de las células de Escherichia coli". Gene . 6 (1): 23–28. doi :10.1016/0378-1119(79)90082-9. PMID  383576.
  2. ^ Griffith, Fred (enero de 1928). "La importancia de los tipos de neumococo". Revista de higiene . 27 (2): 113–159. doi :10.1017/s0022172400031879. ISSN  0022-1724. PMC 2167760 . PMID  20474956. S2CID  44003929. 
  3. ^ Avery, Oswald T.; MacLeod, Colin M.; McCarty, Maclyn (mayo de 1995). "Estudios sobre la naturaleza química de la sustancia que induce la transformación de los tipos neumocócicos". Medicina molecular . 1 (4): 344–365. doi :10.1007/bf03401572. ISSN  1076-1551. PMC 2229990 . PMID  8521292. 
  4. ^ ab "Técnica de transformación de CaCl2". Centro de aprendizaje MyBioSource . Consultado el 4 de enero de 2023 .
  5. ^ ab Fregel, R.; Rodríguez, V.; Cabrera, VM (abril de 2008). "Transformación de Escherichia coli mejorada por microondas". Letters in Applied Microbiology . 46 (4): 498–499. doi :10.1111/j.1472-765X.2008.02333.x. ISSN  0266-8254. PMID  18284557. S2CID  14569911.
  6. ^ ab Seitz, Patrick; Blokesch, Melanie (2013). "Señales y vías reguladoras implicadas en la competencia natural y la transformación en bacterias gramnegativas patógenas y ambientales". FEMS Microbiology Reviews . 37 (3): 336–363. doi : 10.1111/j.1574-6976.2012.00353.x . PMID  22928673. S2CID  30861416.
  7. ^ Fischer, Wolfgang; Hofreuter, Dirk; Haas, Rainer (9 de abril de 2014), "Transformación natural, recombinación y reparación", Helicobacter pylori , Washington, DC, EE. UU.: ASM Press, págs. 249-257, doi :10.1128/9781555818005.ch22, ISBN 9781683672388, consultado el 4 de enero de 2023
  8. ^ "Biological Science. Quinta edición. Volumen 1: La célula, la genética y el desarrollo. Por Scott Freeman, Lizabeth Allison, Michael Black, Greg Podgorski, Kim Quillin, Jon Monroe y Emily Taylor. Boston (Massachusetts): Pearson. $85.20 (papel). xxxi + 443 p.; ill.; A:1–A:52; B:1–B:30; C:1; G:1–G:39; Cr:1–Cr:9; I:1–I:42 (índice). ISBN 978-0-321-84180-3. 2014". The Quarterly Review of Biology . 88 (4): 329. Diciembre de 2013. doi :10.1086/673770. ISSN  0033-5770.
  9. ^ Yoshida, Naoto; Sato, Misa (julio de 2009). "Captación de plásmidos por bacterias: una comparación de métodos y eficiencias". Applied Microbiology and Biotechnology . 83 (5): 791–798. doi :10.1007/s00253-009-2042-4. ISSN  0175-7598. PMID  19471921. S2CID  24211143.
  10. ^ Mandel, M.; Higa, A. (octubre de 1970). "Infección por ADN de bacteriófagos dependiente de calcio". Journal of Molecular Biology . 53 (1): 159–162. doi :10.1016/0022-2836(70)90051-3. ISSN  0022-2836. PMID  4922220.
  11. ^ Higuchi-Takeuchi, Mieko; Morisaki, Kumiko; Numata, Keiji (enero de 2020). "Método para la transformación fácil de bacterias fotosintéticas marinas púrpuras utilizando células químicamente competentes". MicrobiologyOpen . 9 (1): e00953. doi :10.1002/mbo3.953. ISSN  2045-8827. PMC 6957439 . PMID  31638342. 
  12. ^ Hanahan, Douglas (junio de 1983). "Estudios sobre la transformación de Escherichia coli con plásmidos". Journal of Molecular Biology . 166 (4): 557–580. doi :10.1016/s0022-2836(83)80284-8. ISSN  0022-2836. PMID  6345791.
  13. ^ Nakata, Yasuhiko; Tang, Xiaoren; Yokoyama, Kazunari K. (1996), "Preparación de células competentes para la transformación de plásmidos de alta eficiencia de Escherichia coli", Protocolos de biblioteca de ADNc , vol. 69, Nueva Jersey: Humana Press, págs. 129–138, doi :10.1385/0-89603-383-x:129, ISBN 0-89603-383-X, PMID  9116846 , consultado el 4 de enero de 2023

Enlaces externos