stringtranslate.com

Scaptomyza flava

Scaptomyza flava es una especie de mosca minadora de hojas herbívora de la familia Drosophilidae . En latín, flava significa dorado o amarillo. [1] La mosca es de color ámbar a marrón oscuro y mide aproximadamente 2,5 mm de largo. [2] [3] En Europa y Nueva Zelanda [4] [5] [6] las larvas son plagas de plantas del orden Brassicales , incluidas la rúcula, las brassicas, el brócoli, las coles de Bruselas, el bok choy, el repollo, la canola, la coliflor, el rábano picante, la col rizada, el colinabo, la col napa, la capuchina, el rábano, el rapini, el colinabo, el nabo, el wasabi y el berro. [4] En Nueva Zelanda, su área de distribución se ha ampliado para incluir especies hospedantes que se intercalan con coles de ensalada, incluida la gypsophila , también conocida como aliento de bebé, que pertenece a la familia de las rosáceas (Caryophyllaceae) y el guisante ( Pisum sativum ) en las Fabaceae. [6] Más típicamente, S. flava es oligófaga dentro de Brassicales. Scaptomyza es inusual dentro de Drospophilidae porque el grupo incluye especies que son verdaderamente herbívoras. [7] [8] [6] Otros drosófilos herbívoros incluyen D. suzukii , que ataca la fruta muy temprano durante la maduración [9] (y por lo tanto es un frugívoro) y especies dentro del género Lordiphosa , de África y Asia, que también incluyen minadores de hojas. [10] La mayoría de los drosófilos se alimentan de microbios asociados con la vegetación en descomposición y los flujos de savia. [11]

Distribución

Scaptomyza flava tiene una distribución holártica , se encuentra comúnmente en Europa , Asia y América del Norte y solo recientemente se descubrió en Nueva Zelanda , donde se la confundió por primera vez con un agromícido minador de hojas. [3] [6] El género Scaptomyza contiene especies que se encuentran en todos los continentes excepto la Antártida . [12]

Filogenia

Scaptomyza flava pertenece al orden Diptera , la familia Drosophilidae y el género Scaptomyza junto con alrededor de otras 272 especies. [13] Scaptomyza es un género monofilético anidado dentro del linaje parafilético Drosophila que incluye a D. mojavensis , D. virliis y D. grimshawi . [14] El género Scaptomyza es hermano o parafilético con respecto a la radiación hawaiana de Drosophila . [15] [16] [17] [18] Scaptomyza flava es un miembro del subgénero Scaptomyza , que es el único subgénero en Scaptomyza conocido que incluye especies mineras de hojas obligadas. [7] Sin embargo, S. flavella, del subgénero Bunostoma , es un minador facultativo de las hojas del apio marino de Nueva Zelanda, pero las hembras adultas ovipositan en hojas en descomposición y, por lo tanto, las hojas vivas son atacadas por larvas que se trasladan desde las hojas en descomposición. [19]

Scaptomyza flava fue descrita originalmente como Drosophila flava en 1823, pero luego fue redescrita como Scaptomyza flava cuando se erigió el género Scaptomyza (basado en diferencias morfológicas con otras Drosophila , incluyendo alas más largas en relación con la longitud del cuerpo). La especie también ha sido referida previamente como S. apicalis y S. flaveola . [8] El pariente vivo más estrechamente relacionado de S. flava es S. montana , que forma un clado hermano de S. nigrita . [8] [20] Más distantemente relacionado con Scaptomyza, que se alimenta de mostaza, está S. graminum , que se alimenta de Caryophyllaceae.

Historia de vida

Ciclo vital

En cautiverio, la duración del ciclo de vida de Scaptomyza flava es de aproximadamente tres semanas, con un período de crecimiento promedio de huevo a adulto de alrededor de 20,52 días. La duración del ciclo de vida es más del doble que la de las Drosophila que se alimentan de levaduras como D. melanogaster , una diferencia probablemente debida al hecho de que las hojas son menos nutritivas [21] y generan una potente respuesta de defensa química contra los huevos y las larvas minadoras de hojas. [8] [22] [23]

Al igual que otras hembras adultas del subgénero Scaptomyza, tienen valvas ovipositoras altamente esclerotizadas (endurecidas y oscurecidas) que están tachonadas con 20-30 sensilas similares a dientes. [24] Los ovipositores dentados se utilizan tanto como órgano trófico como órgano de puesta de huevos. Para hacer un agujero, las hembras se arrastran hasta el lado inferior de la hoja y, utilizando el extremo romo del ovipositor, mueven las dos valvas de un lado a otro, tallando un agujero (también llamado punteado) en la hoja, generalmente dejando intacta la epidermis superior. Una vez que retraen el ovipositor de la herida, giran en sentido antihorario y extienden la probóscide para beber el jugo que se filtra en la herida. [8] [24] Las hembras adultas a menudo tienen abdómenes verdes como resultado. Los huevos se ponen en punciones de alimentación introducidas en la planta huésped por la hembra. Las larvas eclosionan alrededor de 48 horas después de que la hembra deposita los huevos en la punción. Una vez que nacen, las larvas se alimentan del tejido del mesófilo dentro de las hojas y hacen una mina serpenteante a medida que avanzan hacia el pecíolo y crean una mina de manchas a medida que maduran (completar dos mudas más era una larva) o se mudan a una nueva hoja. La mayoría de los individuos permanecen en la misma planta a través de múltiples etapas de desarrollo. [8] Las larvas luego permanecen en las hojas o pupan en el suelo. [6] [8]

Scaptomyza flava hembra
Scaptomyza flava macho

Apareamiento

Scaptomyza flava participa en el apareamiento anisógamo , como la mayoría de los animales. Cuando los machos se encuentran con hembras en un laboratorio, tardan entre dos y tres minutos en iniciar los rituales de apareamiento. Por lo general, un macho se acerca a una hembra y, en una muestra de cortejo, bate sus alas y toca su cuerpo con sus patas delanteras. Las hembras se quedan quietas mientras el macho las monta y se produce la cópula . La cópula ininterrumpida suele durar unos veinte minutos. Después del apareamiento, los machos hacen vibrar sus alas y dejan a la hembra atrás, sin mostrar ningún interés. [6]

Las exhibiciones de apareamiento diferían en frecuencia entre los machos apareados y los vírgenes. Los machos apareados tienen significativamente más probabilidades de practicar el comportamiento de cortejo y aparearse con éxito que las moscas vírgenes. Esto sugiere que los machos de S. flava son capaces de aprender de la experiencia de apareamiento anterior. Este comportamiento también se ha informado en la D. melanogaster, pariente lejana . [6] En el laboratorio, el 90% de las moscas se aparean una o dos veces, y un porcentaje mucho menor se aparea tres o más veces. [25] Los patrones de apareamiento de S. flava están vinculados a su ritmo circadiano . [25]

Oviposición y fertilidad

La Scaptomyza flava comienza a oviponer aproximadamente 2,7 días después de la emergencia, y alcanza su punto máximo entre cinco y diez días después de la emergencia. A lo largo de su vida, la hembra promedio produce aproximadamente 130 huevos, de los cuales aproximadamente 71 fueron fertilizados. [25] Tanto la oviposición como la fertilidad alcanzan su punto máximo dentro de los primeros cinco a diez días después de la emergencia, y aproximadamente el 50 % de los huevos viables se ponen dentro de los primeros 14 días desde que la hembra comenzó a oviponer. [25]

Fuentes de alimentación

Dieta

Las larvas de Scaptomyza flava son endoparásitas herbívoras porque viven, consumen y completan todo su desarrollo inmaduro en las hojas de plantas vivas. Las hembras adultas, al igual que las de Agromyzidae, también son herbívoras porque crean punciones de alimentación con sus ovipositores y se alimentan de los exudados de las hojas que se filtran en las heridas.

Larvas

Las larvas de Scaptomyza flava dependen de plantas vivas como fuente de alimento, a diferencia de otros insectos herbívoros que pueden digerir materia vegetal en descomposición. [22] Las larvas de Scaptomyza flava viven y se alimentan de plantas en Brassicales. [8] [6] La mayoría de los demás drosófilos se alimentan de una mezcla de levadura, bacterias y tejido vegetal en descomposición y pueden criarse en medios que contengan levadura, pero S. flava no completa el desarrollo en estos ni en ningún otro medio probado. El nivel trófico de S. flava es más similar al de un pulgón que se alimenta de líquidos basado en perfiles de nitrógeno altamente agotados. [21] Un beneficio de este comportamiento es la protección contra patógenos , pero esto tiene el precio de una mayor susceptibilidad al ataque de parasitoides. [8] Por otro lado, la planta también aumenta enormemente las concentraciones químicas defensivas después de percibir el ataque de S. flava a través de la vía asmonato de la planta. [8] Aguas abajo de la vía del jasmonato hay genes involucrados en la biosíntesis de glucosinolatos , que se regulan positivamente después del ataque. Algunos glucosinolatos (alifáticos) se descomponen en aceites de mostaza estables ( isotiocianatos ), que persisten en el medio ambiente (y se encuentran en el wasabi), pero son moléculas altamente electrofílicas y tóxicas que se unen rápidamente al ADN y a los residuos de cisteína y lisina en las células. Tanto S. flava como D. melanogaster utilizan la vía del ácido mercaptúrico, como los humanos, para desintoxicar los aceites de mostaza. [22] Sin embargo, las enzimas glutatión S -transferasas en las especies de Scaptomyza que se alimentan de Brassicales son más eficientes que cualquier otra conocida de cualquier animal en la desintoxicación de los aceites de mostaza. [21]

Daños a las hojas de Brassica causados ​​por el minador de hojas

Adulto

Las hembras adultas también se alimentan de las mismas plantas que las larvas, pero en lugar de comerlas desde dentro, se alimentan de las secreciones vegetales que producen las perforaciones que hacen con sus ovipositores . [8]

Evolución de la herbivoría

La herbivoría no es exclusiva del género Scaptomyza : un tercio de los órdenes de insectos vivos incluyen especies herbívoras y la mitad de todas las especies de insectos vivos son herbívoras. [26] Por lo tanto, la herbivoría es la historia de vida más exitosa desde una perspectiva evolutiva. En los dípteros, la herbivoría ha evolucionado al menos 25 veces de forma independiente. [27] Específicamente, se espera que la herbivoría en Scaptomyza haya evolucionado entre seis y dieciséis millones de años atrás, y las estimaciones más recientes sitúan este evento evolutivo hace aproximadamente 13,5 millones de años. [12] [28] La mayoría de las especies de Scaptomyza no son herbívoras y más de la mitad de todas las especies vivas (pero no hay minadores de hojas conocidos) son nativas de Hawái, donde tienen diversas historias de vida, desde parasitoides de sacos de huevos de araña hasta reproducción de hojas (alimentándose de microbios e incluso quizás artrópodos muertos atrapados en superficies pegajosas [15] [12] ).

Los análisis filogenéticos moleculares sugieren que la herbivoría evolucionó solo una vez en el género Scaptomyza . [12] Otras especies de la familia Drosophilidae tienen una fuerte afinidad para detectar los olores de la levadura , un rasgo que S. flava ha perdido evolutivamente porque su linaje ha perdido tres genes que codifican receptores de olores (OR) que se sabe que en D. melanogaster están sintonizados con ésteres alifáticos producidos por la levadura. Cuando los genes que codifican estos OR se eliminan en D. melanogaster, las moscas pueden no orientarse adecuadamente hacia estos volátiles. [28] La pérdida de la capacidad de detectar la levadura está asociada con eventos evolutivos que conducen a la evolución de la herbivoría. [28] Las hembras adultas de S. flava se sienten atraídas por los aceites de mostaza volátiles, [29] como la mayoría de los especialistas de las plantas Brassicales, que han cooptado estos químicos tóxicos como indicadores de sus plantas hospedantes. [30] Se encontró que los OR codificados por genes Or67b recientemente duplicados que evolucionaron rápidamente en el linaje de S. flava estaban ajustados a aceites de mostaza volátiles, que son emitidos por plantas Brassicales heridas. [29] Un fenómeno similar ocurrió independientemente en la polilla dorso de diamante Plutella xylostella . [31] Cuando uno de estos OR, Or67b, se expresa en dos circuitos olfativos diferentes en D. melanogaster , las moscas se sienten atraídas por los aceites de mostaza, lo que no es típico de D. melanogaster . Esto sugiere que S. flava Or67b, cuando se expresa artificialmente en un pariente lejano que se alimenta de levadura en fruta podrida, puede resultar en un comportamiento de atracción hacia los aceites de mostaza, lo que posiblemente explique cómo la especialización en plantas tóxicas puede ocurrir a través de cambios genéticos simples. También se sabe que el salicilato de metilo, un derivado de la ubicua hormona vegetal ácido salicílico, atrae a las moscas S. flava en trampas en Nueva Zelanda. [32] S. flava no se captura en trampas cebadas con plátanos y levadura. La mayoría de los drosófilos, especialmente los asociados con la fruta podrida, encuentran etanol y han desarrollado mecanismos para tolerarlo e incluso usarlo para combatir los parasitoides. [33] Aunque los drosófilos son vectores de levadura y pueden ser mutualistas, las plantas atacadas por Scaptomyza son dañadas por estas moscas. [34] Como resultado, montan una rápida defensa química para convertir el alimento y el hábitat en un entorno inhóspito después de detectar la herida. [35]Cuando las vías del jasmonato o glucosinolato se eliminan en las plantas hospedantes, las larvas de S. flava tienen un mejor desempeño, lo que sugiere que estas vías están involucradas en un nivel de resistencia a las moscas. [8] [22] Por el contrario, cuando las plantas son tratadas previamente con jasmonato, las larvas tienen un peor desempeño. [35]

Evitando los glucosinolatos

Las especies S. flava y S. nigrita han desarrollado la capacidad de metabolizar parcialmente los productos de hidrólisis de los glucosinolatos, que incluyen los isotiocianatos, y son sustancias químicas tóxicas sintetizadas por las plantas de mostaza y parientes como mecanismo de defensa. Otras especies de la familia Drosophilidae son en gran medida incapaces de superar estas toxinas. Los glucosinolatos desempeñan un papel en la regulación de los genes relacionados con el estrés en S. flava, lo que es diferente de los sistemas especializados que otros herbívoros han desarrollado para evitar el efecto tóxico de la sustancia química. [22]

Mutualismo

Las hembras adultas y larvas de Scaptomyza flava inoculan bacterias en sus plantas hospedantes para ayudar en el proceso de alimentación. Específicamente, S. flava puede introducir Pseudomonas syringae en la planta hospedante, lo que interfiere con las defensas antiherbívoras de la planta hospedante. Tanto las hembras adultas como las larvas son capaces de actuar como vectores bacterianos. Las larvas de Scaptomyza flava no solo prefieren comer plantas infectadas con P. syringae , sino que también se ha demostrado que se desarrollan más rápido cuando se alimentan de plantas infectadas. [36] El pariente S. nigrita tiene una asociación compleja con las bacterias de la filosfera, que probablemente incluye antagonismos, mutualismos y comensalismos entre el minador de hojas y los microbios. [37]

Transferencia horizontal de genes

Se han identificado genes que codifican toxinas bacterianas o derivadas de fagos en la secuencia del genoma de S. flava . [38] Anteriormente se había descubierto que estos genes estaban asociados con genes de carga de toxinas del fago APSE que confieren resistencia al ataque de avispas parasitoides cuando los genes del fago se encuentran en bacterias endosimbióticas que infectan a los pulgones. [39]

Interacciones con humanos

La Scaptomyza flava se alimenta de diversos productos agrícolas básicos y suele dañar las plantas en las que vive. Si bien las infestaciones graves de diversos cultivos alimentarios pueden reducir los rendimientos, no se suelen tomar medidas específicas para contener la mosca. [6]

Como organismo modelo

La Scaptomyza flava se está desarrollando como modelo para estudiar las interacciones entre plantas y artrópodos herbívoros. [8] [40] Debido a que está relativamente relacionada con la "mosca de la fruta" Drosophila melanogaster , la evolución de los genes en su genoma se caracteriza más fácilmente. Como resultado, se pueden identificar más fácilmente los cambios genéticos específicos que han evolucionado y que están involucrados en la adaptación a la alimentación de plantas vivas. La mosca ataca a Arabidopsis thaliana en la naturaleza y debido a que esta planta huésped es el principal organismo modelo vegetal, los genes importantes en la mediación de la interacción con S. flava , particularmente aquellos involucrados en la resistencia, se pueden estudiar fácilmente. [41]

Referencias

  1. ^ "Definición latina de: flavus, flava, flavum (ID: 20735) - Diccionario y gramática latina - Latdict". latin-dictionary.net . Consultado el 2019-10-02 .
  2. ^ "Scaptomyza flava | NatureSpot". www.naturespot.org.uk . Consultado el 30 de septiembre de 2019 .
  3. ^ ab "Scaptomyza (Scaptomyza) flava (Fallen, 1823) | Fauna Europaea". fauna-eu.org . Consultado el 30 de septiembre de 2019 .
  4. ^ ab Petruzzello M (diciembre de 2014). «Lista de plantas de la familia Brassicaceae». Enciclopedia Británica . Consultado el 30 de septiembre de 2019 .
  5. ^ "Scaptomyza (Scaptomyza) flava (Fallen, 1823) | Fauna Europaea". fauna-eu.org . Consultado el 30 de septiembre de 2019 .
  6. ^ abcdefghi Martin NA (enero de 2004). "Historia de un invasor, Scaptomyza flava (Fallen, 1823) (Diptera: Drosophilidae)". Revista de Zoología de Nueva Zelanda . 31 (1): 27–32. doi : 10.1080/03014223.2004.9518356 . ISSN  0301-4223. S2CID  85011777.
  7. ^ ab Hackman W (1959). "Sobre el género Scaptomyza Hardy (Diptera Drosophilidae)". Acta Zoológica Fennica . 97 : 1–72.
  8. ^ abcdefghijklm Whiteman NK, Groen SC, Chevasco D, Bear A, Beckwith N, Gregory TR, et al. (marzo de 2011). "Explotación de la interfaz planta-herbívoro con una Drosophila de Arabidopsis minadora de hojas". Ecología molecular . 20 (5): 995–1014. doi :10.1111/j.1365-294X.2010.04901.x. PMC 3062943 . PMID  21073583. 
  9. ^ Walsh DB, Bolda MP, Goodhue RE, Dreves AJ, Lee J, Bruck DJ, et al. (1 de abril de 2011). "Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae): plaga invasora de frutos blandos en maduración que expande su rango geográfico y potencial de daño". Revista de Gestión Integrada de Plagas . 2 (1): G1–G7. doi : 10.1603/ipm10010 . ISSN  2155-7470. S2CID  86098875.
  10. ^ Kim BY, Wang JR, Miller DE, Barmina O, Delaney E, Thompson A, et al. (julio de 2021). "Conjuntos altamente contiguos de 101 genomas de drosófilas". eLife . 10 : e66405. doi : 10.7554/eLife.66405 . PMC 8337076 . PMID  34279216. 
  11. ^ Markow TA, O'Grady PM (2006). Drosophila: una guía para la identificación y el uso de especies. Elsevier. ISBN 0-08-045409-7.OCLC 74908130  .
  12. ^ abcd Lapoint RT, O'Grady PM, Whiteman NK (octubre de 2013). "Diversificación y dispersión de los Drosophilidae hawaianos: la evolución de Scaptomyza". Filogenética molecular y evolución . 69 (1): 95–108. doi :10.1016/j.ympev.2013.04.032. PMC 3769216 . PMID  23669011. 
  13. ^ "ADW: Scaptomyza: CLASIFICACIÓN". animaldiversity.org . Consultado el 30 de septiembre de 2019 .
  14. ^ Clark AG, Eisen MB, Smith DR, Bergman CM, Oliver B, Markow TA, et al. (noviembre de 2007). "Evolución de genes y genomas en la filogenia de Drosophila". Nature . 450 (7167): 203–218. Bibcode :2007Natur.450..203C. doi : 10.1038/nature06341 . PMID  17994087. S2CID  2416812.
  15. ^ ab O'Grady P, Desalle R (abril de 2008). "Fuera de Hawái: el origen y la biogeografía del género Scaptomyza (Diptera: Drosophilidae)". Biology Letters . 4 (2): 195–199. doi :10.1098/rsbl.2007.0575. PMC 2429922 . PMID  18296276. 
  16. ^ Lapoint RT, O'Grady PM, Whiteman NK (octubre de 2013). "Diversificación y dispersión de los Drosophilidae hawaianos: la evolución de Scaptomyza". Filogenética molecular y evolución . 69 (1): 95–108. doi :10.1016/j.ympev.2013.04.032. PMC 3769216 . PMID  23669011. 
  17. ^ Katoh T, Izumitani HF, Yamashita S, Watada M (enero de 2017). "Múltiples orígenes de los drosófilos hawaianos: filogeografía de Scaptomyza Hardy (Diptera: Drosophilidae)". Entomological Science . 20 (1): 33–44. doi :10.1111/ens.12222. ISSN  1343-8786. S2CID  88697632.
  18. ^ Church SH, Extavour CG (9 de julio de 2021). "La filotranscriptómica revela discordancia en la filogenia de Drosophila y Scaptomyza hawaianas (Diptera: Drosophilidae)". bioRxiv . doi :10.1101/2021.07.08.451653. S2CID  235799423.
  19. ^ Martin NA (2014). "Scaptomyza (Bunostoma) flavella (Diptera: Drosophilidae) y la evolución de la minería de hojas". The Weta . 47 : 8–12.
  20. ^ Suvorov A, Kim BY, Wang J, Armstrong EE, Peede D, D'Agostino ER, et al. (enero de 2021). "Introgresión generalizada a lo largo de una filogenia de 155 genomas de Drosophila". bioRxiv . 32 (1): 111–123.e5. doi :10.1016/j.cub.2021.10.052. PMC 8752469 . PMID  34788634. S2CID  244168995. 
  21. ^ abc Gloss AD, Dittrich AC, Lapoint RT, Goldman-Huertas B, Verster KI, Pelaez JL, et al. (12 de septiembre de 2019). "La evolución de la herbivoría remodela el genoma de Drosophila": 767160. doi :10.1101/767160. S2CID  203409107. {{cite journal}}: Requiere citar revista |journal=( ayuda )
  22. ^ abcde Whiteman NK, Gloss AD, Sackton TB, Groen SC, Humphrey PT, Lapoint RT, et al. (2012). "Genes involucrados en la evolución de la herbivoría por una mosca Drosophilid minadora de hojas". Genome Biology and Evolution . 4 (9): 900–916. doi :10.1093/gbe/evs063. PMC 3516228 . PMID  22813779. 
  23. ^ Gloss AD, Vassão DG, Hailey AL, Nelson Dittrich AC, Schramm K, Reichelt M, et al. (septiembre de 2014). "La evolución en una antigua vía de desintoxicación está acoplada con una transición a la herbivoría en los drosophilidae". Biología molecular y evolución . 31 (9): 2441–2456. doi :10.1093/molbev/msu201. PMC 4137718 . PMID  24974374. 
  24. ^ ab Pelaez JN, Gloss AD, Ray JF, Whiteman NK (8 de mayo de 2020). "Evolución y base genética del ovipositor que penetra en las plantas, una adaptación clave en Drosophilidae herbívoros". bioRxiv . doi :10.1101/2020.05.07.083253. S2CID  218582538.
  25. ^ abcd Shakeel M, He XZ, Martin NA, Hanan A, Wang Q (1 de agosto de 2009). "Periodicidad diurna del apareamiento por eclosión de adultos y la oviposición del minador europeo de hojas Scaptomyza flava (Falln) (Diptera Drosophilidae)". Protección de plantas de Nueva Zelanda . 62 : 80–85. doi : 10.30843/nzpp.2009.62.4789 . ISSN  1179-352X.
  26. ^ Wiens JJ, Lapoint RT, Whiteman NK (septiembre de 2015). "La herbivoría aumenta la diversificación en los clados de insectos". Nature Communications . 6 (1): 8370. Bibcode :2015NatCo...6.8370W. doi :10.1038/ncomms9370. PMC 4598556 . PMID  26399434. 
  27. ^ Wiegmann BM, Trautwein MD, Winkler IS, Barr NB, Kim JW, Lambkin C, et al. (abril de 2011). "Radiaciones episódicas en el árbol de la vida de las moscas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 108 (14): 5690–5695. Bibcode :2011PNAS..108.5690W. doi : 10.1073/pnas.1012675108 . PMC 3078341 . PMID  21402926. 
  28. ^ abc Goldman-Huertas B, Mitchell RF, Lapoint RT, Faucher CP, Hildebrand JG, Whiteman NK (marzo de 2015). "Evolución de la herbivoría en Drosophilidae vinculada a la pérdida de comportamientos, respuestas antenales, receptores de olores y dieta ancestral". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 112 (10): 3026–3031. Bibcode :2015PNAS..112.3026G. doi : 10.1073/pnas.1424656112 . PMC 4364187 . PMID  25624509. 
  29. ^ ab Matsunaga T, Reisenman CE, Goldman-Huertas B, Brand P, Miao K, Suzuki HC, Verster KI, Ramírez SR, Whiteman NK (28 de diciembre de 2019). "Evolución de los receptores olfativos sintonizados con los aceites de mostaza en los herbívoros Drosophilidae". bioRxiv . doi : 10.1101/2019.12.27.889774 . S2CID  233256068.
  30. ^ Fraenkel GS (mayo de 1959). "La razón de ser de las sustancias vegetales secundarias; estos extraños productos químicos surgieron como un medio para proteger a las plantas de los insectos y ahora guían a los insectos hacia el alimento". Science . 129 (3361): 1466–1470. doi :10.1126/science.129.3361.1466. PMID  13658975.
  31. ^ Cai L, Cheng X, Qin J, Xu W, You M (diciembre de 2020). "Expresión, purificación y caracterización de tres proteínas de unión a odorantes de la polilla dorso de diamante, Plutella xylostella". Insect Molecular Biology . 29 (6): 531–544. doi : 10.1111/imb.12664 . PMID  32715559. S2CID  220797363.
  32. ^ Orre GU, Wratten SD, Jonsson M, Hale RJ (abril de 2010). "Efectos de una volátil vegetal inducida por herbívoros sobre artrópodos de tres niveles tróficos en brassicas". Control biológico . 53 (1): 62–67. doi :10.1016/j.biocontrol.2009.10.010. ISSN  1049-9644.
  33. ^ Milan NF, Kacsoh BZ, Schlenke TA (marzo de 2012). "El consumo de alcohol como automedicación contra parásitos transmitidos por la sangre en la mosca de la fruta". Current Biology . 22 (6): 488–493. doi :10.1016/j.cub.2012.01.045. PMC 3311762 . PMID  22342747. 
  34. ^ Collinge SK, Louda SM (1988-09-01). "Patrones de uso de recursos por un minador de hojas Drosophilid (Diptera) en una crucífera nativa". Anales de la Sociedad Entomológica de América . 81 (5): 733–741. doi :10.1093/aesa/81.5.733. ISSN  1938-2901.
  35. ^ ab Humphrey PT, Gloss AD, Alexandre NM, Villalobos MM, Fremgen MR, Groen SC, et al. (mayo de 2016). "La aversión y la atracción a compuestos secundarios dañinos de las plantas dan forma conjuntamente a la ecología de forrajeo de un herbívoro especialista". Ecología y evolución . 6 (10): 3256–3268. doi :10.1002/ece3.2082. PMC 4829532 . PMID  27096082. 
  36. ^ Groen SC, Humphrey PT, Chevasco D, Ausubel FM, Pierce NE, Whiteman NK (enero de 2016). "Pseudomonas syringae mejora la herbivoría al suprimir la explosión de oxígeno reactivo en Arabidopsis". Journal of Insect Physiology . 84 : 90–102. doi :10.1016/j.jinsphys.2015.07.011. PMC 4721946 . PMID  26205072. 
  37. ^ Humphrey PT, Whiteman NK (febrero de 2020). "La herbivoría de los insectos reconfigura el microbioma de las hojas nativas". Nature Ecology & Evolution . 4 (2): 221–229. doi :10.1038/s41559-019-1085-x. PMC 7332206 . PMID  31988447. 
  38. ^ Verster KI, Wisecaver JH, Karageorgi M, Duncan RP, Gloss AD, Armstrong EE, et al. (octubre de 2019). Malik H (ed.). "Transferencia horizontal de genes de toxina distensible citoletal bacteriana B a insectos". Biología molecular y evolución . 36 (10): 2105–2110. doi :10.1093/molbev/msz146. PMC 6759069 . PMID  31236589. 
  39. ^ Oliver KM, Degnan PH, Hunter MS, Moran NA (agosto de 2009). "Los bacteriófagos codifican factores necesarios para la protección en un mutualismo simbiótico". Science . 325 (5943): 992–994. Bibcode :2009Sci...325..992O. doi :10.1126/science.1174463. PMC 5473335 . PMID  19696350. 
  40. ^ "Investigación en el Laboratorio Whiteman". El Laboratorio Whiteman . Hemos desarrollado un nuevo sistema modelo para estudiar las interacciones entre plantas y herbívoros, que involucran a la mosca drosófila Scaptomyza flava y la planta Arabidopsis thaliana , a la que ataca en la naturaleza.
  41. ^ Mitchell-Olds, Thomas (diciembre de 2001). "Arabidopsis thaliana y sus parientes silvestres: un sistema modelo para la ecología y la evolución". Tendencias en ecología y evolución . 16 (12): 693–700. doi :10.1016/s0169-5347(01)02291-1. ISSN  0169-5347.

Enlaces externos