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Desoxirribonucleasa IV

La desoxirribonucleasa IV (inducida por fago T4) ( EC 3.1.21.2, endodesoxirribonucleasa IV (inducida por fago T4) , endonucleasa IV de E. coli , endodesoxirribonucleasa , redoxiendonucleasa , desoxirriboendonucleasa , endonucleasa II de Escherichia coli , endonucleasa II , ADN-adenina-transferasa ) cataliza la degradación de nucleótidos [1] en DsDNA atacando el extremo 5'-terminal. [2] [3] [4]

La desoxirribonucleasa IV es un tipo de desoxirribonucleasa que tiene una actividad tanto exonucleolítica como endonucleolítica. [1] Funciona en sitios abásicos o apurínicos-apirimidínicos cuando la célula está experimentando la vía de reparación por escisión de nucleótidos . [5] Además, la endonucleasa IV consta de varias actividades como la endonucleasa AP, la 3'-diesterasa, la exonucleasa 3'->5' y la 3'fosfatasa. [6]

La endonucleasa IV está codificada por denB del bacteriófago T4 y su secuencia de unión es 5′-dT||dCdAdCdTdTdC-3′. Se ha descubierto que el residuo de serina 176 desempeña un papel crucial en el aumento de la tasa de hidrólisis de la endonucleasa de una secuencia de consenso que contiene citidina. La endonucleasa IV se encuentra dentro de una categoría estructuralmente similar a la endonucleasa I apirimidinina (APE1). [7]

Descubrimiento

La desoxirribonucleasa IV se aisló por primera vez de los tejidos de conejo en 1968. Específicamente, Lindahl la encontró en la médula ósea de conejo. [8] Y se determinó que su peso molecular era de 42.000 dalton . Se descubrió que esta enzima se asemeja a varias actividades de endonucleasa microbiana de la ADN polimerasa I encontrada en Escherichia coli , que parecen ser necesarias para la reparación y recombinación del ADN. [9] También se asemeja a la gamma exonucleasa, que realiza una función importante en la recombinación de bacteriófagos. [10]

Estructura

La DNasa IV está compuesta por 185 residuos de aminoácidos con iones de magnesio que actúan como cofactor. Los iones metálicos divalentes como Mg²⁺ actúan como cofactor durante la escisión de los mononucleótidos 5'. [11] La DNasa IV prefiere atacar el ADN nativo actuando como una endonucleasa con iones metálicos Mg++ o Mn++. [12] Su núcleo de barril beta TIM está rodeado de hélices con tres iones metálicos (tres Zn2+ o dos Zn2+ y un Mn2+) que desempeñan un papel crucial en la reparación de la escisión de AP. [13]

Función

La DNasa IV ataca al dsADN en los extremos 5' liberando mononucleótidos 5', pero no ataca a ningún monómero en polidesoxirribonucleótidos de forma aleatoria. Corta los polidesoxirribonucleótidos de forma exonucleolítica desde el extremo 5', lo que significa que elimina una cadena de nucleótidos que está adyacente al extremo terminal 5' en lugar de cortar un nucleótido ubicado en el medio de la cadena. La DNasa IV funciona atacando múltiples cadenas de polinucleótidos al mismo tiempo. [10] Dado que no corta el dsADN de forma procesiva, la tasa de hidrólisis de esta enzima es más rápida que la del ADN nativo en términos de cinética. [14] La DNasa IV no reconoce secuencias específicas en el ADN para la escisión no escalonada. Sin embargo, requiere dos pares de bases en un sitio de escisión, y el otro sitio de escisión del ADN bicatenario debe tener más de 10 pares de bases. [12]

Actividades enzimáticas en el entorno celular y el ADN

El 70% de la actividad total de la DNasa IV se encontró en el citoplasma, mientras que el 30% se encontró en los núcleos celulares. [1] En el cuerpo humano, la DNasa IV fue necesaria para la escisión de un intermedio de reacción generado por el desplazamiento de la cadena molde durante el llenado de huecos. [15]

Durante la actividad de la endonucleasa, se produce un cambio conformacional en el ADN de una manera que expone el sitio abásico doblando el ADN 90 grados, lo que implica voltear la fracción de azúcar hacia un pequeño bolsillo que no formaría el par de bases Watson-Crick. [13]

La ADNasa IV actúa sobre el ADN bicatenario en su reparación rompiendo los enlaces fosfodiéster, pero el número de escisiones realizadas por esta enzima es menor que el grado de polimerización del ADN. [14]

Diferencia entre la DNasa III y la DNasa IV

En extractos celulares crudos de órganos linfoides, la DNasa III y la DNasa IV muestran actividades importantes porque la actividad de la DNasa I se inhibe. Las actividades de la DNasa III y la DNasa IV dependen de dos Mg++ como cofactores y estas enzimas se localizan en los núcleos celulares. Aunque requieren el mismo metal divalente para funcionar, hay una diferencia importante en la liberación de polinucleótidos. La DNasa III escinde una sola cadena de ADN desde el extremo terminal 3', pero la DNasa IV escinde una doble cadena de ADN desde el extremo terminal 5'. [10] Debido a que la DNasa III degrada el ADN de cadena sencilla, la tasa de hidrólisis de la DNasa III es más rápida que la de la DNasa IV. [1]

Véase también

Referencias

  1. ^ abcd Robins P, Pappin DJ, Wood RD, Lindahl T (noviembre de 1994). "Homología estructural y funcional entre la ADNasa IV de mamíferos y el dominio 5'-nucleasa de la ADN polimerasa I de Escherichia coli". The Journal of Biological Chemistry . 269 (46): 28535–28538. doi : 10.1016/s0021-9258(19)61935-6 . PMID  7961795.
  2. ^ Friedberg EC, Goldthwait DA (marzo de 1969). "Endonucleasa II de E. coli. I. Aislamiento y purificación". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 62 (3): 934–940. Bibcode :1969PNAS...62..934F. doi : 10.1073/pnas.62.3.934 . PMC 223688 . PMID  4895219. 
  3. ^ Hadi SM, Goldthwait DA (diciembre de 1971). "Endonucleasa II de Escherichia coli. Degradación del ácido desoxirribonucleico parcialmente depurinizado". Bioquímica . 10 (26): 4986–4993. doi :10.1021/bi00802a024. PMID  4944066.
  4. ^ Sadowski PD, Hurwitz J (noviembre de 1969). "Rotura enzimática del ácido desoxirribonucleico. I. Purificación y propiedades de la endonucleasa II de Escherichia coli infectada con el fago T4". The Journal of Biological Chemistry . 244 (22): 6182–6191. doi : 10.1016/S0021-9258(18)63523-9 . PMID  4310836.
  5. ^ Friedberg EC, Hadi SM, Goldthwait DA (noviembre de 1969). "Endonucleasa II de Escherichia coli. II. Propiedades enzimáticas y estudios sobre la degradación del ácido desoxirribonucleico alquilado y nativo". The Journal of Biological Chemistry . 244 (21): 5879–5889. doi : 10.1016/S0021-9258(18)63556-2 . PMID  4981786.
  6. ^ Kerins SM, Collins R, McCarthy TV (enero de 2003). "Caracterización de la actividad de una exonucleasa 3'-5' de la endonucleasa IV". The Journal of Biological Chemistry . 278 (5): 3048–3054. doi : 10.1074/jbc.m210750200 . PMID  12444080.
  7. ^ Hirano N, Ohshima H, Sakashita H, Takahashi H (29 de noviembre de 2007). "La Ser176 de la endonucleasa IV de T4 es crucial para la escisión restringida y polarizada específica de dC del ADN monocatenario implicado en la restricción del ADN que contiene dC en la Escherichia coli huésped". Nucleic Acids Research . 35 (20): 6692–6700. doi :10.1093/nar/gkm722. PMC 2175332 . PMID  17913749. 
  8. ^ Grondal-Zocchi, G.; Verly, WG (15 de enero de 1985). "Desoxirribonucleasa IV de la cromatina de hígado de rata y la escisión de sitios apurínicos del ADN depurinado". The Biochemical Journal . 225 (2): 535–542. doi :10.1042/bj2250535. ISSN  0264-6021. PMC 1144621 . PMID  3977844. 
  9. ^ Lindahl T, Gally JA, Edelman GM (febrero de 1969). "Desoxirribonucleasa IV: una nueva exonucleasa de tejidos de mamíferos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 62 (2): 597–603. Bibcode :1969PNAS...62..597L. doi : 10.1073/pnas.62.2.597 . PMC 277851 . PMID  5256235. 
  10. ^ abc Lindahl T, Gally JA, Edelman GM (febrero de 1969). "Desoxirribonucleasa IV: una nueva exonucleasa de tejidos de mamíferos". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 62 (2): 597–603. doi : 10.1073/pnas.62.2.597 . PMC 277851 . PMID  5256235. 
  11. ^ Mishra NC (1995). Biología molecular de las nucleasas. Boca Raton: CRC Press. ISBN 978-0-8493-7658-0.OCLC 31436640  .
  12. ^ ab Campbell, Aine M.; Winder, Frank G. (agosto de 1983). "Propiedades de la desoxirribonucleasa 4 de Aspergillus nidulans". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Estructura de proteínas y enzimología molecular . 746 (3): 125–132. doi :10.1016/0167-4838(83)90065-1. PMID  6349692.
  13. ^ ab Tsutakawa SE, Lafrance-Vanasse J, Tainer JA (julio de 2014). "Los avances en reparación, licencia y fidelidad del ADN: las nucleasas de reparación del ADN y el ARN esculpen el ADN para medir dos veces y cortar una vez". Reparación del ADN . 19 : 95–107. doi :10.1016/j.dnarep.2014.03.022. PMC 4051888 . PMID  24754999. 
  14. ^ ab Lindahl, Tomas (febrero de 1971). "El patrón de acción de la desoxirribonucleasa IV de los mamíferos". Revista Europea de Bioquímica . 18 (3): 415–421. doi :10.1111/j.1432-1033.1971.tb01258.x. ISSN  0014-2956. PMID  5100828.
  15. ^ Klungland A, Lindahl T (junio de 1997). "Segunda vía para completar la reparación por escisión de bases del ADN humano: reconstitución con proteínas purificadas y requerimiento de DNasa IV (FEN1)". The EMBO Journal . 16 (11): 3341–3348. doi :10.1093/emboj/16.11.3341. PMC 1169950 . PMID  9214649. 

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