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Fragmidium violaceum

Phragmidium violaceum es un patógeno vegetal originario de Europa , África y Oriente Medio . Infecta principalmente a las especies de Rubus .

Se ha utilizado en el control biológico de especies invasoras de mora en Chile , Australia y Nueva Zelanda . En 2005, se descubrió que crecía en plantas de mora del Himalaya en Oregón . Esta introducción accidental no parece estar infectando la vegetación nativa, por lo que ofrece esperanzas para reducir el impacto de las moras invasoras en el noroeste del Pacífico .

Síntomas

Plantas de mora infectadas con el hongo de la roya que muestran síntomas foliares.

Los síntomas foliares que se pueden encontrar incluyen manchas foliares moradas junto con centros amarillos y tostados. [1] Estos se pueden encontrar en la superficie superior de la hoja y pueden parecerse a la mancha foliar de Septoria . En la superficie inferior de la hoja, las pústulas amarillas a anaranjadas estarán rodeadas de un tinte púrpura. [2] Estos pueden parecerse a la roya de la caña y de la hoja. Las hojas que están severamente infectadas pueden comenzar a deshidratarse y a curvarse. Las hojas que son más viejas y están más cerca de la caña se infectarán primero y también pueden morir. Las flores y los frutos que están infectados pueden no madurar. Las infecciones del tallo, así como la defoliación continua, pueden causar la muerte regresiva de las cañas. [1] Durante el verano y el otoño, las hojas infectadas pueden comenzar a desarrollar pústulas negras, también conocidas como telia entre las uredinias .

Ciclo de la enfermedad

El patógeno es un hongo de roya macrocíclico y autoico , y produce cinco estados de esporas diferentes que representan los componentes asexuales y sexuales del ciclo de vida. [3] Las urediniosporas dicarióticas se liberan durante el verano y la primavera, mientras que las teliosporas representan la etapa de hibernación . Cuando ocurre el cruzamiento sexual, se inician las aeciosporas y urediniosporas dicarióticas. [4] Las teliosporas en la primavera experimentarán meiosis para producir basidiosporas haploides . Esto sigue a la transferencia mediada por insectos de espermatozoides desde las espermogonias de los diferentes tipos de apareamiento a las hifas receptivas . [5] Las esporas se propagan muy fácilmente y pueden propagarse por el viento.

Gestión

Síntomas de la superficie inferior de la planta infectada que muestra pústulas amarillas.

Las tácticas culturales, junto con el uso de cal y azufre durante la temporada de latencia , pueden ayudar a reducir la fuente inicial de inóculos . Las tácticas químicas funcionan para proteger los tejidos sanos de las plantas más jóvenes. [1] Al eliminar los tallos frutales viejos temprano, después de la cosecha, se evitará la propagación de la infección. Los controles químicos también pueden ser efectivos. La protección química deberá comenzar aplicando cal y azufre a las hojas infectadas. La aplicación de fungicidas durante el otoño, en el mes de septiembre, es la más beneficiosa para la salud de la planta. Puede haber desarrollo de resistencia a los hongos si se usa en exceso un solo producto. Los fungicidas son principalmente protectores, por lo tanto, no pueden erradicar la enfermedad una vez que se establece. [1] El control biológico funciona cuando una población no caracterizada y/o una mezcla de cepas de un patógeno del área de distribución nativa de la maleza objetivo se libera en el área en la que se introdujo la maleza. [3] La cepa F15 fue liberada como agente de control biológico en 1991 y 1992. [5] La liberación de cepas adicionales puede originar el potencial de aumentar la diversidad genética de la población de P. violaceum . La aparición a través de la recombinación o el aumento del tamaño efectivo de la población puede a su vez mejorar el impacto del agente de control biológico. [3] Es probable que el agente de control biológico tenga éxito, sin embargo, existe un alto potencial de fracaso de cepas adicionales debido a la cantidad de inóculos involucrados en el reclutamiento de la cepa patógena. [6] La cantidad de inóculos liberados es pequeña en comparación con el patógeno bien adaptado que existe en la población.

Referencias

  1. ^ abcd "Mora (Rubus spp.) - Roya de la zarzamora". Manuales de manejo de plagas del Pacífico Noroeste . 2015-09-11 . Consultado el 2017-12-13 .
  2. ^ "Roya de la zarzamora en las zarzamoras". www.nwberryfoundation.org . Consultado el 13 de diciembre de 2017 .
  3. ^ abc Gomez, DR; Evans, KJ; Baker, J.; Harvey, PR; Scott, ES (1 de septiembre de 2008). "Dinámica de poblaciones introducidas de Phragmidium violaceum e implicaciones para el control biológico de la zarzamora europea en Australia". Microbiología aplicada y ambiental . 74 (17): 5504–5510. doi :10.1128/AEM.02885-07. ISSN  0099-2240. PMC 2546656 . PMID  18641150. 
  4. ^ Roy, BA (1993). "Mimetismo floral por un patógeno vegetal". Nature . 362 (6415): 56–58. Bibcode :1993Natur.362...56R. doi :10.1038/362056a0. S2CID  4305506.
  5. ^ ab Craigie, JH (1927). "Descubrimiento de la función de los picnios de los hongos de la roya". Nature . 120 (3030): 765–767. Bibcode :1927Natur.120..765C. doi :10.1038/120765a0. S2CID  1583696.
  6. ^ Hopper, KR; Roush, RT (1993). "Búsqueda de pareja, dispersión, número de ejemplares liberados y éxito de las introducciones de control biológico". Ecol. Entomol . 18 (4): 321–331. doi :10.1111/j.1365-2311.1993.tb01108.x. S2CID  86740385.

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