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Transferir ARN

La interacción del ARNt y el ARNm en la síntesis de proteínas.

El ARN de transferencia (abreviado ARNt y anteriormente denominado ARNs , para ARN soluble [1] ) es una molécula adaptadora compuesta de ARN , típicamente de 76 a 90 nucleótidos de longitud (en eucariotas), [2] que sirve como vínculo físico entre los ARNm y secuencia de aminoácidos de las proteínas. El ARN de transferencia (ARNt) hace esto transportando un aminoácido a la maquinaria de síntesis de proteínas de una célula llamada ribosoma . La complementación de un codón de 3 nucleótidos en un ARN mensajero (ARNm) con un anticodón de 3 nucleótidos del ARNt da como resultado la síntesis de proteínas basada en el código del ARNm. Como tales, los ARNt son un componente necesario de la traducción , la síntesis biológica de nuevas proteínas de acuerdo con el código genético .

Descripción general

Mientras que la secuencia de nucleótidos específica de un ARNm especifica qué aminoácidos se incorporan al producto proteico del gen a partir del cual se transcribe el ARNm, la función del ARNt es especificar qué secuencia del código genético corresponde a qué aminoácido. [3] El ARNm codifica una proteína como una serie de codones contiguos, cada uno de los cuales es reconocido por un ARNt particular. Un extremo del ARNt coincide con el código genético en una secuencia de tres nucleótidos llamada anticodón. El anticodón forma tres pares de bases complementarias con un codón en el ARNm durante la biosíntesis de proteínas.

En el otro extremo del ARNt hay una unión covalente al aminoácido que corresponde a la secuencia del anticodón. Cada tipo de molécula de ARNt puede unirse a un solo tipo de aminoácido, por lo que cada organismo tiene muchos tipos de ARNt. Debido a que el código genético contiene múltiples codones que especifican el mismo aminoácido, hay varias moléculas de ARNt que portan diferentes anticodones que transportan el mismo aminoácido.

La unión covalente al extremo 3' del ARNt está catalizada por enzimas llamadas aminoacilARNt sintetasas . Durante la síntesis de proteínas, los ARNt con aminoácidos unidos se entregan al ribosoma mediante proteínas llamadas factores de elongación , que ayudan en la asociación del ARNt con el ribosoma, la síntesis del nuevo polipéptido y la translocación (movimiento) del ribosoma a lo largo del ARNm. Si el anticodón del ARNt coincide con el ARNm, otro ARNt ya unido al ribosoma transfiere la cadena polipeptídica en crecimiento desde su extremo 3' al aminoácido unido al extremo 3' del ARNt recién liberado, una reacción catalizada por el ribosoma. Una gran cantidad de nucleótidos individuales en una molécula de ARNt pueden modificarse químicamente , a menudo mediante metilación o desamidación . Estas bases inusuales a veces afectan la interacción del ARNt con los ribosomas y, a veces, aparecen en el anticodón para alterar las propiedades de emparejamiento de bases. [4]

Estructura

Estructura secundaria de hoja de trébol del ARNt
Estructura terciaria del ARNt. Cola CCA en amarillo, vástago aceptor en morado, bucle variable en naranja, brazo D en rojo, brazo Anticodon en azul con Anticodon en negro, brazo T en verde.
GIF animado en 3D que muestra la estructura del ARNt de fenilalanina de levadura (PDB ID 1ehz). Las líneas blancas indican el emparejamiento de bases mediante enlaces de hidrógeno. En la orientación que se muestra, el vástago aceptor está arriba y el anticodón abajo [5]

La estructura del ARNt se puede descomponer en su estructura primaria , su estructura secundaria (generalmente visualizada como la estructura de hoja de trébol ) y su estructura terciaria [6] (todos los ARNt tienen una estructura 3D similar en forma de L que les permite encajar en el P y sitios A del ribosoma ). La estructura de hoja de trébol se convierte en una estructura 3D en forma de L mediante el apilamiento coaxial de las hélices, que es un motivo común de la estructura terciaria del ARN . Las longitudes de cada brazo, así como el "diámetro" del bucle, en una molécula de ARNt varían de una especie a otra. [6] [7] La ​​estructura del ARNt consta de lo siguiente:

Anticodón

Un anticodón [16] es una unidad de tres nucleótidos correspondientes a las tres bases de un codón de ARNm . Cada ARNt tiene una secuencia triplete de anticodones distinta que puede formar 3 pares de bases complementarias a uno o más codones de un aminoácido. Algunos anticodones se emparejan con más de un codón debido a la oscilación del emparejamiento de bases . Con frecuencia, el primer nucleótido del anticodón es uno que no se encuentra en el ARNm: la inosina , que puede formar enlaces de hidrógeno con más de una base en la posición del codón correspondiente. [4] : 29.3.9  En el código genético , es común que un solo aminoácido esté especificado por las cuatro posibilidades de la tercera posición, o al menos por las pirimidinas y las purinas ; por ejemplo, el aminoácido glicina está codificado por las secuencias de codones GGU, GGC, GGA y GGG. También pueden aparecer otros nucleótidos modificados en la primera posición del anticodón, a veces conocida como "posición de oscilación", lo que produce cambios sutiles en el código genético, como por ejemplo en las mitocondrias . [17] La ​​posibilidad de que las bases se tambaleen reduce el número de tipos de ARNt necesarios: en lugar de 61 tipos con uno para cada codón sentido del código genético estándar), sólo se necesitan 31 ARNt para traducir, sin ambigüedades, los 61 codones sentido. [3] [18]

Nomenclatura

Un ARNt se denomina comúnmente por su aminoácido previsto (por ejemplo, ARNt-Asn ), por su secuencia de anticodón (por ejemplo, ARNt(GUU) ), o por ambos (por ejemplo, ARNt-Asn(GUU) o ARNtAsn
GUU
). [19] Estas dos características describen la función principal del ARNt, pero en realidad no cubren toda la diversidad de la variación del ARNt; como resultado, se agregan sufijos numéricos para diferenciar. [20] Los ARNt destinados al mismo aminoácido se denominan "isotipos"; estos con la misma secuencia de anticodón se denominan "isoaceptores"; y estos con ambos iguales pero diferentes en otros lugares se llaman "isodecodificadores". [21]

Aminoacilación

La aminoacilación es el proceso de agregar un grupo aminoacilo a un compuesto. Une covalentemente un aminoácido al extremo CCA 3' de una molécula de ARNt. Cada ARNt se aminoacila (o carga ) con un aminoácido específico mediante una aminoacil ARNt sintetasa . Normalmente hay una única aminoacil ARNt sintetasa para cada aminoácido, a pesar de que puede haber más de un ARNt y más de un anticodón para un aminoácido. El reconocimiento del ARNt apropiado por las sintetasas no está mediado únicamente por el anticodón y el tallo aceptor suele desempeñar un papel destacado. [22] Reacción:

  1. aminoácido + ATP → aminoacil-AMP + PPi
  2. aminoacil-AMP + ARNt → aminoacil-ARNt + AMP

A ciertos organismos les pueden faltar una o más aminofosfato-ARNt sintetasas. Esto conduce a la carga del ARNt mediante un aminoácido químicamente relacionado y, mediante el uso de una enzima o enzimas, el ARNt se modifica para que se cargue correctamente. Por ejemplo, a Helicobacter pylori le falta la glutaminil tRNA sintetasa. Por lo tanto, la glutamato ARNt sintetasa carga ARNt-glutamina (ARNt-Gln) con glutamato . Luego, una amidotransferasa convierte la cadena lateral ácida del glutamato en amida, formando el gln-tRNA-Gln correctamente cargado.

Unión al ribosoma

La gama de conformaciones adoptadas por el ARNt cuando transita por los sitios A/T a través de P/E en el ribosoma. Se proporcionan los códigos del Protein Data Bank (PDB) para los modelos estructurales utilizados como puntos finales de la animación. Ambos ARNt están modelados como ARNt específico de fenilalanina de Escherichia coli , con el ARNt A/T como modelo de homología de las coordenadas depositadas. Codificación de colores como se muestra para la estructura terciaria del ARNt. Adaptado de. [23]

El ribosoma tiene tres sitios de unión para moléculas de ARNt que abarcan el espacio entre las dos subunidades ribosómicas : los sitios A (aminoacil) , [24] P (peptidil) y E (salida) . Además, el ribosoma tiene otros dos sitios para la unión del ARNt que se utilizan durante la decodificación del ARNm o durante el inicio de la síntesis de proteínas . Estos son el sitio T (denominado factor de elongación Tu ) y el sitio I (iniciación). [25] [26] Por convención, los sitios de unión de ARNt se indican con el sitio de la subunidad ribosómica pequeña en primer lugar y el sitio de la subunidad ribosómica grande en segundo lugar. Por ejemplo, el sitio A suele escribirse A/A, el sitio P, P/P, y el sitio E, E/E. [25] Las proteínas de unión como L27, L2, L14, L15, L16 en los sitios A y P han sido determinadas mediante marcaje de afinidad por AP Czernilofsky et al. ( Proc. Natl. Acad. Sci, EE.UU. , págs. 230-234, 1974).

Una vez que se completa el inicio de la traducción, el primer aminoacil ARNt se ubica en el sitio P/P, listo para el ciclo de elongación que se describe a continuación. Durante el alargamiento de la traducción, el ARNt se une primero al ribosoma como parte de un complejo con el factor de elongación Tu ( EF-Tu ) o su contraparte eucariota ( eEF-1 ) o arqueal. Este sitio de unión inicial de ARNt se denomina sitio A/T. En el sitio A/T, la mitad del sitio A reside en la subunidad ribosomal pequeña donde se encuentra el sitio de decodificación del ARNm. El sitio de decodificación del ARNm es donde se lee el codón del ARNm durante la traducción. La mitad del sitio T reside principalmente en la subunidad ribosomal grande donde EF-Tu o eEF-1 interactúa con el ribosoma. Una vez que se completa la decodificación del ARNm, el aminoacil-ARNt se une al sitio A/A y está listo para que se forme el siguiente enlace peptídico [27] con el aminoácido adjunto. El peptidil-ARNt, que transfiere el polipéptido en crecimiento al aminoacil-ARNt unido en el sitio A/A, está unido en el sitio P/P. Una vez que se forma el enlace peptídico, el ARNt en el sitio P/P está acilado o tiene un extremo 3' libre, y el ARNt en el sitio A/A disocia la cadena polipeptídica en crecimiento. Para permitir el siguiente ciclo de elongación, los ARNt luego se mueven a través de los sitios de unión híbridos A/P y P/E, antes de completar el ciclo y residir en los sitios P/P y E/E. Una vez que los ARNt A/A y P/P se han movido a los sitios P/P y E/E, el ARNm también se ha movido un codón y el sitio A/T está vacío, listo para la siguiente ronda de decodificación del ARNm. El ARNt unido en el sitio E/E abandona el ribosoma.

El sitio P/I es en realidad el primero en unirse al aminoacil ARNt, que se administra mediante un factor de iniciación llamado IF2 en las bacterias. [26] Sin embargo, la existencia del sitio P/I en ribosomas eucarióticos o arqueales aún no se ha confirmado. La proteína del sitio P L27 ha sido determinada mediante marcaje de afinidad por E. Collatz y AP Czernilofsky ( FEBS Lett. , Vol. 63, págs. 283-286, 1976).

genes de ARNt

Los organismos varían en la cantidad de genes de ARNt en su genoma . Por ejemplo, el gusano nematodo C. elegans , un organismo modelo comúnmente utilizado en estudios genéticos , tiene 29.647 [28] genes en su genoma nuclear , de los cuales 620 codifican ARNt. [29] [30] La levadura en ciernes Saccharomyces cerevisiae tiene 275 genes de ARNt en su genoma. El número de genes de ARNt por genoma puede variar ampliamente: especies bacterianas de grupos como Fusobacteria y Tenericutes tienen alrededor de 30 genes por genoma, mientras que genomas eucarióticos complejos como el pez cebra ( Danio rerio ) pueden contener más de 10.000 genes de ARNt. [31]

En el genoma humano, que, según estimaciones de enero de 2013, tiene alrededor de 20.848 genes codificadores de proteínas [32] en total, hay 497 genes nucleares que codifican moléculas de ARNt citoplasmático y 324 pseudogenes derivados de ARNt (genes de ARNt que se cree que ya no son funcionales). [33] (aunque se ha demostrado que los pseudoARNt están involucrados en la resistencia a los antibióticos en las bacterias). [34] Como ocurre con todos los eucariotas, hay 22 genes de ARNt mitocondriales [35] en los humanos. Mutaciones en algunos de estos genes se han asociado con enfermedades graves como el síndrome MELAS . También se han identificado regiones en los cromosomas nucleares, muy similares en secuencia a los genes de ARNt mitocondriales (similares a ARNt). [36] Estos parecidos al ARNt también se consideran parte del ADN mitocondrial nuclear (genes transferidos de la mitocondria al núcleo). [36] [37] El fenómeno de múltiples copias nucleares de ARNt mitocondrial (parecidos a ARNt) se ha observado en muchos organismos superiores, desde humanos hasta zarigüeyas [38], lo que sugiere la posibilidad de que los dobles sean funcionales.

Los genes de ARNt citoplasmáticos se pueden agrupar en 49 familias según sus características anticodones. Estos genes se encuentran en todos los cromosomas, excepto en el cromosoma 22 y el Y. Se observa una alta agrupación en 6p (140 genes de ARNt), así como en el cromosoma 1. [33]

El HGNC , en colaboración con la Base de datos de ARNt genómico (GtRNAdb) y expertos en el campo, ha aprobado nombres únicos para genes humanos que codifican ARNt.

Normalmente, los genes de ARNt de bacterias son más cortos (media = 77,6 pb) que los ARNt de Archaea (media = 83,1 pb) y eucariotas (media = 84,7 pb). [31] El ARNt maduro sigue un patrón opuesto: los ARNt de bacterias suelen ser más largos (mediana = 77,6 nt) que los ARNt de Archaea (mediana = 76,8 nt), y los eucariotas exhiben los ARNt maduros más cortos (mediana = 74,5 nt). [31]

Evolución

El contenido de ARNt genómico es una característica diferenciadora de los genomas entre dominios biológicos de la vida: Archaea presenta la situación más simple en términos de contenido de ARNt genómico con un número uniforme de copias de genes, las bacterias tienen una situación intermedia y Eukarya presenta la situación más compleja. [39] Eukarya presenta no solo más contenido de genes de ARNt que los otros dos reinos, sino también una alta variación en el número de copias de genes entre diferentes isoaceptores, y esta complejidad parece deberse a duplicaciones de genes de ARNt y cambios en la especificidad del anticodón [ cita necesaria ] .

La evolución del número de copias del gen tRNA en diferentes especies se ha relacionado con la aparición de enzimas de modificación de tRNA específicas (uridina metiltransferasas en bacterias y adenosina desaminasas en Eukarya), que aumentan la capacidad de decodificación de un tRNA determinado. [39] Como ejemplo, tRNAAla codifica cuatro isoaceptores de tRNA diferentes (AGC, UGC, GGC y CGC). En Eukarya, los isoaceptores de AGC están extremadamente enriquecidos en número de copias de genes en comparación con el resto de isoaceptores, y esto se ha correlacionado con la modificación de A a I de su base oscilante. Esta misma tendencia se ha mostrado para la mayoría de los aminoácidos de especies eucariotas. De hecho, el efecto de estas dos modificaciones de ARNt también se observa en el sesgo de uso de codones . Los genes altamente expresados ​​parecen estar enriquecidos en codones que utilizan exclusivamente codones que serán decodificados por estos ARNt modificados, lo que sugiere un posible papel de estos codones (y, en consecuencia, de estas modificaciones de ARNt) en la eficiencia de la traducción. [39]

Es importante señalar que muchas especies han perdido ARNt específicos durante la evolución. Por ejemplo, tanto los mamíferos como las aves carecen de los mismos 14 de los 64 genes de ARNt posibles, pero otras formas de vida contienen estos ARNt. [40] Para traducir codones para los cuales falta un ARNt que se empareja exactamente, los organismos recurren a una estrategia llamada oscilación , en la que los pares de ARNt/ARNm que no coinciden de manera perfecta aún dan lugar a la traducción, aunque esta estrategia también aumenta la propensión a errores de traducción. [41] Las razones por las que los genes de ARNt se han perdido durante la evolución siguen siendo objeto de debate, pero pueden estar relacionadas con la mejora de la resistencia a la infección viral. [42] Debido a que los tripletes de nucleótidos pueden presentar más combinaciones que aminoácidos y ARNt asociados, existe redundancia en el código genético y varios codones diferentes de 3 nucleótidos pueden expresar el mismo aminoácido. Este sesgo de codones es lo que requiere la optimización de codones.

Origen hipotético

La mitad superior del ARNt (que consta del brazo T y el tallo aceptor con un grupo fosfato terminal 5' y un grupo CCA terminal 3') y la mitad inferior (que consta del brazo D y el brazo anticodón) son unidades independientes en estructura. así como en función. Es posible que la mitad superior haya evolucionado primero, incluida la etiqueta genómica terminal 3' que originalmente pudo haber marcado moléculas similares a ARNt para su replicación en el mundo del ARN primitivo . La mitad inferior puede haber evolucionado más tarde como una expansión, por ejemplo, cuando la síntesis de proteínas comenzó en el mundo del ARN y lo convirtió en un mundo de ribonucleoproteínas ( mundo RNP ). Este escenario propuesto se llama hipótesis de etiqueta genómica. De hecho, el ARNt y los agregados similares a ARNt todavía hoy tienen una importante influencia catalítica (es decir, como ribozimas ) en la replicación. Estas funciones pueden considerarse como " fósiles moleculares (o químicos) " del mundo del ARN. [43] En marzo de 2021, los investigadores informaron evidencia que sugería que una forma temprana de ARN de transferencia podría haber sido una molécula de ribozima replicadora en el desarrollo temprano de la vida, o abiogénesis . [44] [45]

fragmentos derivados de ARNt

Los fragmentos derivados de ARNt (o tRF) son moléculas cortas que emergen después de la escisión de los ARNt maduros o del transcrito precursor. [46] [47] [48] [49] Tanto los ARNt citoplasmáticos como los mitocondriales pueden producir fragmentos. [50] Hay al menos cuatro tipos estructurales de tRF que se cree que se originan a partir de tRNA maduros, incluidas las mitades de tRNA relativamente largas y los cortos 5'-tRF, 3'-tRF e i-tRF. [46] [50] [51] El ARNt precursor se puede escindir para producir moléculas a partir de las secuencias líder 5' o de cola 3'. Las enzimas de escisión incluyen Angiogenina, Dicer, RNasa Z y RNasa P. [46] [47] Especialmente en el caso de la angiogenina, los tRF tienen un fosfato cíclico característicamente inusual en su extremo 3' y un grupo hidroxilo en el extremo 5'. [52] Los tRF parecen desempeñar un papel en la interferencia del ARN , específicamente en la supresión de retrovirus y retrotransposones que utilizan el ARNt como cebador para la replicación. Los semiARNt escindidos por la angiogenina también se conocen como ARNti. La biogénesis de fragmentos más pequeños, incluidos aquellos que funcionan como piRNA , se conoce menos. [53]

Los tRF tienen múltiples dependencias y funciones; como exhibir cambios significativos entre sexos, razas y estado de enfermedad. [50] [54] [55] Funcionalmente, pueden cargarse en Ago y actuar a través de vías de ARNi, [48] [51] [56] participar en la formación de gránulos de estrés, [57] desplazar los ARNm de las proteínas de unión a ARN [58] o inhibir la traducción. [59] A nivel del sistema o del organismo, los cuatro tipos de tRF tienen un espectro diverso de actividades. Funcionalmente, los tRF están asociados con infección viral, [60] cáncer, [51] proliferación celular [52] y también con la regulación epigenética transgeneracional del metabolismo. [61]

Los tRF no se limitan a los humanos y se ha demostrado que existen en múltiples organismos. [51] [62] [63] [64]

Hay dos herramientas en línea disponibles para aquellos que deseen aprender más sobre los tRF: el marco para la exploración interactiva de fragmentos de ARN t mitocondrial y nuclear (MINTbase) [ 65 ] [ 66 ] y la base de datos relacional de fragmentos relacionados con ARN de transferencia (tRFdb). [67] MINTbase también proporciona un esquema de nomenclatura para los tRF llamados placas de licencia tRF (o códigos MINT) que es independiente del genoma; el esquema comprime una secuencia de ARN en una cadena más corta.

ARNt diseñados

Se pueden utilizar ARNt con anticodones modificados y/o tallos aceptores para modificar el código genético. Los científicos han reutilizado con éxito los codones (sentido y parada) para aceptar aminoácidos (naturales y nuevos), tanto para la iniciación (ver: codón de inicio ) como para el alargamiento.

En 1990, el ARNtfMet2
CUA
(modificado del ARNtfMet2
CAU
El gen metY) se insertó en E. coli , lo que provocó que iniciara la síntesis de proteínas en el codón de parada UAG, siempre que esté precedido por una secuencia fuerte de Shine-Dalgarno . Al inicio no sólo inserta la tradicional formilmetionina , sino también formilglutamina, ya que la glutamil-ARNt sintasa también reconoce el nuevo ARNt. [68] El experimento se repitió en 1993, ahora con un ARNt alargador modificado para ser reconocido por la metionil-ARNt formiltransferasa . [69] Se obtuvo un resultado similar en Mycobacterium . [70] Experimentos posteriores demostraron que el nuevo ARNt era ortogonal al codón de inicio AUG normal y no mostraba eventos de iniciación de traducción fuera del objetivo detectables en una cepa de E. coli recodificada genómicamente . [71]

biogénesis de ARNt

En las células eucariotas , los ARNt se transcriben mediante la ARN polimerasa III como pre-ARNt en el núcleo. [72] La ARN polimerasa III reconoce dos secuencias promotoras posteriores altamente conservadas: la región de control intragénica 5′ (5′-ICR, región de control D o caja A) y la 3′-ICR (región de control T o caja B). ) dentro de los genes de ARNt. [2] [73] [74] El primer promotor comienza en +8 de los ARNt maduros y el segundo promotor se encuentra entre 30 y 60 nucleótidos aguas abajo del primer promotor. La transcripción termina después de un tramo de cuatro o más timidinas . [2] [74]

Motivo bulto-hélice-bulto de un intrón de ARNt

Los pre-ARNt sufren importantes modificaciones dentro del núcleo. Algunos pre-ARNt contienen intrones que se empalman o cortan para formar la molécula de ARNt funcional; [75] en las bacterias, estos se autoempalman , mientras que en eucariotas y arqueas se eliminan mediante endonucleasas de empalme de ARNt . [76] El pre-ARNt eucariota contiene un motivo de estructura bulto-hélice-bulto (BHB) que es importante para el reconocimiento y el empalme preciso del intrón del ARNt mediante endonucleasas. [77] La ​​posición y estructura de este motivo se conservan evolutivamente. Sin embargo, algunos organismos, como las algas unicelulares, tienen una posición no canónica del motivo BHB, así como los extremos 5' y 3' de la secuencia del intrón empalmada. [77] La ​​secuencia 5' es eliminada por la RNasa P , [78] mientras que el extremo 3' es eliminado por la enzima tRNasa Z. [79] Una excepción notable es la arqueona Nanoarchaeum equitans , que no posee una enzima RNasa P y tiene un promotor colocado de manera que la transcripción comienza en el extremo 5' del ARNt maduro. [80] La cola 3' CCA sin plantilla se agrega mediante una nucleotidil transferasa . [81] Antes de que Los1/ Xpo-t exporten los ARNt al citoplasma , [82] [83] los ARNt se aminoacilan . [84] El orden de los eventos de procesamiento no se conserva. Por ejemplo, en la levadura , el empalme no se lleva a cabo en el núcleo sino en el lado citoplasmático de las membranas mitocondriales . [85]

Historia

Francis Crick planteó por primera vez la hipótesis de la existencia del ARNt como la " hipótesis del adaptador ", basándose en la suposición de que debe existir una molécula adaptadora capaz de mediar en la traducción del alfabeto de ARN al alfabeto de proteínas. Paul C Zamecnik , Mahlon Hoagland y Mary Louise Stephenson descubrieron el ARNt. [86] [87] [88] A principios de la década de 1960, Alex Rich y Donald Caspar , dos investigadores en Boston, el grupo Jacques Fresco de la Universidad de Princeton y un grupo del Reino Unido en el King's College de Londres llevaron a cabo importantes investigaciones sobre la estructura . [89] En 1965, Robert W. Holley de la Universidad de Cornell informó sobre la estructura primaria y sugirió tres estructuras secundarias. [90] El ARNt fue cristalizado por primera vez en Madison, Wisconsin, por Robert M. Bock. [91] La estructura de la hoja de trébol fue determinada por varios otros estudios en los años siguientes [92] y finalmente fue confirmada mediante estudios de cristalografía de rayos X en 1974. Dos grupos independientes, Kim Sung-Hou trabajando bajo Alexander Rich y un grupo británico encabezado por Aaron Klug , publicó los mismos hallazgos de cristalografía dentro de un año. [93] [94]

Relevancia clínica

La interferencia con la aminoacilación puede ser útil como enfoque para tratar algunas enfermedades: las células cancerosas pueden ser relativamente vulnerables a la aminoacilación alterada en comparación con las células sanas. La síntesis de proteínas asociada con el cáncer y la biología viral suele depender en gran medida de moléculas de ARNt específicas. Por ejemplo, para el cáncer de hígado, cargar tRNA-Lys-CUU con lisina sostiene el crecimiento y la metástasis de las células cancerosas de hígado, mientras que las células sanas tienen una dependencia mucho menor de este tRNA para respaldar la fisiología celular. [95] De manera similar, el virus de la hepatitis E requiere un entorno de ARNt que difiere sustancialmente del asociado con las células no infectadas. [96] Por lo tanto, la inhibición de la aminoacilación de especies de ARNt específicas se considera una nueva vía prometedora para el tratamiento racional de una gran cantidad de enfermedades.

Ver también

Referencias

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