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ADN polimerasa II

La ADN polimerasa II (también conocida como ADN Pol II o Pol II ) es una ADN polimerasa procariótica dependiente de ADN codificada por el gen PolB. [1]

La ADN polimerasa II es una proteína de 89,9 kDa y es miembro de la familia B de ADN polimerasas. Fue aislado originalmente por Thomas Kornberg en 1970 y caracterizado durante los años siguientes. [2] [3] [4] La funcionalidad in vivo de Pol II está bajo debate, sin embargo, el consenso muestra que Pol II participa principalmente como enzima de respaldo en la replicación del ADN procariótico . La enzima tiene capacidad de síntesis de ADN 5′→3′ , así como actividad correctora de exonucleasa 3′→5′. DNA Pol II interactúa con múltiples socios de unión comunes con DNA Pol III para mejorar su fidelidad y procesividad . [1]

Descubrimiento

La ADN polimerasa I fue la primera ADN polimerasa dirigida por ADN que se aisló de E. coli . [5] Varios estudios que involucran esta enzima aislada indicaron que la ADN pol I probablemente estaba involucrada en la replicación de reparación y no era la principal polimerasa replicativa. [6] Para comprender mejor el papel in vivo del ADN pol I, De Lucia y Cairns generaron en 1969 mutantes de E. coli deficientes en esta enzima (denominados Pol A1 − ). [7] Como se caracterizó, esta nueva cepa mutante era más sensible a la luz ultravioleta , lo que corrobora la hipótesis de que el ADN pol I estaba involucrado en la replicación de reparación. El mutante creció al mismo ritmo que el tipo salvaje , lo que indica la presencia de otra enzima responsable de la replicación del ADN . Siguieron el aislamiento y la caracterización de esta nueva polimerasa implicada en la replicación semiconservadora del ADN, en estudios paralelos realizados por varios laboratorios. [2] [3] [4] La nueva polimerasa se denominó ADN polimerasa II y durante un tiempo se creyó que era la principal enzima replicativa de E. coli . [8] DNA pol II fue cristalizado por primera vez por Anderson et al. en 1994. [9]

En 2023 se informó que la transcripción acelerada relacionada con el envejecimiento hace que Pol II cometa más errores, lo que genera copias defectuosas que pueden causar numerosas enfermedades. [10]

Estructura

DNA Pol II es una proteína de 89,9 kD, compuesta por 783 aminoácidos, que está codificada por el gen polB (dinA). Una proteína globular, DNA Pol II, funciona como un monómero, mientras que muchas otras polimerasas formarán complejos. Hay tres secciones principales de este monómero a las que coloquialmente se hace referencia como palma, dedos y pulgar. Esta “mano” se cierra alrededor de una hebra de ADN. La palma del complejo contiene tres residuos catalíticos que se coordinarán con dos iones metálicos divalentes para funcionar. DNA Pol II tiene una gran cantidad de copias en la célula, alrededor de 30-50, mientras que el nivel de DNA Pol III en una célula es cinco veces menor.

Estructura general en "mano" de una polimerasa del grupo B ( PDB : 3NCI ​)

Similitud con otras polimerasas del grupo B

La mayoría de las polimerasas se han agrupado en familias según su estructura y función similares. DNA Pol II pertenece al Grupo B junto con DNA Pol α, δ, ϵ y ζ humanos. Todos estos son homólogos de RB69, 9°N-7 y Tgo. Los otros miembros del grupo B tienen al menos otra subunidad que hace que el ADN Pol II sea único. [11]

Función

Confirmado

Todas las polimerasas están involucradas en la replicación del ADN de alguna manera, sintetizando cadenas de ácidos nucleicos. La replicación del ADN es un aspecto vital de la proliferación de una célula. Sin replicar su ADN, una célula no puede dividirse ni compartir su información genética con su descendencia. En procariotas, como E. coli , DNA Pol III es la principal polimerasa involucrada en la replicación del ADN. Si bien DNA Pol II no es un factor importante en la replicación de los cromosomas, tiene otras funciones que desempeñar.

DNA Pol II participa en la replicación del ADN. Si bien puede que no sea tan rápido como DNA Pol III, tiene algunas capacidades que la convierten en una enzima eficaz. Esta enzima tiene una actividad exonucleasa 3′→5′ asociada junto con actividad primasa . DNA Pol II es una enzima de alta fidelidad con una tasa de error de sustitución de ≤ 2×10 −6 y una tasa de error de desplazamiento de marco −1 de ≤ 1×10 −6 . DNA Pol II puede corregir y procesar discrepancias causadas por Pol III. Banach-Orlowska et al. demostró que DNA Pol II participa en la replicación, pero depende de la cadena y replica preferentemente la cadena retrasada . Un mecanismo propuesto sugiere que cuando DNA Pol III se detiene o deja de funcionar, entonces DNA Pol II puede reclutarse específicamente hasta el punto de replicación y continuar con la replicación. [1]

Hay muchas formas diferentes en que se puede dañar el ADN, desde el daño de los rayos UV hasta la oxidación, por lo que es lógico que existan diferentes tipos de polimerasas para reparar estos daños. Una función importante que desempeña DNA Pol II es la principal polimerasa para la reparación de enlaces cruzados entre cadenas. Los entrecruzamientos entre hebras son causados ​​por sustancias químicas como la mostaza nitrogenada y el psoraleno , que crean lesiones citotóxicas. Reparar estas lesiones es difícil porque ambas cadenas de ADN han sido dañadas por el agente químico y, por lo tanto, la información genética en ambas cadenas es incorrecta. El mecanismo exacto de cómo se fijan estos enlaces cruzados entre cadenas aún se está investigando, pero se sabe que Pol II está muy involucrado. [11]

Actividad

DNA Pol II no es la polimerasa más estudiada, por lo que hay muchas funciones propuestas para esta enzima que son funciones probables pero que en última instancia no están confirmadas: [1]

Mecanismo

Sitio activo de reparación de la ADN polimerasa II (PDB ID: 3K5M)

Durante la replicación del ADN, los pares de bases están sujetos a daños en la secuencia. Una secuencia de ADN dañada puede provocar que se detenga la replicación. [12] Para corregir un error en la secuencia, DNA Pol II cataliza la reparación de pares de bases de nucleótidos. Los estudios in vitro han demostrado que Pol II interactúa ocasionalmente con proteínas accesorias de Pol III (complejo de carga de abrazadera β y abrazadera) dando a Pol II acceso a la hebra naciente en crecimiento. [1] [13] [14] [15] Con respecto a la función de DNA Pol II durante la replicación del ADN, esto tiene sentido ya que cualquier error que produzca Pol III se producirá en la cadena en crecimiento y no en la cadena conservadora. El dominio N-terminal de DNA Pol II es responsable de la asociación y disociación de la cadena de ADN a la subunidad catalítica. Lo más probable es que haya dos sitios en el dominio N-terminal de DNA Pol II que reconocen el ADN monocatenario. Uno de los sitios es responsable de reclutar ADN monocatenario para DNA Pol II y otro sitio es responsable de la disociación del ADN monocatenario de DNA Pol II. [dieciséis]

Sitio activo DNA Pol II (PDB ID 3K5M)

Tras la unión del sustrato, DNA Pol II se une a los nucleósidos trifosfato para mantener la estructura unida por enlaces de hidrógeno del ADN. Luego se une el dNTP correcto y el complejo enzimático sufre cambios conformacionales de subdominios y residuos de aminoácidos. Estos cambios conformacionales permiten que la tasa de síntesis de reparación sea rápida. [17] El sitio activo contiene dos iones Mg 2+ que están estabilizados por ácidos aspárticos catalíticos D419 y D547. [18] Los iones de magnesio se unen al ADN junto con el dNTP en el estado abierto y coordinan los cambios conformacionales de los residuos de aminoácidos del sitio activo para que se produzca la catálisis (estado cerrado). Después de que se liberan los iones de magnesio, la enzima vuelve a su estado abierto. [19]

Distribución de especies

procariótico

La ADN polimerasa II es un miembro de la familia de la polimerasa B y apoya a la polimerasa III en la replicación del ADN moviéndose desde el extremo 3 'al extremo 5'. [20] En el caso de que la polimerasa III se detenga durante un error de replicación, la polimerasa II puede interrumpir y escindir las bases no coincidentes. La polimerasa II tiene un factor de fidelidad mucho más alto que la polimerasa III, lo que significa que es mucho menos probable que cree errores de emparejamiento. Sin el paso de corrección de la Polimerasa II, la Polimerasa III extendería los desemparejamientos y, por lo tanto, crearía una mutación. [1]

Además de proteger contra mutaciones que podrían ser causadas por la Polimerasa III, la Polimerasa II funciona para proteger contra mutaciones causadas por la Polimerasa IV. La polimerasa IV es mucho más propensa a errores que la polimerasa II, pero también funciona para reparar pares de bases no coincidentes a partir del extremo 3'. La polimerasa II protege el extremo 3 ′ de la polimerasa IV y le impide actuar. Esta protección evitará la formación de mutaciones mientras la Polimerasa II esté funcionando normalmente. Si la polimerasa II queda inactiva por una mutación o inhabilitada por otros factores, la polimerasa IV ocupará su lugar para reparar las bases desapareadas. [1]

eucariota

Si bien la polimerasa II no funcionará de forma natural junto con los miembros eucariotas de la familia B, comparte motivos estructurales y funcionales similares. Los miembros de la familia B incluyen la polimerasa α, ε, ζ y δ. Todas estas polimerasas funcionan para corregir el ADN recién sintetizado en la dirección 3′→5′. Estas polimerasas son capaces de sintetizar ADN tanto en la cadena principal como en la rezagada. Esta clase de polimerasa tiende a ser muy precisa, lo que les permite corregir cualquier error de emparejamiento que se produzca durante la síntesis de ADN. [20]

Regulación

La ADN polimerasa II es naturalmente abundante en la célula, y suele ser cinco veces mayor que la cantidad de polimerasa III. Esta mayor abundancia permite que la polimerasa II supere a la polimerasa III en caso de errores de emparejamiento. Esta cantidad se puede aumentar al inducir la respuesta SOS, que regula positivamente el gen polB, de modo que la cantidad de polimerasa II aumenta aproximadamente siete veces más. Aunque la polimerasa II puede funcionar en ambas hebras, se ha demostrado que prefiere la hebra retrasada frente a la hebra principal. [1]

Ver también

Referencias

  1. ^ abcdefgh Banach-Orlowska M, Fijalkowska IJ, Schaaper RM, Jonczyk P (octubre de 2005). "ADN polimerasa II como factor de fidelidad en la síntesis de ADN cromosómico en Escherichia coli". Microbiología Molecular . 58 (1): 61–70. doi : 10.1111/j.1365-2958.2005.04805.x . PMID  16164549.
  2. ^ ab Kornberg T, Gefter ML (septiembre de 1970). "Síntesis de ADN en extractos libres de células de un mutante defectuoso de la ADN polimerasa". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 40 (6): 1348–55. doi :10.1016/0006-291X(70)90014-8. PMID  4933688.
  3. ^ ab Moisés RE, Richardson CC (diciembre de 1970). "Una nueva actividad ADN polimerasa de Escherichia coli. I. Purificación y propiedades de la actividad presente en E. coli polA1". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 41 (6): 1557–64. doi :10.1016/0006-291X(70)90565-6. PMID  4922636.
  4. ^ ab Knippers R (diciembre de 1970). "ADN polimerasa II". Naturaleza . 228 (5276): 1050–3. Código bibliográfico : 1970Natur.228.1050K. doi :10.1038/2281050a0. PMID  4921664. S2CID  4211529.
  5. ^ Lehman IR, Bessman MJ, Simms ES, Kornberg A (julio de 1958). "Síntesis enzimática de ácido desoxirribonucleico. I. Preparación de sustratos y purificación parcial de una enzima de Escherichia coli". La Revista de Química Biológica . 233 (1): 163–70. doi : 10.1016/S0021-9258(19)68048-8 . PMID  13563462.
  6. ^ Smith DW, Schaller HE, Bonhoeffer FJ (mayo de 1970). "Síntesis de ADN in vitro". Naturaleza . 226 (5247): 711–3. Código Bib :1970Natur.226..711S. doi :10.1038/226711a0. PMID  4910150. S2CID  1505496.
  7. ^ De Lucia P, Cairns J (diciembre de 1969). "Aislamiento de una cepa de E. coli con una mutación que afecta a la ADN polimerasa". Naturaleza . 224 (5225): 1164–6. Código Bib :1969Natur.224.1164D. doi :10.1038/2241164a0. PMID  4902142. S2CID  4182917.
  8. ^ Kornberg T, Gefter ML (abril de 1971). "Purificación y síntesis de ADN en extractos libres de células: propiedades de la ADN polimerasa II". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 68 (4): 761–4. Código bibliográfico : 1971PNAS...68..761K. doi : 10.1073/pnas.68.4.761 . PMC 389037 . PMID  4927672. 
  9. ^ Anderson WF, Prince DB, Yu H, McEntee K, Goodman MF (abril de 1994). "Cristalización de la ADN polimerasa II de Escherichia coli". Revista de biología molecular . 238 (1): 120-2. doi :10.1006/jmbi.1994.1765. PMID  8145251.
  10. ^ "Los cambios asociados al envejecimiento en el alargamiento transcripcional influyen en la longevidad". Naturaleza . 12 de abril de 2023 . Consultado el 22 de mayo de 2023 .
  11. ^ ab Bebenek K, Kunkel TA (2004). "Funciones de las ADN polimerasas". Avances en la química de las proteínas . 69 : 137–65. doi :10.1016/S0065-3233(04)69005-X. ISBN 9780120342693. PMID  15588842.
  12. ^ Becherel OJ, Fuchs RP (julio de 2001). "Mecanismo de mutagénesis por cambio de marco mediada por la ADN polimerasa II". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 98 (15): 8566–71. Código bibliográfico : 2001PNAS...98.8566B. doi : 10.1073/pnas.141113398 . PMC 37476 . PMID  11447256. 
  13. ^ Wickner S, Hurwitz J (octubre de 1974). "Conversión de ADN viral phiX174 a forma bicatenaria mediante proteínas purificadas de Escherichia coli". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 71 (10): 4120–4. Código bibliográfico : 1974PNAS...71.4120W. doi : 10.1073/pnas.71.10.4120 . PMC 434340 . PMID  4610569. 
  14. ^ Hughes AJ, Bryan SK, Chen H, Moses RE, McHenry CS (marzo de 1991). "La ADN polimerasa II de Escherichia coli es estimulada por las subunidades auxiliares de la holoenzima de la ADN polimerasa III". La Revista de Química Biológica . 266 (7): 4568–73. doi : 10.1016/S0021-9258(20)64360-5 . PMID  1999435.
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